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TOMO V
LABORATORIO
CLINÍCO
TABLA DE CONTENIDO
Pag.
PR-LAB-01 V2 SOLICITUD DE EXAMENES DE CONSULTA EXTERNA
PR-LAB-02 V2 TOMA DE MUESTRAS DE CONSULTA EXTERNA
PR-LAB-03 V2 PROCESAMIENTO GLOBAL DE LAS MUESTRAS
PR-LAB-04 V2 REPORTE Y ENTREGA DE RESULTADOS
PR-LAB-05 V2PROCESAMIENTO DE CUADRO HEMATICO
PR-LAB-06 V2 PROCEDIMIENTO GLICEMIA
PR-LAB-07 V2PROCEDIMIENTO COLESTEROL TOTAL
PR-LAB-08 V2 GUIA DE PROCEDIMIENTO TRIGLICERIDOS
PR-LAB-09 V2PROCEDIMIENTO COLESTEROL HDL
PR-LAB-10 V2PROCEDIMIENTO DE ACIDO URICO
PR-LAB-11 V2 PROCEDIMIENTO CREATININA
PR-LAB-12V2 PROCEDIMIENTO GOTA GRUESA
PR-LAB-13 V3 PROCEDIMIENTO HEMOCLASIFICACION
PR-LAB-14 V2 PROCEDIMIENTO LEISHMANIASIS
PR-LAB-15 V2 PROCEDIMIENTO PARCIAL DE ORINA
PR-LAB-16 V2 PROCEDIMIENTO RECUENTO DE PLAQUETAS
PR-LAB-17 V2 PROCEDIMIENTO SEROLOGIA PARA SIFILIS
PR-LAB-18 V2 PROCEDIMIENTO DE NITROGENO UREICO
PR-LAB-19 V2 PROCEDIMIENTO DE REFERENCIA Y CONTRAREFERENCIA
PR-LAB-20 V2 PROCEDIMIENTO PARA RECEPCION DE PACIENTES AMBULATORIOS Y DE CONSULTA EXTERNA
PARA TOMA DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO CLINICO
PR-LAB-21 V1 PROCEDIMIENTO DE ADQUISICION DE REACTIVOS Y DISPOSITIVOS MEDICOS PARA EL
LABORATORIO CLINICO
PR-LAB-22 V1 PROCEDIMIENTO DE MANEJO INTERNO DE RESIDUOS HOSPITALARIOS EN EL
LABORATORIO Y LA TOMADE MUESTRAS
PR-LAB-23 V1 PROCEDIMIENTO DE RUTINA DIARIA DE MANTENIMIENTO DE EQUIPOS BIOMEDICOS
DEL LABORATORIO CLINICO
PR-LAB-24 V1 PROCEDIMIENTO PARA BACILOSCOPIA
PR-LAB-25 V1 PROCEDIMIENTO PARA DETERMINACION DE BILIRRUBINAS
PR-LAB-26 V1 PROCEDIMIENTO PARA DETERMINACION DE GLICEMIA PRE Y POST Y TEST DE SULLIVAN
PR-LAB-27 V1 PROCEDIMIENTO PARA FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
PR-LAB-28 V1 PROCEDIMIENTO PARA KOH - HONGOS
PR-LAB-29 V1 PROCEDIMIENTO PARA PROCESAMIENTO FROTIS DE FLUJO VAGINAL
PR-LAB-30 V1PROCEDIMIENTO PARA PRUEBA DE EMBARAZO
MN-LAB-05 V2 SEGUIMIENTO A RIESGOS LABORATORIO
GUI-LAB-01 V1 GUIA PARA LA REMISION DE MUESTRAS HISTOPATOLOGICAS
GUI-LAB-02 V2 GUIA PARA LA REMISION DE MUESTRAS TOMADAS EN EL LABORATORIO
IN-LAB-01 V3 INSTRUCTIVO RECOLECCION DE MUESTRAS POR PARTE DEL PACIENTE
IN-LAB-02 V3 INSTRUCTIVO PARA RECOLECCION DE MUESTRAS POR PARTE DE ENFERMERIA
N-LAB-01V2 MANUAL TRANSPORTE Y REMISION DE MUESTRAS_ESE
MN-LAB-02 MANUAL DE TOMA DE MUESTRAS DE TSH NEONATAL
MN-LAB-03 V2 MANUAL BIOSEGURIDAD DE TOMA DE MUESTRAS DE LABORATORIO CLINICO
MN-LAB-04 V2 MANUAL BIOSEGURIDAD LABORATORIO CLINICO
MN-LAB-05 SEGUIMIENTO A RIESGOS EN LAS FASES ANALITICA Y POST ANALITICA DE MUESTRAS
MN-LAB-06 V2 MANUAL DE CONTROL DE CALIDAD EXTERNO
MN-LAB-07 V2 MANUAL DE CONTROL DE CALIDAD INTERNO
MN-LAB-08 V2 MANUAL DE PARASITOLOGIA
MN-LAB-10 V2 MANUAL DE LIMPIEZA Y DESINFECCION EN EL LABORATORIO CLINICO
MN-LAB-11 V1 MANUAL DE NO REUSO DE DISPOSITIVOS MEDICOS EN EL SERVICIO DE LABORATORIO CLINICO
2
4
6
8
10
12
17
19
21
25
29
33
36
40
44
50
54
58
63
67
72
76
83
88
97
106
113
124
132
142
149
153
158
164
167
171
179
188
191
195
207
212
229
236
245
ESE Departamental Solución
salud
SOLICITUD DE EXAMENES
DE CONSULTA EXTERNA
Versión 2
Código
PR-LAB-01
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
2
Documento
Controlado
EXAMENES
DE CONSULTA EXTERNA
FIN
-
-
Antes de proceder a
tomar los exámenes
-
Laboratorio Clínico
Verificar las condiciones del
paciente con relación a los
exámenes solicitados
-
Documentos completos
Fecha Vigencia
27/03/2011
FIN
Información/Preparación
Bacteriólogo
paciente
Al llegar al Laboratorio
Laboratorio clínico
Clínico
Generar RIPS y/o factura
Diligenciar Orden Médica
con la solicitud de
exámenes
Código
PR-LAB-01
6
5
Información /
Preparación
Auxiliar de
Facturación
Entrega de orden
medica con la solicitud
Paciente
de laboratorios ya
facturados
Legalización facturación
Solicitud de exámenes Médico
Dentro de la consulta
como apoyo al
Consulta Externa
Diagnóstico
Digitar al sistema la
orden medica antes de
Facturación
ingresar al laboratorio
Clínico
COMO
SOLICITUD DE EXAMENES
DE CONSULTA EXTERNA
Entrega de orden
Legalizacion
Solicitud de
examens
-
DONDE
Documento Controlado
Versión 2
4
3
2
Inicio
LABORATORIO CLINICO
SOLICITUD DE EXÁMENES DE CONSULTA EXTERNA
QUE
QUIEN
CUANDO
PROCESO
PROCEDIMIENTO
No FLUJOGRAMA
INICIO
1
Fecha Vigencia 27/03/2011
ASISTENCIAL
Versión 2
MACROPROCESO
Código: PR-LAB-01
ESE DEPARTAMENTAL “SOLUCION SALUD”
ESE Departamental Solución
salud
Página
3
Documento
Controlado
ESE Departamental Solución
salud
TOMA DE MUESTRA DE
CONSULTA EXTERNA
Versión 2
Código
PR-LAB-02
Fecha Vigencia
27/03/2011
TOMA DEMUESTRAS
DE CONSULTA EXTERNA
Página
4
Documento
Controlado
FIN
-
Área de toma de
muestra
-
-
Antes de abandonar el
Laboratorio Clínico
laboratorio clínico
Una vez se constate
en la orden medica
Recolectar la muestra en los
tubos y/o laminas indicados
según el caso, previa
identificación de los mismos
Verificar las condiciones en
las que se encuentra el
paciente después de
tomada la muestra
-
Muestras recibidas
identificadas con número de
registro del Laboratorio
Fecha Vigencia
27/03/2011
FIN
Bacteriólogo
Información al paciente Bacteriólogo
Toma de muestra
Área de toma de
Muestra
Una vez se determine
que el paciente debe Área de toma de
traer muestras
Muestra
recogidas previamente
Antes de la toma de
Muestra
Área de toma de
Muestra
Diligenciar formato o libro
de registro, especificando
los exámenes solicitados
Preguntado al paciente si
cumplió a cabalidad con las
condiciones establecidas
de acuerdo a los exámenes
solicitados.
Código
PR-LAB-02
7
6
Bacteriólogo o
Auxiliar de
Laboratorio
Bacteriólogo o
Recepción de Muestras Auxiliar de
Laboratorio
Verificación de las
condiciones del
paciente
Antes de la toma de
Muestra
-
COMO
Versión 2
INFORMACION AL
PACIENTE
TOMA DE MUESTRA
RECEPCION DE
MUESTRAS
VERFICICACION DE
LAS CONDICIONES
DEL PACIENTE
REGISTRO DEL
PACIENTE
Registro del paciente
-
DONDE
Documento Controlado
TOMA MUESTRAS
CONSULTA EXTERNA
5
4
3
2
Bacteriólogo o
Auxiliar de
Laboratorio
LABORATORIO CLINICO
TOMA DE MUESTRAS DE CONSULTA EXTERNA
QUE
QUIEN
CUANDO
PROCESO
PROCEDIMIENTO
No
FLUJOGRAMA
1
INICIO
Inicio
ASISTENCIAL
-
MACROPROCESO
-
Código: PR LAB 02
ESE DEPARTAMENTAL “SOLUCION SALUD”
Versión 2
Fecha Vigencia 27/03/2011
ESE Departamental Solución
salud
Página
5
Documento
Controlado
ESE Departamental Solución
salud
PROCESAMIENTO GLOBAL
DE LAS MUESTRAS
Versión 2
Código
PR-LAB-03
Fecha Vigencia
27/03/2011
PROCESAMIENTO GLOBAL
DE LAS MUESTRAS
Página
6
Documento
Controlado
FIN
REPORTE
-
Bacteriólogo
Cuando la muestra
este lista para leer
Cuando se finalice el
análisis de los
resultados
-
-
Área de reporte de
resultados
Área de lectura de
muestra
Área de química.
-
Diligenciando los formato de
reporte de resultados.
Fecha Vigencia
27/03/2011
FIN
Reporte de los
resultados
Lectura de las muestras Bacteriólogo
Antes de realizar los
montajes de pruebas
de química
Una vez este lista la
Área de lectura de
muestra para continuar
muestra
su procesamiento
Verificando de acuerdo al
examen solicitado si
corresponde al área de
Química, Hematología,
Inmunología o Microscopia
Montando diariamente antes
de iniciar la rutina de
química los controles
normal y anormal.
Análisis y correlación de los
resultados
Separación de muestras por
centrifugación, coloración o
montaje en fresco
Diligenciar libro de registro
de cada área, especificando
los exámenes solicitados
Código
PR-LAB-03
8
7
6
Bacteriólogo
Bacteriólogo
Ubicación de las
muestras en las
diferentes secciones
Realizar control de
calidad interno en
química clínica.
Auxiliar de
Laboratorio
Separación de muestras
Área de
procesamiento o
lectura de Muestra
Área de
procesamiento y
coloración de
Muestra
-
COMO
Versión 2
LECTURA
CONTROLES
DE CALIDAD
DE QUIMICA
MUESTRAS
DE LAS
UBICACIÓN
SEPARACION
REGISTRO
Registro en los libros de
Bacteriólogo
cada área
Antes iniciar el
procesamiento de la
muestra
Al determinar el
procesamiento de
acuerdo a la muestra y
al examen solicitado
DONDE
Documento Controlado
PROCESAMIENTO GLOBAL
DE LAS MUESTRAS
5
4
3
2
-
LABORATORIO CLINICO
PROCESAMIENTO GLOBAL DE LAS MUESTRAS
QUE
QUIEN
CUANDO
PROCESO
PROCEDIMIENTO
No
FLUJOGRAMA
1
INICIO
Inicio
ASISTENCIAL
-
MACROPROCESO
-
Código: PR LAB 03
ESE DEPARTAMENTAL “SOLUCION SALUD”
Versión 2
Fecha Vigencia 27/03/2011
ESE Departamental Solución
salud
Página
7
Documento
Controlado
ESE Departamental Solución
salud
REPORTE Y ENTREGA
DE RESULTADOS
Versión 2
Código
PR-LAB-04
Fecha Vigencia
27/03/2011
REPORTE Y ENTREGA
DE RESULTADOS
Página
8
Documento
Controlado
FIN
-
-
A la llegada del
paciente a solicitar el
resultado
-
Área de Recepción
Área de Recepción
Área de lectura de
Muestra
Fecha Vigencia
27/03/2011
FIN
Bacteriólogo o
Auxiliar de
Laboratorio
Apenas se finalice el
análisis de la muestra
y quede consignada
en el libro
A la llegada del
paciente a solicitar el
resultado
Una vez finalizada la Área de lectura de
lectura de las muestras muestra
Diligenciar libro de registro,
según área Química,
Hematología, Inmunología o
Microscopia
Diligenciar el formato de
reporte de resultados, con
firma y sello del
Bacteriólogo
Una vez se constate el
nombre del paciente en el
formato o libro de registro
En la planilla de recepción
de pacientes se diligencian
las últimas dos casillas de
entrega de resultados:
Fecha de entrega y nombre
y firma de quien retira los
exámenes
-
COMO
Código
PR-LAB-04
6
5
Registro de entrega
Entrega de reportes
Bacteriólogo
Trascripción de
resultados
Bacteriólogo o
Auxiliar de
Laboratorio
Bacteriólogo
Reporte
-
DONDE
Versión 2
REGISTRO DE
ENTREGA
ENTREGA
TRANSCRIPCION
REPORTE
-
CUANDO
Documento Controlado
REPORTE Y ENTREGA
DE RESULTADOS
4
3
2
REPORTE Y ENTREGA DE RESULTADOS
QUE
QUIEN
PROCEDIMIENTO
No
FLUJOGRAMA
1
INICIO
-
LABORATORIO CLINICO
PROCESO
Inicio
ASISTENCIAL
MACROPROCESO
Código: PR-LAB-04
ESE DEPARTAMENTAL “SOLUCION SALUD”
Versión 2
Fecha Vigencia 27/03/2011
ESE Departamental Solución
salud
Página
9
Documento
Controlado
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-05
salud
PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
Fecha Vigencia
DE CUADRO HEMATICO
27/03/2011
Página
10
Documento
Controlado
PROCEDIMIENTO PARA EL
ANALISIS CUADRO HEMATICO
8
7
6
5
4
3
2
FIN
Transcripcion
Recuento
Hemoglobina
Hematocrito
Montaje
Toma
INICIO
PROCEDIMIENTO
No FLUJOGRAMA
1
FIN
Trascripción de
resultados
Recuento total
de leucocitos
Montaje de
Hemoglobina
Montaje de
Hematocrito
Montaje de
lámina
Toma de la
muestra
Inicio
-
Bacteriólogo
Bacteriólogo
Bacteriólogo
Bacteriólogo
Bacteriólogo
Bacteriólogo
o Auxiliar de
Laboratorio
-
-
Área de
procesamiento de
Hematología
Una vez
identificado el
Área de
examen solicitado
procesamiento de
en la orden
Hematología
medica
Apenas se finalice
el análisis de la
Área de
muestra y quede
procesamiento de
consignado el
Hematología
resultado en el
libro
-
Una vez
identificado el
examen solicitado
en la orden
medica
Una vez
identificado el
Área de
examen solicitado procesamiento de
en la orden
Hematología
medica
Una vez
identificado el
Área de
examen solicitado procesamiento y
en la orden
coloración de Muestra
medica
Una vez
identificado el
Área de toma de
examen solicitado
muestra
en la orden
medica
-
PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS DE CUADRO HEMATICO
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
-
–
17.5 g/dl
15.5 g/dl
-
Diligenciar el formato de reporte de resultados en la sección de
Hematología, con firma y sello del Bacteriólogo
En un tubo se realiza una dilución 1/20, tomando 380 l de Líqu ido de
Turk y 20 l de muestra, para leer posteriormente en la cámara de
Neubawer. Se cuentan en objetivo 10X o 40X los leucocitos pr esentes
en los 4 cuadrantes grandes extremos y el total se multiplica X 50. E l
resultado se consigna en el libro de Hematología
Mujeres: 11.5
Hombres:12.5
Técnica colorimétrica por KIT: Se monta según técnica vigente si se
adquiere un kit especial ; multiplicando por el factor previamente
determinado en el inserto Método Drabkin:
En un tubo de ensayo se coloca a reaccionar la muestra de sangre
anticoagulada (20l), con (5ml) de el reactivo de Drabkin, y se leerá con
ayuda de fotómetro o espectrofotómetro a una absorbancia de 540nm,
con estándar o patrón de hemoglobina y el resultado se consigna en el
libro de Hematología.
El reporte se realiza en g/dl.
Calculo: hemoglobina(g/dl) =
Factor x Abs. Muestra.
Valores de referencia:
Se toma una gota de sangre total, se coloca sobre una lámina
portaobjetos, luego y con ayuda de otra lamina portaobjetos, formando
un ángulo de 45º aproximadamente se desliza suavemente obteniendo
un extendido uniforme. Dejar secar y colorear con Wright, para llevar a
cabo el recuento diferencial de leucocitos, y el resultado se consigna en
el libro de Hematología
Llenar por capilaridad el Microhematocrito con la muestra respectiva,
sellar la parte inferior con plastilina, llevar a la micro centrífuga, y leer el
microhematocrito en la tabla y el resultado se consigna en el libro de
Hematología
Extracción de sangre por venopunción, recolectada en tubo tapa lila
(Con anticoagulante) , previamente identificado y el número de
identificación del paciente se consigna en el libro de Hematología
-
COMO
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-05
salud
PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
Fecha Vigencia
DE CUADRO HEMATICO
27/03/2011
Página
11
Documento
Controlado
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-06
salud
Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA
27/03/2011
ANALISIS DE GLICEMIA
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE GLICEMIA
Página
12
Documento
Controlado
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-06
salud
PROCEDIMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE GLICEMIA
Página
13
Documento
Controlado
1.
OBJETIVO
Establecer los pasos adecuados a seguir en el procesamiento de la muestra para Glicemia que garanticen la
calidad del resultado final del examen
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Se les realiza a los pacientes a los que el médico les haya solicitado el examen y los responsables son la
Bacterióloga (o) y el Auxiliar de laboratorio
3.
GENERALIDADES
Examen de sangre que permite cuantificar la Glicemia en un individuo
Como consideraciones especiales se debe sugerir al paciente evitar ingerir medicamentos, ya que pueden
interferir en el resultado.
Se recomienda un periodo de 12 horas después de la última comida, es decir, 12 horas de ayuno antes de la
extracción de sangre, porque la concentración de diversos metabolitos de los alimentos puede aumentar en la
sangre venosa o alterarse debido a efectos hormonales
Las técnicas estandarizadas varían según la casa comercial en uso, a lo cual debe darse prioridad.
Valores de referencia:
70 - 105 mg/dl.
Los niveles de glucosa en la sangre superiores a los normales (hiperglucemia) pueden ser un signo de
diabetes. En alguien que tenga diabetes, puede significar que la enfermedad no está bien controlada.
El aumento en los niveles también puede deberse a:
·Alteración de la glucosa en ayunas (también llamada "prediabetes")
Hipertiroidismo
·Cáncer pancreático
·Pancreatitis
·Feocromocitoma
·Acromegalia, síndrome de Cushing o glucagonoma (todos los cuales son causas infrecuentes)
·Diabetes mellitus
Los niveles inferiores a lo normal (hipoglucemia) pueden deberse a:
Hipopituitarismo
·
Hipotiroidismo
·
Insulinoma
·
(muy poco común)
·
Muy poco alimento
·
Demasiada insulina u otros medicamentos para la diabetes
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-06
salud
PROCEDIMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE GLICEMIA
Página
14
Documento
Controlado
4. DESARROLLO DE PROCEDIMIENTO DE GLICEMIA
No
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
1
Inicio
-
-
-
Una vez
identificado
el examen
solicitado en
la orden
medica
Área de toma
de muestra
Una vez
identificado
el examen
solicitado en
la orden
medica
Área de
procesamiento
2
Toma de la
muestra
Bacteriólogo
o Auxili
ar de
Laboratorio
3
Procesamiento
de la muestra
Auxiliar de
Laboratorio
COMO
Extracción de sangre por venopunción,
recolectada en tubo tapa roja (Sin
anticoagulante), previamente identificado y el
Número de identificación del paci
ente se
consigna en el libro de Química Clínica.
Importante: el paciente debe tener un ayuno
no mayor a 12 horas.
Si el médico solicita el examen luego de este
tiempo de ayuno, previa concertación con él,
se tomará con observaciones.
Para la sepa ración de la muestra, luego de
dejar que se produzca coagulación completa
(15 minutos) é sta se centrifuga entre 2000 a
2500 r.p.m por un periodo de 10 a 15 minutos,
obteniéndose de esta manera suero libre de
hemólisis
Realizar el montaje respectivo, 10 l de la
muestra con respe cto a 1ml del reactivo,
patrón o blanco, mezclar e incubar a
temperatura ambiente durante 10 minutos, leer
a una longitud de 500nm de absorbancia frente
al blanco y al patrón, consignar el resultado en
el libro de Química
4
Montaje de la
prueba
Bacteriólogo
Una vez
obtenido el
suero
Área de
procesamiento
de Química
Valores de referencia:
70 - 105 mg/dl.
Nota: El montaje varía de acuerdo a la técnica
utilizada y a la casa comercial.
Importante: antes de iniciar el montaje de la
técnica, sacar los reactivos de la nevera y
dejarlos atemperar, y seguir las indicaciones
establecidas por el fabricante del reactivo.
5
Cálculo
5
Trascripción
de resultados
6
FIN
Bacteriólogo
Bacteriólogo
-
Lueo de
realizar
lecturas de
Absorbancia
de patrón y
muestra
Apenas se
finalice el
análisis de
la muestra y
quede
consignado
el resultado
en el libro
-
Área de
procesamiento
de Química
Aplicar la fórmula:
Concentración de patrón X Abs muestra/ Abs
patrón
Área de
procesamiento
de Química
Diligenciar el formato de reporte de resultados
en la sección de Química, en el espacio
señalado para Glicemia con firma y sello del
Bacteriólogo
-
-
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-06
salud
PROCEDIMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE GLICEMIA
Página
15
Documento
Controlado
5. REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE
REGISTRO
CÓDIGO
LIBRO DE
TRABAJO DE
QUIMICA CLINICA
IDENTIFICACIÓN
DE LA CARPETA
Química Clínica
RESPONSABLE
TIEMPO DE
DE
DESTINO
RETENCIÓ
ALMACENAMIEN
FINAL
N
TO
Bacteriólogo (a)
20 años
Destrucció
n
6. TERMINOS Y DEFINICIONES
·
VENOPUNCION: Conjunto de pasos involucrados en la obtención de una muestra de sangre
adecuadamente.
·
MUESTRA DEL PACIENTE: Volumen de sangre o cualquier otro fluido biológico recolectado
adecuadamente para realizar uno o más exámenes de laboratorio clínico.
·
LIPEMIA: Las muestras de plasma y suero que presentan turbidez en grados variables debido a un
aumento de la concentración de lipoproteínas. En casi todos los casos, la turbidez esta ocasionada por
una concentración elevada de triglicéridos o de especies macromoleculares de lipoproteínas.
·
HEMOLISIS: Se define como la salida de los componentes de las células sanguíneas al plasma o suero.
Se reconoce comúnmente por un aspecto más o menos rojizo del plasma o del suero después de la
centrifugación, ocasionado por la hemoglobina liberada desde los eritrocitos.
·
VALOR DE REFERENCIA: Valor de una magnitud biológica obtenido por la medida en un individuo que
pertenece a la muestra de un grupo de referencia definido
ESE Departamental Solución
salud
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
DE COLESTEROL TOTAL
Código
PR-LAB-07
Fecha Vigencia
27/03/2011
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE
COLESTEROL TOTAL
Página
16
Documento
Controlado
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
DE COLESTEROL TOTAL
1.
Código
PR-LAB-07
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
17
Documento
Controlado
OBJETIVO
Establecer los pasos adecuados a seguir en el procesamiento de la muestra para Colesterol Total que
garanticen la calidad del resultado final del examen.
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Se les realiza a los pacientes a los que el médico les haya solicitado el examen y los responsables son la
Bacterióloga (o) y el Auxiliar de laboratorio
3.
GENERALIDADES
Examen de sangre que permite cuantificar el Colesterol Total en un individuo
Como consideraciones especiales se debe sugerir al paciente evitar ingerir medicamentos, ya que pueden
interferir en el resultado.
Se recomienda un periodo de 12 horas después de la última comida, es decir, 12 horas de ayuno antes de la
extracción de sangre, porque la concentración de diversos metabolitos de los alimentos puede aumentar en la
sangre venosa o alterarse debido a efectos hormonales
4. DESARROLLO DE PROCEDIMIENTO DE COLESTEROL TOTAL
ESE DEPARTAMENTAL “SOLUCION SALUD”
Fecha Vigencia
Versión 2
18/12/2010
Código:
Documento
Controlado
MACROPROCESO: ASISTENCIAL
PROCESO: LABORATORIO CLINICO
PROCEDIMIENTO: Procesamiento de colesterol total.
No
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
COMO
1
INICIO
-
-
-
Bacteriólogo
o Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado
en la orden
medica
Área de toma
de muestra
Extracción de sangre por
venopunción, recolectada en
tubo tapa roja (Sin
anticoagulante), previamente
identificado y el Número de
identificación del paciente se
consigna en el libro de Química
Clínica.
2
3
Toma de la
muestra
Procesamiento
de la muestra
Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado
en la orden
medica
Importante: el paciente debe
tener un ayuno no mayor a 12
horas.
Área de
procesamiento
Para la separación de la
muestra esta se centrifuga
entre 2000 a 2500 r.p.m por un
periodo de 10 a 15 minutos,
obteniéndose de esta manera
suero libre de hemólisis
ESE Departamental Solución
salud
Código
PR-LAB-07
Fecha Vigencia
27/03/2011
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
DE COLESTEROL TOTAL
Montaje de la
prueba
Bacteriólogo
Una vez
obtenido el
suero
Página
18
Versión 2
Área de
procesamiento
de Química
Documento
Controlado
Realizar el montaje respectivo,
10ml de la muest ra con respecto
a 1ml del reactivo, patrón o
blanco, mezclar e incubar a
temperatura ambiente durante 10
minutos, leer a una longitud de
500nm de absorbancia frente al
blanco y al patrón, consignar el
resultado en el libro de Química
Importante: antes de iniciar el
montaje de la técnica, sacar los
reactivos de la nevera y dejarlos
atemperar, y seguir las
indicaciones establecidas por el
fabricante del reactivo.
Trascripción de
resultados
Bacteriólogo
FIN
-
Apenas se
finalice el
análisis de
la muestra y
quede
consignado
el resultado
en el libro
-
Área de
procesamiento
de Química
Diligenciar el formato de reporte
de resultados en la sección de
Química, en el espacio señalado
para Colesterol con firma y sello
del Bacteriólogo.
-
-
5. REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE REGISTRO
Formato de Química
Clínica
CÓDIGO
RESPONSABLE
TIEMPO
IDENTIFICACIÓ
DE
DE
N DE LA
ALMACENAMIEN RETENCIÓ
CARPETA
TO
N
FR-LC-02
Química Clínica
Bacteriólogo (a)
20 años
DESTINO
FINAL
Destrucción
6. TERMINOS Y DEFINICIONES

VENOPUNCION: Conjunto de pasos involucrados en la obtención de una muestra de sangre
adecuadamente.

MUESTRA DEL PACIENTE: Volumen de sangre o cualquier otro fluido biológico recolectado
adecuadamente para realizar uno o más exámenes de laboratorio clínico.

LIPEMIA: Las muestras de plasma y suero que presentan turbidez en grados variables debido a un
aumento de la concentración de lipoproteínas. En casi todos los casos, la turbidez esta ocasionada por una
concentración elevada de triglicéridos o de especies macromoleculares de lipoproteínas.

HEMOLISIS: Se define como la salida de los componentes de las células sanguíneas al plasma o suero. Se
reconoce comúnmente
por un aspecto más o menos rojizo del plasma o del suero después de la
centrifugación, ocasionado por la hemoglobina liberada desde los eritrocitos.

VALOR DE REFERENCIA: Valor de una magnitud biológica obtenido por la medida en un individuo que
pertenece a la muestra de un grupo de referencia definido
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-08
salud
PROCESAMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE TRIGLICERIDOS
Página
19
Documento
Controlado
PROCESAMIENTO PARA
ANALISIS DE
TRIGLICERIDOS
6
5
4
3
2
FIN
Trascripcion
Montaje
Procesamiento
Toma de la
muestra
INICIO
PROCEDIMIENTO
No FLUJOGRAMA
1
Bacteriólog
o o Auxiliar
de
Laboratorio
Bacteriólo
go
Bacteriólog
o
-
Cálculo
Trascripci
ón de
resultado
s
FIN
-
Área de
procesam
iento de
Química
Área de
procesa
miento
de
Química
Luego de realizar
lecturas de
Absorbancia de
patrón y muestra
Apenas se finalice el
análisis de la
muestra y quede
consignado el
resultado en el libro
-
Área de
procesam
iento de
Química
Área de
procesam
iento
Área de
toma de
muestra
-
Una vez obtenido el
suero
Una vez identificado
el examen solicitado
en la orden medica
Una vez identificado
el examen solicitado
en la orden medica
-
Bacteriólog
o
Montaje
de la
prueba
Procesam
iento de
Auxiliar de
la
Laboratorio
muestra
Toma de
la
muestra
Inicio
COMO
-
Diligenciar el formato de reporte de resultados en la sección de Química, en el
espacio señalado para Trigliceridos con firma y sello del Bacteriólogo.
Aplicar la fórmula:
Concentración de patrón X Abs muestra/ Abs patrón.
Previamente se ha analizado el control de calidad interno para validar la
corrida
Las técnicas estandarizadas varían según la casa comercial en uso, a lo cual debe
darse prioridad.
Importante: antes de iniciar el montaje de la técnica, sacar los reactivos de la
nevera y dejarlos atemperar, y seguir las indicaciones establecidas por el fabricante
del reactivo.
Nota: El montaje varía de acuerdo a la técnica utilizada y a la casa comercial.
Valores de referencia:
 Normal: menos de 150 mg/dL
 Limítrofe alto: 150 a 199 mg/dL
 Alto: 200 a 499 mg/dL
 Muy alto: 500 mg/dL o superior
Realizar el montaje respectivo, 10 l de la muestra con respecto a 1ml del reactivo,
patrón o blanco, mezclar e incubar a temperatura ambiente durante 10 minutos,
leer a una longitud de 500nm de absorbancia frente al blanco y al patrón, consignar
el resultado en el libro de Química
Extracción de sangre por venopunción, recolectada en tubo tapa roja (Sin
anticoagulante), previamente identificado y el Número de identificación del paciente
se consigna en el libro de Química Clínica.
Importante: el paciente debe tener un ayuno no mayor a 12 horas.
Para la separación de la muestra esta se centrifuga entre 2000 a 2500 r.p.m por
un periodo de 10 a 15 minutos , obteniéndose de esta manera suero libre de
hemólisis
PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS DE TRIGLICÉRIDOS
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-08
salud
PROCESAMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE TRIGLICERIDOS
Página
20
Documento
Controlado
ESE Departamental Solución
salud
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE COLESTEROL HDL
Código
PR-LAB-09
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
21
Documento
Controlado
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE
COLESTEROL HDL
ESE Departamental Solución
salud
Código
PR-LAB-09
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE COLESTEROL HDL
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
22
Documento
Controlado
1.
OBJETIVO
Establecer los pasos adecuados a seguir en el procesamiento de la muestra para Colesterol HDL que
garanticen la calidad del resultado final del examen.
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Se les realiza a los pacientes a los que el médico les haya solicitado el examen y los responsables son la
Bacterióloga (o) y el (la) Auxiliar de laboratorio
3.
GENERALIDADES
Examen de sangre que permite cuantificar el Colesterol HDL en un individuo
Como consideraciones especiales se debe sugerir al paciente evitar ingerir medicamentos, ya que pueden
interferir en el resultado.
Se recomienda un periodo de 12 horas después de la última comida, es decir, 12 horas de ayuno antes de la
extracción de sangre, porque la concentración de diversos metabolitos de los alimentos puede aumentar en la
sangre venosa o alterarse debido a efectos hormonales
Las técnicas estandarizadas varían según la casa comercial en uso, a lo cual debe darse prioridad.
Valores de referencia:
· Colesterol HDL o bueno mayor a 45 mg/dl en mujeres y mayor a 35 mg/dl en hombres.
· Colesterol LDL o malo hasta 130 mg/dl.
Resultados por encima de estos valores de referencia indican la necesidad de poner en marcha una serie de
medidas para tratar de reducir aquellos valores lípidos que se encuentran elevados.
·
Realizar una dieta rica en fibra, baja en azúcares refinados; pobre en grasas saturadas y trans, rica en ácidos omega 3 y
omega 6.
Practicar actividad física en forma periódica.
Reducir el consumo de alcohol.
No fumar.
Tomar la medicación que el médico considere pertinente, si fuese necesario.
·
·
·
·
Es necesario tener en cuenta que la importancia de la interpretación de los valores de lípidos en sangre,
radica en la posibilidad de prevenir enfermedades que no sólo afecten a la calidad de vida, sino también a
prevenir patologías, que puedan llevar a una muerte súbita.
4. DESARROLLO DE PROCEDIMIENTO DE COLESTEROL HDL
No
1
2
3
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
COMO
INICIO
-
-
-
Bacteriólogo
o Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado
en la orden
medica
Extracción de sangre por
venopunción, recolectada en
tubo tapa roja (Sin
anticoagulante), previamente
identificado y el Número de
identificación del paciente se
consigna en el libro de Química
Clínica.
Toma de la
muestra
Procesamiento
de la muestra
Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado
en la orden
medica
Área de toma
de muestra
Importante: el paciente debe
tener un ayuno no mayor a 12
horas.
Área de
procesamiento
Para la separación de la
muestra esta se centrifuga
entre 2000 a 2500 r.p.m por un
periodo d e 10 a 15 minutos,
obteniéndose de esta manera
suero libre de hemólisis
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE COLESTEROL HDL
4
Montaje de la
prueba
Bacteriólogo
Una vez
obtenido el
suero
Código
PR-LAB-09
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Área de
procesamiento
de Química
Página
23
Documento
Controlado
Realizar el montaje respectivo:
Se toman 500 ml de reactivo
HDL y 200 ml de muestra en un
tubo de ensayo, se mezcla y se
deja en reposo por 10 minutos,
pasado este tiempo se lleva a
centrifugar por otros 10
minutos, finalmente del
sobrenadante se toman 10
ml
con respecto a 1ml del reactivo
de Colesterol Total, patrón o
blanco, mezclar e in
cubar a
temperatura ambiente durante
10 minutos, leer a una longitud
de 500nm de absorbancia
frente al blanco y al patrón,
consignar el resultado en el
libro de Química
Importante: antes de iniciar el
montaje de la técnica, sacar los
reactivos de la nevera y dejarlos
atemperar, y seguir las
indicaciones establecidas por el
fabricante del reactivo.
5
Trascripción
de resultados
6
Bacteriólogo
FIN
-
Apenas se
finalice el
análisis de
la muestra
y quede
consignado
el
resultado
en el libro
-
Área de
procesamiento
de Química
Diligenciar el formato de reporte
de resultados en la sección de
Química, en el espacio
señalado para Colesterol HDL
con firma y sello del
Bacteriólogo.
-
-
5. REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE
REGISTRO
Formato de Química
Clínica
RESPONSABLE
IDENTIFICACIÓ
DE
CÓDIGO N DE LA
ALMACENAMIEN
CARPETA
TO
FR-LABQuímica Clínica Bacteriólogo (a)
02
TIEMPO
DE
DESTINO
RETENCIÓ FINAL
N
20 años
Destrucción
ESE Departamental Solución
salud
Código
PR-LAB-09
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE COLESTEROL HDL
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
24
Documento
Controlado
6. TERMINOS Y DEFINICIONES

VENOPUNCIÓN: Conjunto de pasos involucrados en la obtención de una muestra de sangre
adecuadamente.

MUESTRA DEL PACIENTE: Volumen de sangre o cualquier otro fluido biológico recolectado
adecuadamente para realizar uno o más exámenes de laboratorio clínico.

LIPEMIA: Las muestras de plasma y suero que presentan turbidez en grados variables debido a un
aumento de la concentración de lipoproteínas. En casi todos los casos, la turbidez esta ocasionada por una
concentración elevada de triglicéridos o de especies macromoleculares de lipoproteínas.

HEMOLISIS: Se define como la salida de los componentes de las células sanguíneas al plasma o suero. Se
reconoce comúnmente
por un aspecto más o menos rojizo del plasma o del suero después de la
centrifugación, ocasionado por la hemoglobina liberada desde los eritrocitos.

VALOR DE REFERENCIA: Valor de una magnitud biológica obtenido por la medida en un individuo que
pertenece a la muestra de un grupo de referencia definido
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA EL
ANALISIS DE ACIDO URICO
Versión 2
Código
PR-LAB-10
Fecha Vigencia
27/03/2011
PROCEDIMIENTO PARA EL
ANALISIS DE ACIDO URICO
Página
25
Documento
Controlado
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA EL
ANALISIS DE ACIDO URICO
Código
PR-LAB-10
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
26
Documento
Controlado
1.
OBJETIVO
Establecer los pasos adecuados a seguir en el procesamiento de la muestra para Acido Úrico, que garanticen
la calidad del resultado final del examen.
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Se les realiza a los pacientes a los que el médico les haya solicitado el examen y los responsables son la
Bacterióloga (o) y el Auxiliar de laboratorio
3.
GENERALIDADES
Examen de sangre que permite cuantificar el Acido Úrico en un individuo
Como consideraciones especiales se debe sugerir al paciente evitar ingerir medicamentos, ya que pueden
interferir en el resultado.
Se recomienda un periodo de 12 horas después de la última comida, es decir, 12 horas de ayuno antes de la
extracción de sangre, porque la concentración de diversos metabolitos de los alimentos puede aumentar en la
sangre venosa o alterarse debido a efectos hormonales
4. DESARROLLO DE PROCEDIMIENTO DE ACIDO URICO
No
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
COMO
1
Inicio
-
-
-
Extracción de sangre por
venopunción, recolectada en
tubo tapa roja (Sin
anticoagulante), previamente
identificado y el Número de
identificación del paciente se
consigna en el libro de
Química Clínica.
2
3
Toma de la
muestra
Una vez
identificado
Bacteriólogo
el examen
o Auxiliar de
solicitado
Laboratorio
en la orden
medica
Procesamiento Auxiliar de
de la muestra Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado
en la orden
medica
Área de toma
de muestra
Importante: el paciente debe
tener un ayuno no mayor a
12 horas.
Para la separación de la
muestra esta se centrifuga
entre 2000 a 2500 r.p.m por
Área de
un periodo de 10 a 15
procesamiento
minutos, obteniéndose de
(Centrifugación)
esta manera suero libre de
hemólisis
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA EL
ANALISIS DE ACIDO URICO
4
Montaje de la
prueba
Bacteriólogo
Una vez
obtenido el
suero
Código
PR-LAB-10
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Área de
procesamiento
de Química
Página
27
Documento
Controlado
Realizar el monta je
respectivo, 25 ml de la
muestra, patrón o blanco,
con respecto a 1ml del
reactivo mezclar e incubar a
temperatura ambiente
durante 10 minutos, leer a
una longitud de 520nm de
absorbancia frente al blanco
y al patrón, para el cálculo se
tendrá en cuenta
la
Absorbancia Muestra /
Absorbancia Patrón. x
Concentración. de Patrón y
se consignaran los resultado
en el libro de Química
Importante: antes de iniciar
el montaje de la técnica,
sacar los reactivos de la
nevera y dejarlos atemperar,
y seguir las i
ndicaciones
establecidas por el fabricante
del reactivo.
5
Trascripción
de resultados
6
Bacteriólogo
FIN
-
Apenas se
finalice el
análisis de
la muestra y
quede
consignado
el resultado
en el libro
-
Área de
procesamiento
de Química
Diligenciar el formato de
reporte de resultados en la
sección de Química, en el
espacio señalado para Acido
Úrico con firma y sello del
Bacteriólogo
-
-
5. REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE
REGISTRO
RESPONSABLE
IDENTIFICACIÓ
DE
CÓDIGO N DE LA
ALMACENAMIEN
CARPETA
TO
TIEMPO
DE
DESTINO
RETENCIÓ FINAL
N
Formato de Química
Clínica
FR-LC-02 Química Clínica
20 años
Bacteriólogo (a)
Destrucción
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA EL
ANALISIS DE ACIDO URICO
Versión 2
Código
PR-LAB-10
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
28
Documento
Controlado
6. TERMINOS Y DEFINICIONES

VENOPUNCION: Conjunto de pasos involucrados en la obtención de una muestra de sangre
adecuadamente.

MUESTRA DEL PACIENTE: Volumen de sangre o cualquier otro fluido biológico recolectado
adecuadamente para realizar uno o más exámenes de laboratorio clínico.

LIPEMIA: Las muestras de plasma y suero que presentan turbidez en grados variables debido a un
aumento de la concentración de lipoproteínas. En casi todos los casos, la turbidez esta
ocasionada por una concentración elevada de triglicéridos o de especies macromoleculares de
lipoproteínas.

HEMOLISIS: Se define como la salida de los componentes de las células sanguíneas al plasma o
suero. Se reconoce comúnmente por un aspecto más o menos rojizo del plasma o del suero
después de la centrifugación, ocasionado por la hemoglobina liberada desde los eritrocitos.

VALOR DE REFERENCIA: Valor de una magnitud biológica obtenido por la medida en un
individuo que pertenece a la muestra de un grupo de referencia definido
ESE Departamental Solución
salud
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS
DE CREATININA
Código
PR-LAB-11
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
29
Documento
Controlado
PROCEDIMIENTO PARA
EL ANANLISIS
DE CREATININA
ESE Departamental Solución
salud
Código
PR-LAB-11
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
PROCEDIMIENTO PARA EL
ANALISIS DE CREATININA
Página
30
Documento
Controlado
1.
OBJETIVO
Establecer los pasos adecuados a seguir en el procesamiento de la muestra para Creatinina que garanticen la
calidad del resultado final del examen.
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Se les realiza a los pacientes a los que el médico les haya solicitado el examen y los responsables son la
Bacterióloga (o) y el Auxiliar de laboratorio
3.
GENERALIDADES
Examen de sangre que permite cuantificar la Creatinina en un individuo
Como consideraciones especiales se debe sugerir al paciente evitar ingerir medicamentos, ya que
pueden interferir en el resultado. Igualmente se recomienda evitar el ejercicio previo.
No requiere ayuno obligatorio.
Las técnicas estandarizadas varían según la casa comercial en uso, a lo cual debe darse prioridad.
Valor de referencia
Suero:
Mujer: 0,5-0,9 mg/dl
Hombre: 0,6-1,1 mg/dl
Orina:
1,0-1,6 g/24 hs.
Se ha observado parámetros (creatinina sérica) resultan importantes tanto en el diagnóstico como en
el pronóstico de nefropatías, obstrucciones urinarias (por afección de próstata, vejiga, uréter) y
anurias reflejas (secundarias a cálculos uretrales, por ej.) que pueden producir elevaciones de
creatinina, reversibles luego de reparada la afección.
Aumentado: En suero, por insuficiencia renal aguda, insuficiencia renal crónica, acromegalia y
gigantismo activos, hipertiroidismo.
En orina, por diabetes mellitus, infecciones, gigantismo, ejercicio.
Disminuido: En suero, por embarazo y en estados de caquexia por reducción de la masa muscular.
En orina, por insuficiencia renal, miopatías, leucemias, anemias.
4. DESARROLLO DE PROCEDIMIENTO DE CREATININA
No
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
COMO
1
Inicio
-
-
-
Bacteriólogo
o Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado en
la orden
medica
Área de toma
de muestra
Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado en
la orden
medica
Área de
procesamiento
Extracción de sangre por
venopunción, recolectada en
tubo tapa roja (Sin
anticoagulante), previamente
identificado y el Número de
identificación del paciente se
consigna en el libro de Química
Clínica.
Importante: el paciente debe
tener un ayuno no mayor a 12
horas.
Para la separación de la
muestra esta se centrifuga
entre 2000 a 2500 r.p.m por un
periodo de 10 a 15 minutos,
obteniéndose de esta manera
suero libre de hemólisis
2
3
Toma de la
muestra
Procesamiento
de la muestra
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO CREATININA
Código
PR-LAB-11
Versión 2
Página
31
Documento
Controlado
Fecha Vigencia
27/03/2011
Realizar el montaje respectivo,
100ml de la muestra con
respecto a 1ml del reactivo,
patrón o blanco, mezclar e
iniciar el cronometro, después
de 30 segundos leer la
Absorbancia A1 y la
Absorbancia A2 a los 2
minutos, Exactamente a una longitud de
500nm de absorbancia frente
al blanco y al patrón, para
realizar los cálculos
4
Montaje de la
prueba
Una vez
Bacteriólogo obtenido el
suero
Área de
procesamiento
de Química
resp ectivos se debe restar A2
– A1 = Absorbancia de la
muestra o del patrón, y luego
con los datos obtenidos A
Muestra / A Patrón x
Concentración de Patrón, y
consignar el resultado en el
libro de Química
Importante: antes de iniciar el
montaje de la técni ca, sacar los
reactivos de la nevera y
dejarlos atemperar, y seguir las
indicaciones establecidas por el
fabricante del reactivo.
Diluir NaOH con agua destilada
en proporción 1 + 4 y
almacenar esta solución en un
recipiente plástico.
Mezclar Ácido pícrico y NaOH
diluido en proporción 1 + 1 que
será el reactivo de trabajo
5
Trascripción
de resultados
6
FIN
Apenas se
finalice el
análisis de
Área de
la muestra y
Bacteriólogo
procesamiento
quede
de Química
consignado
el resultado
en el libro
-
Diligenciar el formato de reporte
de resultados en la sección de
Química, en el espacio
señalado para Creatinina con
firma y sello del Bacteriólogo
-
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-11
salud
PROCEDIMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE CREATININA
Página
32
Documento
Controlado
5. REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE
REGISTRO
Formato de Química
Clínica
CÓDIGO
IDENTIFICACIÓ
N DE LA
CARPETA
RESPONSABLE
DE
ALMACENAMIEN
TO
TIEMPO
DE
DESTINO
RETENCIÓ FINAL
N
FR-LAB02
Química Clínica
Bacteriólogo (a)
20 años
Destrucción
6. TERMINOS Y DEFINICIONES

VENOPUNCION: Conjunto de pasos involucrados en la obtención de una muestra de sangre
adecuadamente.

MUESTRA DEL PACIENTE: Volumen de sangre o cualquier otro fluido biológico recolectado
adecuadamente para realizar uno o más exámenes de laboratorio clínico.

LIPEMIA: Las muestras de plasma y suero que presentan turbidez en grados variables debido a un
aumento de la concentración de lipoproteínas. En casi todos los casos, la turbidez esta ocasionada por una
concentración elevada de triglicéridos o de especies macromoleculares de lipoproteínas.

HEMOLISIS: Se define como la salida de los componentes de las células sanguíneas al plasma o suero. Se
reconoce comúnmente
por un aspecto más o menos rojizo del plasma o del suero después de la
centrifugación, ocasionado por la hemoglobina liberada desde los eritrocitos.

VALOR DE REFERENCIA: Valor de una magnitud biológica obtenido por la medida en un individuo que
pertenece a la muestra de un grupo de referencia definido
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
DE GOTA GRUESA
Versión 2
Código
PR-LAB-12
Fecha Vigencia
27/03/2011
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE
GOTA GRUESA
Página
33
Documento
Controlado
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-12
salud
Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA
27/03/2011
ANALISIS DE GOTA GRUESA
Página
34
Documento
Controlado
1.
OBJETIVO
Establecer los pasos adecuados a seguir en el procesamiento de la muestra para hemoparásitos (Gota
Gruesa) que garanticen la calidad del resultado final del examen.
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Se les realiza a los pacientes a los que el médico les haya solicitado el examen y los responsables son la
Bacterióloga (o) y el Auxiliar de laboratorio
3.
GENERALIDADES
Examen de sangre realizado para búsqueda e identificación de diferentes tipos de Plasmodium
NO requiere ayuno
Se recomienda si el resultado inicial es negativo y se tiene la sospecha de la enfermedad tomar la siguiente
muestra cuando el paciente presente pico febril.
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-12
salud
Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA
27/03/2011
ANALISIS DE GOTA GRUESA
Página
35
Documento
Controlado
4. DESARROLLO DE PROCEDIMIENTO DE GOTA GRUESA - HEMOPARASITO
No
1
2
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
Inicio
-
-
-
Toma d e la
muestra
Bacteriólogo
o Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado
en la orden
medica
Área de toma
de muestra
COMO
Extracción para la muestra de sangre
periférica por punción del dedo índice, (en
niños puede tomarse d el dedo gordo del pie o
del talón), con lanceta estéril desechable en el
borde lateral del dedo a la altura del nacimiento
de la uña, descartando la primera gota de
sangre y colocando la siguiente sobrela lámina
porta objeto previamente identificada con el
número del p aciente y se consigna en el libro
de Hematología.
NOTA: Realizar dos láminas de gota gruesa
por paciente.
3
4
Procesamiento
de la muestra
Montaje de
la muestra
Auxiliar de
Laboratorio
Bacteriólogo
Una vez
obtenida la
muestra
Una vez
obtenida la
muestra
Área de
procesamiento
Área de
coloraciones
Para configurar la gota gruesa en la lámina se
debe utilizar otra lámina limpia y con la esquina
de esta extender cada una de las dos gotas de
sangre formando imaginariamente una "N"
quedando un cuadrado homogéneo y separada
una de la otra. Hacer lo mismo con una
segunda lámina.
Para colorear se utiliza el reactivo de Field. para lo cual
se sumerge la lámina ya seca en un frasco con azul de
metileno fosfatado, se saca, se escurre y se retiran los
excesos de colorante con agua destilada, y se coloca
sobre una lámina cóncava boca abajo, a continuación
se pone a reaccionar con una mezcla preparada de la
coloración con 3ml de agua destilada 1 gota de
colorante solución A y 1 gota de colorante solución B,
por un periodo de tiempo de 9 minutos, esto por cada
lámina y se deja secar a temperatura ambiente para su
lectura.
Observar al microscopio con objetivo de 100x y buscar
las formas parasitarias de Plasmodium.
5
Lectura de
la muestra
Bacteriólogo
Una vez
coloreada
la muestra
Área de
Lectura
El cálculo se hace teniendo en cuenta los parámetros
emitidos por el Instituto Nacional de Salud de 8.000
leucocitos/ml de sangre en pacientes con malaria, o si se
ha tomado Cuadro Hemático se utilizará entonces el valor
obtenido de Leucocitos y se establece la proporción de
parásitos por cada 100 leucocitos observados.
No. parasitos x 8.000 leucocitos /
leucocitos

l

No. parasitos /

l de sangre
100
El recuento semicuantitativo se hace teniendo en cuenta
el número de parásitos por campo y se da en cruces
6
Trascripción
de
resultados
Bacteriólogo
FIN
-
Apenas se
finalice el
análisis de
la muestra
y quede
consignado
el
resultado
en el libro
-
Área de
Lectura
Diligenciar en el libro de Hematología en la parte de
Gota Gruesa y en el formato de reporte de resultados
en la sección de Hematología, en el espacio señalado
para Gota Gruesa con firma y sello del Bacteriólogo
-
-
5. REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE
REGISTRO
LIBRO DE
TRABAJO DE
HEMATOLOGIA
CÓDIGO
IDENTIFICACIÓN
DE LA CARPETA
RESPONSABLE DE
ALMACENAMIENTO
TIEMPO DE
RETENCIÓN
DESTINO
FINAL
Hematología
Bacteriólogo (a)
20 años
Destrucción
6. TERMINOS Y DEFINICIONES

MUESTRA DEL PACIENTE: Volumen de sangre o cualquier otro fluido biológico recolectado
adecuadamente para realizar uno o más exámenes de laboratorio clínico.

No.: Número

μl : Microlitros
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-13
salud
PROCEDIMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DEHEMOCLASIFICACION
PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS DE
HEMOCLASIFICACION
Página
36
Documento
Controlado
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-13
salud
PROCEDIMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE HEMOCLASIFICACION
1..
Página
37
Documento
Controlado
OBJETIVO
Producir resultados Grupos sanguíneos oportunos, confiables y que garanticen la calidad del resultado final
del examen
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Se les realiza a los pacientes a los que el médico les haya solicitado el examen y a los usuarios interesados en
conocer su Grupo sanguíneo y Factor Rh.
Los responsables son la Bacterióloga (o) y el Auxiliar de laboratorio
3.
GENERALIDADES
Examen de sangre realizado para la identificación de los diferentes tipos de Grupo Sanguíneo y Factor Rh
Como consideraciones especiales no se tiene ninguna en especial, no necesita ayuno el paciente.
Se puede utilizar sangre por venopunción con anticoagulante o por punción capilar, si es sangre capilar se debe
realizar inmediatamente para que no se seque la muestra. Si es sangre venosa se puede guardar en
refrigeración el tiempo que desee.
Los reactivos deben ser almacenados estrictamente en un rango de temperatura de 2 a 8°C, evitar colocarlos
en sitios donde reciban directamente los rayos de sol.
Evitar periodos prolongados de ruptura de la cadena de frío.
Los reactivos cada vez que son usados deben ser devueltos a la nevera.
4. MATERIALES Y EQUIPOS
>
>
>
>
>
>
>
Láminas para hemoclasificación
Equipo de venopunción o Lancetas
Palillos
Reactivo ANTI-A Monoclonal
Reactivo ANTI-B Monoclonal
Reactivo ANTI-D Monoclonal
Reactivo ANTI-CDE Monoclonal
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-13
salud
PROCEDIMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DEHEMOCLASIFICACION
Página
38
Documento
Controlado
5. DESARROLLO DE PROCEDIMIENTO DE HEMOCLASIFICACION
No
QUE
1
Inicio
2
Toma de la
muestra
QUIEN
CUANDO
-
Una vez
identificado
el examen
Bacteriólogo
solicitado
Área de toma
o Auxiliar de
en la orden de muestra
Laboratorio
medica o
Recibo de
caja
3
Montaje de
la prueba
Una vez
Bacteriólogo tomada la
muestra
4
Lectura de
la reacción
por
aglutinación
Una vez
Bacteriólogo procesada
la muestra
5
6
DONDE
Apenas se
finalice el
análisis de
Trascripción
la muestra
de
Bacteriólogo y quede
resultados
consignado
el
resultado
en el libro
FIN
-
COMO
Extracción de sangre por venopunción,
recolectada en tubo tapa lila (Con
anticoagulante) , previamente identificado y
el número de identificación del paciente se
consigna en el libro de Hematologìa, en la
parte de Hemoclasificación
Una vez identificada la placa con el número
de muestra a p rocesar, se coloca sobre ella
una gota de sangre total en cada uno de los
tres cuadros, tal como están especificados:
Área de
Anti D, Anti B y Anti A, de forma vertical,
procesamiento
luego se toman cada uno de los reactivos:
de
Anti D, Anti B y Anti A, y se le adiciona una
Hematología
gota de cada uno de ellos correlacionando
con los espacios marcados sobre la placa y
se mezcla cada muestra con reactivo con
un palillo diferente.
Área de
La lectura se da por la identificación de la
procesamiento aglutinación de Grupo Sanguíneo y Rh de
de
cada muestra.
Hematología
Área de
procesamiento
de
Hematología
Diligenciar en el libro de Hematología en la
parte de Hemoclasificación el resultado y en
el formato de reporte de resultados en la
sección de Hemoclasificación (Grupo
Sanguíneo y Factor Rh), con firma y sello
del Bacteriólogo
-
-
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-13
salud
PROCEDIMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALSIS DE HEMOCLASIFICACION
NOMBRE
REGISTRO
Formato
hematología
de
Página
39
Documento
Controlado
CÓDIGO
IDENTIFICACIÓ
N DE LA
CARPETA
RESPONSABLE
DE
ALMACENAMIEN
TO
TIEMPO
DE
DESTINO
RETENCIÓ FINAL
N
FR-LC-01
Hematología
Bacteriólogo (a)
20 años
Destrucción
7. TERMINOS Y DEFINICIONES
El glóbulo rojo contiene en su membrana gran cantidad de antígenos que han hecho necesaria su clasificación.
Esta clasificación esta basada en los diferentes grupos sanguíneos, los más conocidos son: Sistema ABO y
Sistema Rhesus. EL sistema ABO se hereda. Si una persona tiene el antígeno, no presenta el anticuerpo
correspondiente, por lo tanto al poner en contacto el glóbulo rojo con anticuerpos monoclonales, una
aglutinación indica positivo para el anticuerpo utilizado

ANTICOAGULANTES: Son sustancias que previenen la formación de coágulos. Existen diferentes tipos de
ellos en polvo o líquidos. Debe seleccionarse siempre el anticoagulante apropiado según el estudio que se
requiera realizar. Los anticoagulantes más comúnmente utilizados son: EDTA, Citrato de sodio, Heparina,
Oxalatos.

EDTA: (ETILEN-DIAMINO-TETRA-ACETATO) Este tipo de anticoagulante es utilizado principalmente
cuando se realizan estudios en donde se cuentan células. Funciona quedando el calcio.
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-14
salud
PROCEDIMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE LEISHMANIASIS
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE
LEISHMANIASIS
Página
40
Documento
Controlado
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-14
salud
PROCEDIMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE LEISHMANIASIS
1.
Página
41
Documento
Controlado
OBJETIVO
Establecer los pasos adecuados a seguir para una correcta obtención y procesamiento de la muestra para
Leishmaniasis, que garanticen la calidad del resultado final del examen.
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Se les realiza a los pacientes a los que el médico les haya solicitado el examen y los responsables son la
Bacterióloga (o) y el (la) Auxiliar de laboratorio
3.
GENERALIDADES
Explíquele el procedimiento al paciente y en caso de niños, a los padres.
>
Pídale al paciente que se siente cómodo.
>
Interrogue al paciente sobre cuantas lesiones tiene, cuando se inicio la lesión, cual es la última
en aparecer, cuanto tiempo lleva con las lesiones, ubicación geográfica cuando se iniciaron las
lesiones y si ha recibido tratamiento prescrito por un profesional o si se ha auto medicado.
4.
>
Lávese las manos. Todo el procedimiento debe ser aséptico.
>
Limpiar y desinfectar el área de la lesión.
DESARROLLO DE PROCEDIMIENTO DE TOMA DE MUESTRA PARA LEISHMANIASIS
No
1
2
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
COMO
Inicio
-
-
-
Bacteriólogo
o Auxi liar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado en
la orden
medica
Área de toma
de muestra
Recoger la muestra en
lámina porta objeto
previamente identificada
con el número del paciente
y se consigna en el libro de
Hematología y /o
parasitología
Por medio de un examen
directo hacer un raspado
del borde interno de la
úlcera o haciendo una
incisión y raspando el
borde activo de la lesión.
NOTA: Si existen varias
lesiones debe escogerse
para el examen la más
reciente.
Realizar tres láminas con
tres muestras en cada una
por paciente y dejar secar a
temperatura ambiente
Toma de la
muestra
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-14
salud
PROCEDIMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE LEISHMANIASIS
3
4
Montaje de
la muestra
Lectura de la
muestra
Bacteriólogo
Bacteriólogo
Una vez
obtenida la
muestra
Una vez
coloreada
la muestra
Área de
coloraciones
Área de
Lectura
Colocar a reaccionar
la
lámina con el extendido ya
seco, sobre una lámina
cóncava boca aba jo, con
colorante de Giemsa al
10% en solución
amortiguada de fosfatos
Ph 7,2 durante 10 minutos,
o con colorante de Wright,
o col oración de Field
Dejando secar la lámina a
temperatura ambiente para
su lectura
Observe a través del
microscopio con el objetivo
de inmersión, la presencia
de amastigotes que
pueden encontrarse intra o
extracelularmente.
El examen directo se
interpreta como positivo
cuando se encuentran uno
o m ás amastigotes y
negativo cuando no se
encuentran amastigotes
después de haber
recorrido un mínimo de
100 campos Si el primer
examen directo es
negativo, debe repetirse el
procedimiento en la misma
forma señalada. Si dos
exámenes directos son
negativos y p
ersiste la
sospecha clínica de
leishmaniasis, debe
practicarse biopsia.
INFORME
Negativo
5
Trascripción
de
resultados
Bacteriólogo
6
FIN
-
Apenas se
finalice el
análisis de
la muestra y
quede
consignado
el resultado
en el libro
-
Área de
Lectura
-
Página
42
Documento
Controlado
: Positivo o
Diligenciar el libro de
registro al igual que el
formato de reporte de
resultados en el espacio
señalado para
Leishmaniasis con firma y
sello del Bacteriólogo
-
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-14
salud
PROCEDIMIENTO PARA
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE LEISHMANIASIS
Página
43
Documento
Controlado
5. REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE
REGISTRO
LIBRO DE
TRABAJO DE
MICROSCOPIA
CLINICA
6.
CÓDIGO
IDENTIFICACIÓ
N DE LA
CARPETA
RESPONSABLE DE
ALMACENAMIENTO
FR-LAB-04
Microscopia
Clínica
Bacteriólogo (a)
TIEMPO DE DESTINO
RETENCIÓN
FINAL
20 años
Destrucci
ón
6. TERMINOS Y DEFINICIONES

CASO PROBABLE: Paciente con lesiones cutáneas procedente de áreas endémicas , con
evolución de dos semanas, ulcera redonda u ovalada con bordes levantados, lesiones
nodulares,, lesiones satélites, y Adenopatía localizada

CASO CONFIRMADO: caso probable en el que se demuestre por métodos parasitológicos o
genéticos parásitos del genero Leishmania

MUESTRA DEL PACIENTE: Volumen de sangre o cualquier otro fluido biológico recolectado
adecuadamente para realizar uno o más exámenes de laboratorio clínico.

VALOR DE REFERENCIA: Valor de una magnitud biológica obtenido por la medida en un
individuo que pertenece a la muestra de un grupo de referencia definido.

INFORME POSITIVO: Se observan amastigotes de Leishmania SP en la muestra examinada

INFORME NEGATIVO: No se observan amastigotes
ESE Departamental Solución
salud
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS PARCIAL
DE ORINA
Código
PR-LAB-15
Fecha Vigencia
27/03/2011
PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS PARCIAL
DE ORINA
Página
44
Documento
Controlado
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS PARCIAL
DE ORINA
Código
PR-LAB-15
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
45
Documento
Controlado
1.
OBJETIVO
Establecer los pasos adecuados a seguir en el procesamiento de la muestra para el Parcial de Orina que
garanticen la calidad del resultado final del examen.
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Se les realiza a los pacientes a los que el médico les haya solicitado el examen y los responsables son la
Bacterióloga (o) y el Auxiliar de laboratorio
3.
GENERALIDADES

Se debe recolectar la primera orina de la mañana
 Antes de recolectar la muestra, se debe realizar aseo de los genitales con agua y jabón sin dejar residuos.
Esto especialmente en las mujeres, con el fin de evitar la contaminación de la muestra con cremas,
antisépticos o secreciones vaginales.
 En los hombres es necesario retraer el prepucio y practicar una buena limpieza en el glande y el meato
 Desechar la primera parte de la micción y recoger 10 ml aproximadamente de orina del chorro intermedio.
Evitando que el recipiente colector, evitando que roce el área de la vulva, la piel o la ropa.
 En niños o niñas pequeños la orina se recoge en colectores o bolsas estériles especialmente diseñados
para ellos. Si no se obtiene la muestra, se debe tener la precaución de cambiar la bolsa mínimo cada hora
para evitar la contaminación de la misma.
Cómo usar tiras reactivas para orina
1. Retire una tira reactiva. No toque las áreas reactivas. Cierre el tubo inmediatamente protegiendo las tiras restantes
contra humedad y conservando la calidad del producto hasta la fecha de vencimiento. Sumerja la tira reactiva en la orina
recién recolectada por 1 segundo.
2. Elimine el exceso de orina pasando la lateral de la tira en el borde del recipiente.
3. Lea el resultado comparando las áreas reactivas con la escala cromática después de 30 – 60 segundos.
4. Lea el resultado del área para leucocitos después de 60 – 120 segundos
No considere cambios de color desarrollados tras 2 minutos.
Parámetros
Sangre: Infecciones severas de los riñones y del tracto urinario, urolitiasis, sospecha de neoplasma del riñón o de la
vejiga.
Urobilinógeno: Daños severos y crónicos del parénquima hepático, ictericia hemolítica, estado patológico del tracto
intestinal.
Bilirrubina: Daños del parénquima hepático, ictericia obstructiva (indica también obstrucciones biliares).
Proteína: Sintomático para enfermedades localizadas en los tractos hepáticos y renales.
Nitrito: Infección bacteriana de los riñones o del tracto urinario.
Cetonas: Anomalías en el metabolismo, indicación de cetoacidosis.
Glucosa: Detección en la fase latente y supervisión de diabetes melitus.
Valor pH: Útil respecto a otros parámetros.
Recomendaciones:
Almacenar según las recomendaciones de temperatura y humedad dadas por el fabricante.
4. DESARROLLO DE PROCEDIMIENTO DE PARCIAL DE ORINA
No
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
COMO
1
Inicio
-
-
-
2
Recepción
de la
muestra
Bacteriólogo
o Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado
en la orden
medica
Muestras
recibidas
identificadas con
número de
registro del
Laboratorio
Área de toma de
muestra
Importante: el
paciente debe
traer recolectada
la muestra en el
recipiente
indicado para
ello y bien
identificada
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS PARCIAL
DE ORINA
3
Procesamiento
de la muestra
Auxiliar de
Laboratorio
Código
PR-LAB-15
Versión 2
Una vez
identificado el
examen
solicitado en
la orden
medica
Fecha Vigencia
27/03/2011
Área de
procesamiento
4
Procesamiento
de la muestra
Bacteriólogo
Una vez
realizado el
examen físico
Área de
procesamiento
5
Montaje de la
muestra
Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
realizado el
examen
físico-químico
Área de
procesamiento
(Centrifugación)
6
Lectura de la
muestra
Bacteriólogo
Una vez
realizado el
examen
físico-químico
Área de
Microscopia
Página
46
Documento
Controlado
Servir las
muestras en el
tubo respectivo
previamente
marcado, e
identificar el color
y aspecto
(EXAMEN
FISICO) de cada
una de las orinas
y anotarlo en el
libro de registro.
Introducir en
cada uno de lo s
tubos una tira
reactiva para la
lectura de los
parámetros de la
prueba química
(EXAMEN
QUIMICO)
Centrifugar entre
2000 a 2500
r.p.m por un
periodo de 10 a
15 minutos, los
tubos con la
respectiva
muestra de orina
y luego descartar
el sobrenadante.
El
EXAMEN
MICROSCOPICO
se hace a partir
del sedimento de
la muestra p ara
observar al
microscopio
Se coloca una
gota de
sedimento en
uno de los
extremos de una
lámina
portaobjeto
marcada con el
número de la
muestra y se le
coloca encima
una lámina cubre
objeto, y se
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS PARCIAL
DE ORINA
6
Lectura de la
muestra
Bacteriólogo
Código
PR-LAB-15
Versión 2
Página
47
Documento
Controlado
Fecha Vigencia
27/03/2011
Una vez realizado el
examen físicoquímico
7
Trascripción
de resultados
Bacteriólogo
Apenas se finalice el
análisis de la
muestra y quede
consignado el
resultado en el libro
8
FIN
-
-
Área de
Microscopia
Área de
Microscopia
enfoca con el
objetivo de 40x
para informar
todos los
componentes
visualizados en
los diferentes
campos
microscópicos
(Leucocitos,
Eritrocitos,
Células
Epiteliales, Moco,
Cilindros,
Cristales,
Levaduras,
Bacterias,
Parásitos) y
anotarlas en el
libro de registro
de Parcia l de
Orina
Diligenciar el
formato de
reporte de
resultados en la
sección de
Parcial de Orina
con firma y sello
del Bacteriólogo
-
-
5. REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE
REGISTRO
CÓDIGO
IDENTIFICACIÓ
N DE LA
CARPETA
RESPONSABLE
DE
ALMACENAMIEN
TO
TIEMPO
DE
DESTINO
RETENCIÓ FINAL
N
Formato de
Microscopia Clínica
FR-LC-04
Microscopia
Clínica
Bacteriólogo (a)
20 años
Destrucción
6. TERMINOS Y DEFINICIONES

Color: El color amarillo de la orina se debe a un pigmento llamado urocromo, que es un producto del
metabolismo endógeno y puede ser Incolora, Amarilla intensa, Roja o rosada, Âmbar, Negruzca,
Blanquecina o lechosa, Verdosa o azulada

Aspecto: El aspecto es un término general que se refiere a la transparencia de la muestra de orina y
puede ser :Límpida, Turbia, Ligeramente turbia

Densidad: Se define como la gravedad específica de una sustancia comparada con la de un volumen
similar de agua destilada a una temperatura similar.
ESE Departamental Solución
salud
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS PARCIAL
DE ORINA
Código
PR-LAB-15
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
48
Documento
Controlado

Está medida permite valorar la capacidad de reabsorción del riñón a las sustancias químicas y el agua.
También detecta posible deshidratación o anormalidades de la hormona antidiurética y se puede emplear para
determinar si la concentración de la muestra es adecuada, si la muestra está muy diluida o muy concentrada.
La tira tiene un rango de densidad entre 1.000 hasta 1.030 con intervalos de 5 en 5.
La orina normalmente tiene un rango de densidad de 1.015 a 1.025

PH. Los riñones son los reguladores principales del contenido ácido básico en el cuerpo, a través de la
secreción de hidrogeniones de amonio, fosfato y ácidos orgánicos débiles y mediante la reabsorción de
bicarbonato del filtrado en los túmulos contorneados.
El pH demarcado en la tira reactiva esta desde 5.0 hasta 8.5 en algunas y en otras hasta 9.0.
El rango de pH de una orina normal está entre 6.0 y 7.0.

Proteínas: La orina normal contiene muy poca proteína, por lo general, se excretan menos de 10 mg/dl o
150 mg/dl en 24 horas. Cantidades no detectables por la tira. Esta consiste principalmente en proteínas séricas
de bajo peso molecular que se han filtrado en forma selectiva en el glomérulo.
Las proteínas demarcadas en la tira reactiva están desde negativas hasta un rango de 1000 mg/dl en
algunas y en otras hasta 2.000 mg/dl. También se pueden encontrar especificadas desde trazas hasta cuatro
++++.
 Glucosa: Las tiras emplean el método de la glucosa oxidasa mediante la impregnación del área de prueba
con una mezcla de glucosa oxidasa, peroxidasa, cromógeno y amortiguador para producir una reacción
enzimática secuencial doble.
La glucosa demarcada en la tira reactiva están desde negativa hasta un rango de >/=1000 mg/dl en algunas y
en otras hasta 2.000 mg/dl.
Una orina normal debe tener glucosa negativa.

Cetonas: El termino cetonas representa tres productos intermedios del metabolismo de las grasas:
acetona, ácido acetoacético y ácido betahidroxibutírico. Normalmente no aparecen en la orina cantidades
cuantificables de cetonas, porque toda la grasa metabolizada es desdoblada por completo hasta bióxido de
carbono y agua.
Las tiras reactivas emplean la reacción con nitro prusiato de sodio para medir la cetona. En esta reacción el
ácido acetoacético en un medio alcalino reacciona con el nitro prusiato para producir un color púrpura.
Las cetonas demarcadas en la tira reactiva están desde negativas hasta un rango de 100 mg/dl en algunas y
en otras hasta 160 mg/dl. También se pueden encontrar especificadas desde trazas hasta tres +++.

Sangre: Se puede encontrar sangre en orina en forma de eritrocitos intactos (hematuria) o como
hemoglobina (hemoglobinuria).
Las tiras detectan concentraciones entre 5 y 10 eritrocitos por microlitro, pero son ligeramente más sensibles a
la hemoglobina libre que a los eritrocitos intactos.
Los hematíes demarcados en la tira reactiva están desde negativos hasta un rango de 200 Cel/ul en algunas
y en otras hasta 250 Cel/ul. También se pueden encontrar especificadas desde trazas hasta tres +++.
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS PARCIAL
DE ORINA
Versión 2
Código
PR-LAB-15
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
49
Documento
Controlado

Bilirrubina: La aparición de bilirrubina en la orina es la primera indicación de enfermedad hepática y con
frecuencia se detecta mucho antes del desarrollo de la ictericia.
Las tiras reactivas utilizan la reacción diazo. La bilirrubina se combina con sal de diazonium 2,4 dicloroanilina o
2,6 diclorobenceno – diazonio tetrafluoroborato en un medio ácido para producir colores que varían desde
grados recientes de bronceado o rosa violeta, respectivamente.
Los resultados cualitativos se informan como negativo, escaso, moderado o elevado, o como negativo 1+, 2+,
3+. Algunas tiras demarcan valores desde negativo hasta 3.0 mg/dl.
Las reacciones de color en las tiras reactivas para bilirrubinas son más difíciles de interpretar que otras
reacciones en tiras reactivas y en ella influyen fácilmente otros pigmentos presentes en la orina.

Urobilinógeno: Al igual que la bilirrubina el urobilinógeno es un pigmento biliar que resulta de la
degradación de la hemoglobina. El urobilinógeno aparece en orina porque al circular por la sangre en camino
hacia el hígado, pasa a través de los riñones y se filtra en el glomérulo. Por lo tanto una pequeña cantidad de
urobilinógeno menos de 1 mg/dl o 1 unidad/Erlich se encuentra normalmente en la orina.
Las pruebas con tiras emplean 4 metoxibenceno – diazonio – tetrafluoroborato que reacciona en un medio
ácido, producen colores que varían desde rosado hasta roja.
El urobilinógeno demarcado en la tira reactiva está desde 0.1 o 0.2 como normal, hasta un rango de 8 mg/dl en
algunas y en otras hasta 10 mg/dl.

Nitritos: La base química da la prueba de nitritos es la capacidad de ciertas bacterias para reducir el
nitrato, constituyente normal de la orina, a nitrito, que no aparece en forma normal en ella. El nitrito se detecta
mediante la reacción de Greiss, en la que el nitrito a un pH ácido reacciona con una amina aromática (ácido parsanílico sulfanilamida) para formar un compuesto de diazonium que luego reacciona con 3-hidroxi-1,2,3,4tetrahidrobenz(h)quinolona para producir un color rosa.
La tira demarca nitritos Positivo o Negativo.
En una orina los nitritos estarán negativos.

Leucocitos: La reacción química es enzimática, utilizando estearasas presentes en los granulocitos para
hidrolizar el éster ácido indoxilcarbónico para producir indoxil, que reacciona con la sal de diazonium para
producir un color púrpura.
Los leucocitos demarcados en la tira reactiva están desde negativos hasta un rango de 500 Cel/ul. También
se pueden encontrar especificados desde trazas hasta 3 +.
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-16
salud
PROCEDIMIENTO PARA EL
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE RECUENTO DE PLAQUETAS
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE
RECUENTO DE PLAQUETAS
Página
50
Documento
Controlado
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-16
salud
PROCEDIMIENTO PARA EL
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE RECUENTO DE PLAQUETAS
1.
Página
51
Documento
Controlado
OBJETIVO
Establecer los pasos adecuados a seguir en el procesamiento de la muestra para Recuento de Plaquetas, que
garanticen la calidad del resultado final del examen.
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Se les realiza a los pacientes a los que el médico les haya solicitado el examen y los responsables son la
Bacterióloga (o) y el (la) Auxiliar de laboratorio
3.
GENERALIDADES
El recuento de plaquetas se realiza directamente en un microscopio de contraste de fases, previa lisis de
los hematíes, o también se puede observar en un microscopio convencional
REACTIVO
Oxalato de amonio al 1%
CONDICIONES DE ALMACENAMIENTO Y ESTABILIDAD
Las soluciones deben almacenarse entre 15°C y 30°C y protegidos de la luz.
Después de abierto el contenido es estable hasta la fecha de caducidad indicada en la etiqueta.
Los frascos deben mantenerse siempre bien cerrados.
MATERIALES REQUERIDOS
 Microscopio.
 Cámara de Neubauer.
 Pipetas automáticas.
 Cronometro y/o timer.
MUESTRA
Sangre venosa anticoagulada.
VALOR DE REFERENCIA
150.000 – 450.000 x mm3.
CALCULOS
Numero de plaquetas contadas en 5 cuadrados pequeños x 1000.
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-16
salud
PROCEDIMIENTO PARA EL
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE RECUENTO DE PLAQUETAS
Página
52
Documento
Controlado
1. DESARROLLO DE PROCEDIMIENTO DE RECUENTO DE PLAQUETAS
ESE DEPARTAMENTAL “SOLUCION SALUD”
Código:
Fecha Vigencia
27/03/2011
Versión 2
Documento
Controlado
MACROPROCESO: ASISTENCIAL
PROCESO: LABORATORIO CLINICO
PROCEDIMIENTO: Procesamiento de Recuento de Plaquetas método en placa
No
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
COMO
1
Inicio
-
-
-
-
Área de toma
de muestra
Área de
procesamiento
de Muestra
2
Toma de la
muestra
Bacteriólogo
o Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado
en la orden
medica
3
Preparación
de la
muestra
Bacteriólogo
Una vez
tomada la
muestra
4
Recuento
total de
plaquetas
Bacteriólogo
Una vez
incubada la
muestra
Área de
Lectura de
Hematología
Realizar extendido de
sangre periférica
directamente del dedo ,
luego de desechar la
primera gota
Colorear con Wright
Escoger en la placa un
área en donde los glóbulos
rojos se encuentren
separados. Contar el
número de plaquetas
observado en 10 campos.
Multiplicar el resultado X
2100
5
Trascripción
de
resultados
Bacteriólogo
6
FIN
-
Apenas se
finalice el
análisis de
la muestra Área de
y quede
lectura de
consignado Hematología
el
resultado
en el libro
-
-
Diligenciar el formato de
reporte de resultados en la
sección de Hematología,
en el espacio para
recuento de plaquetas con
firma y sello del
Bacteriólogo
-
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-16
salud
PROCEDIMIENTO PARA EL
Fecha Vigencia
27/03/2011
ANALISIS DE RECUENTO DE PLAQUETAS
Página
53
Documento
Controlado
5. REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE
REGISTRO
CÓDIGO
LIBRO DE TRABAJO
FR-LC-01
DE HEMATOLOGIA
RESPONSABLE
IDENTIFICACIÓ
DE
N DE LA
ALMACENAMIEN
CARPETA
TO
TIEMPO
DE
DESTINO
RETENCIÓ FINAL
N
Hematología
20 años
Bacteriólogo (a)
Destrucción
6. TERMINOS Y DEFINICIONES

VENOPUNCION: Conjunto de pasos involucrados en la obtención de una muestra de sangre
adecuadamente.

MUESTRA DEL PACIENTE: Volumen de sangre o cualquier otro fluido biológico recolectado
adecuadamente para realizar uno o más exámenes de laboratorio clínico.

ANTICOAGULANTES: Son sustancias que previenen la formación de coágulos. Existen diferentes tipos
de ellos en polvo o líquidos. Debe seleccionarse siempre el anticoagulante apropiado según el estudio que
se requiera realizar. Los anticoagulantes más comúnmente utilizados son: EDTA, Citrato de sodio,
Heparina, Oxalatos.

EDTA: (ETILEN-DIAMINO-TETRA-ACETATO) Este tipo de anticoagulante es utilizado principalmente
cuando se realizan estudios en donde se cuentan células. Funciona quelando el calcio.

HEMOLISIS: Se define como la salida de los componentes de las células sanguíneas al plasma o suero.
Se reconoce comúnmente por un aspecto más o menos rojizo del plasma o del suero después de la
centrifugación, ocasionado por la hemoglobina liberada desde los eritrocitos.

VALOR DE REFERENCIA: Valor de una magnitud biológica obtenido por la medida en un individuo que
pertenece a la muestra de un grupo de referencia definido.
ESE Departamental Solución
salud
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE SEROLOGIA
PARA SIFILIS
Código
PR-LAB-17
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
54
Documento
Controlado
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
DE SEROLOGIA
PARA SIFILIS
ESE Departamental Solución
salud
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE SEROLOGIA
PARA SIFILIS
Código
PR-LAB-17
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
55
Documento
Controlado
1.
OBJETIVO
Establecer los pasos adecuados a seguir en el procesamiento de la muestra para Serología que garanticen la
calidad del resultado final del examen
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Se les realiza a los pacientes a los que el médico les haya solicitado el examen y los responsables son la
Bacterióloga (o) y el Auxiliar de laboratorio
3.
GENERALIDADES
Examen de sangre que permite cuantificar la presencia de anticuerpos anti T. pallidum en un individuo
Como consideraciones especiales se debe sugerir al paciente evitar ingerir medicamentos, ya que pueden
interferir en el resultado.
Se recomienda un periodo de 12 horas después de la última comida, es decir, 12 horas de ayuno antes de la
extracción de sangre, porque la concentración de diversos metabolitos de los alimentos puede aumentar en la
sangre venosa o alterarse debido a efectos hormonales
FUNDAMENTO DEL MÉTODO
Las reaginas plasmáticas, anticuerpos dirigidos contra antígenos derivados de fuentes no treponémicas,
producen agregaciones con el antígeno, coaglutinando con las partículas de carbón
CONSERVACIÓN
Conservar a 2-8ºC, excepto las tarjetas visualizadoras, los palillos desechables, el vial dispensador y la aguja
dispensadora, que pueden mantenerse a temperatura ambiente.
El Reactivo y Controles son estables hasta la fecha de caducidad indicada en la etiqueta, siempre que se
conserven bien cerrados y se evite la contaminación durante su uso.
Indicaciones de deterioro:
− Reactivo: presencia de aglutinación en el frasco
− Controles: presencia de material particulado.
PREPARACIÓN DE LOS REACTIVOS
A. Reactivo. Agitar suavemente el vial hasta obtener una suspensión homogénea. Acoplar la aguja al vial
dispensador de plástico y aspirar por succión la cantidad de RPR-Carbón que se considere necesaria.
Los controles están listos para su uso.
Las técnicas estandarizadas varían según la casa comercial en uso, a lo cual debe darse prioridad.
ESE Departamental Solución
salud
Código
PR-LAB-17
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE SEROLOGIA
PARA SIFILIS
Página
56
Documento
Controlado
Fecha Vigencia
27/03/2011
4. DESARROLLO DE PROCEDIMIENTO DE SEROLOGIA
No
1
2
3
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
COMO
Inicio
-
-
-
Bacteriólogo
o Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado
en la orden
médica
Extracción de sangre por
venopunción, recolectada en
tubo tapa roja (Sin
anticoagulante),
previamente identificado y el
Número de identificación del
paciente se consigna en el
libro de Inmunología.
Toma de la
muestra
Procesamiento
de la muestra
Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado
en la orden
medica
Área de toma
de muestra
Importante: el paciente
debe tener un ayuno no
mayor a 12 horas.
Área de
procesamiento
(Centrifugación)
4
Montaje de la
prueba
Bacteriólogo
Una vez
obtenido el
suero
Área de
procesamiento
de Inmunología
5
Trascripción
de resultados
Bacteriólogo
Apenas se
finalice el
análisis de
la muestra y
Área de
procesamiento
de Química
-
-
6
FIN
-
Para la separación de la
muestra esta se centrifuga
entre 2000 a 2500 r.p.m por
un periodo de 10 a 15
minutos, obteniéndose de
esta manera suero libre de
hemólisis
* Dejar atemperar los
reactivos y las muestras a
temperatura ambiente.
* Depositar 50 ul de la
muestra a ensayar y una
gota de cada control en
círculos separados de la
tarjeta visualizadora.
* Homogenizar el reactivo
con suavidad antes del
ensayo. Adaptar la aguja al
extremo del vial dispensador
de plástico.
* Situar la aguja en posición
vertical a la tarjeta y añadir a
cada círculo una gota del
reactivo próxima a la
muestra a analizar.
* Mezclar con ayuda de un
palillo desechable,
procurando extender la
mezcla por toda la superficie
interior del círculo. Emplear
palillos distintos para cada
muestra.
* Agitar la tarjeta a 100 r.p.m
durante 8 minutos.
* Examinar
macroscópicamente la
presencia o ausencia antes
de transcurrido 1 minuto tras
la parada del agitador.
Diligenciar en el libro de
inmunología en el área para
Serología y en el formato de
reporte de resultados en el
-
ESE Departamental Solución
salud
Código
PR-LAB-17
Versión 2
PROCEDIMIENTOPARA
ANALISIS DE SEROLOGIA
PARA SIFILIS
Página
57
Documento
Controlado
Fecha Vigencia
27/03/2011
5. REGISTROS DE CALIDAD
RESPONSABLE
IDENTIFICACIÓ
DE
N DE LA
ALMACENAMIEN
CARPETA
TO
NOMBRE
REGISTRO
CÓDIGO
LIBRO DE TRABAJO
DE INMUNOLOGIA
FR-LC-03 Inmunología
Bacteriólogo (a)
TIEMPO
DE
DESTINO
RETENCIÓ FINAL
N
20 años
Destrucción
6. TERMINOS Y DEFINICIONES

VENOPUNCION: Conjunto de pasos involucrados en la obtención de una muestra de sangre
adecuadamente.

MUESTRA DEL PACIENTE: Volumen de sangre o cualquier otro fluido biológico recolectado
adecuadamente para realizar uno o más exámenes de laboratorio clínico.

LIPEMIA: Las muestras de plasma y suero que presentan turbidez en grados variables debido a un
aumento de la concentración de lipoproteínas. En casi todos los casos, la turbidez esta ocasionada por una
concentración elevada de triglicéridos o de especies macromoleculares de lipoproteínas.

HEMOLISIS: Se define como la salida de los componentes de las células sanguíneas al plasma o suero. Se
reconoce comúnmente
por un aspecto más o menos rojizo del plasma o del suero después de la
centrifugación, ocasionado por la hemoglobina liberada desde los eritrocitos.

VALOR DE REFERENCIA: Valor de una magnitud biológica obtenido por la medida en un individuo que
pertenece a la muestra de un grupo de referencia definido
58
59
1.
OBJETIVO
Establecer los pasos adecuados a seguir en el procesamiento de la muestra para Nitrógeno Ureico (BUN) que
garanticen la calidad del resultado final del examen.
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Se les realiza a los pacientes a los que el médico les haya solicitado el examen y los responsables son la
Bacterióloga (o) y el Auxiliar de laboratorio
3.
GENERALIDADES
Examen de sangre que permite cuantificar el Nitrógeno Ureico en un individuo
Como consideraciones especiales se debe sugerir al paciente evitar ingerir medicamentos, ya que pueden
interferir en el resultado.
Se recomienda un periodo de 12 horas después de la última comida, es decir, 12 horas de ayuno antes de la
extracción de sangre, porque la concentración de diversos metabolitos de los alimentos puede aumentar en la
sangre venosa o alterarse debido a efectos hormonales
Las técnicas estandarizadas varían según la casa comercial en uso, a lo cual debe darse prioridad
Valores de referencia:
4.5-22.7 mg/dl.
Significado de los resultados anormales
Los niveles superiores a lo normal pueden deberse a:
Insuficiencia cardíaca congestiva
Niveles excesivos de proteínas en el tubo digestivo
Sangrado gastrointestinal
Hipovolemia
Ataque cardíaco
Enfermedad renal, incluyendo glomerulonefritis, pielonefritis y necrosis tubular aguda
Insuficiencia renal
Shock
Obstrucción de las vías urinarias
Los niveles inferiores a lo normal pueden deberse a:
Insuficiencia hepática
Dieta baja en proteína
Desnutrición
Sobrehidratación
Las afecciones adicionales bajo las cuales se puede llevar a cabo el examen son:
Síndrome nefrítico agudo
Síndrome de Alport
Enfermedad renal ateroembólica
Demencia de origen metabólico
Diabetes
Intoxicación por digitálicos
Epilepsia
Convulsión tónico clónica generalizada
60
Síndrome de Goodpasture
Síndrome urémico hemolítico (SUH)
Síndrome hepatorrenal
Nefritis intersticial
Nefritis lúpica
Hipertensión maligna (nefroesclerosis arteriolar)
Nefropatía quística medular
Glomerulonefritis membranoproliferativa I
Glomerulonefritis membranoproliferativa II
Azotemia prerrenal
Amiloidosis primaria
Amiloidosis sistémica secundaria
Tumor de Wilms
4. DESARROLLO DE PROCEDIMIENTO DE NITROGENO UREICO
No
QUE
QUIEN
CUANDO
DONDE
1
Inicio
-
-
-
2
Toma de la
muestra
Bacteriólogo
o Auxiliar de
Laboratorio
Una vez
identificado
el examen
solicitado en
la orden
medica
Área de toma
de muestra
COMO
Extracción de sangre
por venopunción,
recolectada en tubo
tapa roja (Sin
anticoagulante),
previamente
identificado y el
Número de
identificación del
paciente se consigna
en el libro de Química
Clínica.
Importante: el
paciente debe tener
un ayuno no mayor a
12 horas.
3
4
Procesamiento
de la muestra
Montaje de la
prueba
Auxiliar de
Laboratorio
Bacteriólogo
Una vez
identificado
el examen
solicitado en
la orden
medica
Una vez
obtenido el
suero
Área de
procesamiento
Para la separación de
la muestra esta se
centrifuga entre 2000
a 2500 r.p.m por un
periodo de 10 a
15
minutos,
obteniéndose de esta
manera suero libre de
hemólisis
Área de
procesamiento
de Química
Realizar el montaje
respectivo, 10 l de la
muestra, patrón o
blanco, con respecto
a 1ml del reactivo, Al
adicionar el Reactivo
1 y la muestra o
patrón, se mezcla e
incuba por 5 minutos
a temperatura
ambiente, pasado
este tiempo de
incubación adicionar
1 ml del Reactivo 2,
mezclar e incub ar a
temperatura ambiente
por 10 minutos. Leer
absorbancia n la
longitud de onde que
indique el respectivo
inserto. El cálculo se
hace Abs. Mx. / Abs.
Patr. x Conc. de
61
ti e m po
de
i nc u ba c ión
a d ic i on a r 1 m l d e l
R e a c t iv o 2 , m e zc l a r e
i nc u ba r
a
te m p e ra tu ra
a m b ie n te
p or
10
m in u to s.
Le e r
a b s orb a nc ia
n
la
l on gi tu d d e o n de q ue
i nd iq ue e l re s pe c ti vo
i ns e rto . E l c á lc u lo s e
h a c e A bs . M x . / Ab s.
P a tr. x
C o nc . de
P a tr.
y s e c o n s ig na e l
re s u lta d o e n e l l ibro
d e Qu ím ic a
4
M on ta j e d e
la p ru e ba
B a c te riól og o
Un a v e z
ob te n ido e l
su e ro
Á re a d e
p roc e s a m ie n to
d e Q u ím ic a
V a lo re s
re fe re n c ia :
de
4 . 5 -2 2 .7 m g/ dl.
N o ta :
El
m o n ta je
v a rí a d e a c ue rd o a la
té c nic a u til iza d a y a
l a c a s a c o m e rc ia l.
I mp o rta nt e : a nte s de
i nic ia r e l m o nta j e de
l a té c n ic a , s a c a r l os
re a c tiv o s
de
la
n e v e ra
y
de j a rlos
a te mp e ra r, y s e gu ir
las
in d ic a c io ne s
e s ta b le c id a s po r e l
fa b ric a n te
de l
re a c tiv o .
5
Tra s crip ció n
de
re su lta d o s
B a ct e rió lo g o
Apenas s e
fin a lic e e l
a ná lisis d e la
m u e st ra y
q ue de
co n sig na do e l
re su lta d o e n
e l lib ro
Á re a d e
p ro c e sa m ien to
d e Qu í m ica
D ilig e n cia r e l fo r m a to
d e re p o rte d e
re s u lt a d o s e n la
s e cció n d e Q u ím ic a ,
e n e l e sp a cio
s e ña la d o p a ra
N it ró g en o u re ico
(B U N ) c o n f irm a y
s e llo d e l B a cte rió lo g o
62
atemperar, y seguir las
indicaciones establecidas
por el fabricante del
reactivo.
5
Trascripción
de resultados
Bacteriólogo
Apenas se finalice
el análisis de la
muestra y quede
consignado el
resultado en el
libro
6
FIN
-
-
Área de
procesamiento
de Química
-
Valores de referencia:
Diligenciar el formato de
reporte de resultados en la
sección de Química, en el
espacio señalado para
Nitrógeno ureico (BUN)
con firma y sello del
Bacteriólogo
-
5. REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE REGISTRO
LIBRO DE TRABAJO DE
QUIMICA CLINICA
RESPONSABLE
TIEMPO
IDENTIFICACIÓ
DE
DE
CÓDIGO
N DE LA
ALMACENAMIEN RETENCIÓ
CARPETA
TO
N
FR-LABQuímica Clínica
Bacteriólogo (a)
20 años
02
DESTINO
FINAL
Destrucción
6. TERMINOS Y DEFINICIONES

VENOPUNCION: Conjunto de pasos involucrados en la obtención de una muestra de sangre
adecuadamente.

MUESTRA DEL PACIENTE: Volumen de sangre o cualquier otro fluido biológico recolectado
adecuadamente para realizar uno o más exámenes de laboratorio clínico.

LIPEMIA: Las muestras de plasma y suero que presentan turbidez en grados variables debido a un
aumento de la concentración de lipoproteínas. En casi todos los casos, la turbidez esta ocasionada por
una concentración elevada de triglicéridos o de especies macromoleculares de lipoproteínas.

HEMOLISIS: Se define como la salida de los componentes de las células sanguíneas al plasma o
suero. Se reconoce comúnmente por un aspecto más o menos rojizo del plasma o del suero después de
la centrifugación, ocasionado por la hemoglobina liberada desde los eritrocitos.

VALOR DE REFERENCIA: Valor de una magnitud biológica obtenido por la medida en un individuo que
pertenece a la muestra de un grupo de referencia definido
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-19
salud
PROCEDIMIENTO DE REFERENCIA Y
Fecha Vigencia
27/03/2011
CONTRAREFERENCIA EN LABORATORIO CLINICO
Página
63
Documento
Controlado
PROCEDIMIENTO DE REFERENCIA Y
CONTRAREFERENCIA EN LABORATORIO CLINICO
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-19
salud
PROCEDIMIENTO DE REFERENCIA Y
Fecha Vigencia
27/03/2011
CONTRAREFERENCIA EN LABORATORIO CLINICO
Página
64
Documento
Controlado
1. OBJETIVO
Enviar al laboratorio de referencia de la de red externa las muestra para practicar los exámenes que no pueden
ser procesados y analizados por capacidad técnica o funcional, garantizando la oportunidad y confiabilidad de
los resultados.
2. ALCANCE Y RESPONSABLES
Inicia con la priorización y envío de las muestras laboratorio de referencia y termina con la recepción y el
registro de los resultados por parte del Laboratorio del centro de atencion, se pasa informe de referencia de
laboratorio mensual a Subgerencia Asistencial.
Los responsables son el Bacteriólogo, Auxiliar de laboratorio, conductor de ambulancia, auxiliar de enfermería
encargada de atención al usuario de cada centro de atención
El Laboratorio de Referencia hará la ejecución y control una vez remitida las muestras de laboratorio
3. GENERALIDADES
CARACTERISTICAS DE LAS MUESTRAS DE SANGRE: SUEROS
>
>
>
>
La muestra debe ser fresca, no estar hemolizada y tenga un volumen mínimo de envío de 0.5 cc.
Rotular las muestras con nombre completo número y examen solicitado
El mismo día que se toma la muestra a remitir debe ser separada en gradilla marcada para ello,
guardarlas en el congelador hasta tanto llegue el momento de ser enviadas (cadena de frío), tenga en
cuenta que algunas muestras no se deben congelar (ver Manual de Tomas de Muestras).
confirme que las muestras a guardar están bien marcadas.
La auxiliar de laboratorio realiza el procedimiento pero es responsabilidad del bacteriólogo (a)
supervisar el mismo.
CARACTERISTICAS DE LAS MUESTRAS DE SANGRE: SANGRE TOTAL
>
Se rotula igual que para suero o plasma, tener en cuenta no congelar la muestra.
SECRECIONES BIOLOGICAS
>
>
>
>
Enviar escobillones en tubos con medio de transporte dentro de las 24 horas a la toma.
Diligencie formato de remisión como para muestras de suero y proceda a llamar la transportadora
envíe las muestras en horas de la mañana y confirme vía telefónica el recibido.
El procedimiento lo realiza la auxiliar de laboratorio con supervisión de la Bacterióloga.
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-19
salud
PROCEDIMIENTO DE REFERENCIA Y
Fecha Vigencia
27/03/2011
CONTRAREFERENCIA EN LABORATORIO CLINICO
>
Página
65
Documento
Controlado
DILIGENCIAMIENTO DEL FORMATO DE REMISION
Por favor tenga en cuenta:
Llene un formato y deje una copia cada vez que envíe muestras con el fin de llevar un consecutivo y a la vez
un control de los resultados. FORMATO FR-LAB-100 y FR-LAB - 101
> No olvide diligenciar todos los datos.
> El formato debe tener un número consecutivo para archivar y debe estar guardada en una carpeta de
remisiones a la Sede Principal.
>
CARACTERISTICAS DEL EMBALAJE
Debe cumplir con:
Recipiente adecuado de fácil manipulación: neveras de icopor o plástico y separadas en envase primario.
Estas neveras deben contener dos o más pilas congeladas para mantener la temperatura apropiada., no
olvidar tomar la temperatura antes de sellar la nevera y registrarla en el formato correspondiente para el
registro de temperatura tanto en el laboratorio remitente como en el laboratorio de referencia
> Revisar que quede bien empacado y sellado, rotular con los datos de envío
>
>
ENTREGA A LA PERSONA ENCARGADA DEL TRANSPORTE
Verifique los datos consignados en el formato de remisión de muestras, y entregue al responsable del
transporte de la muestra, diligencie el registro de entrega de muestra al laboratorio clínico.
CONTRAREFERENCIA DE LOS RESULTADOS.
Una vez llegan los resultados al laboratorio, se entregan a la enfermera jefe, para que queden archivados
en la historia clínica, o se realiza entrega personal al paciente.
Diligenciar la planilla de registro de muestras recibidas la cual contiene la fecha de recepción de los
resultados y el resultado (FR-LAB-100 – 101)
Los resultados se entregan al paciente sin transcribir.
4. REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE
REGISTRO
Registro de entrega
de las muestras al
laboratorio clínico
Registro de entrega
de los resultados a la
jefe o al paciente
Registro de con trol
de temperatura de
nevera de transporte.
CÓDIGO
RESPONSABLE
IDENTIFICACIÓ
DE
N DE LA
ALMACENAMIEN
CARPETA
TO
Carpeta con el
Auxiliar de
mismo nombre
enfermería o
del registro
Bacteriólogo (a)
Carpeta con el
Auxiliar de
mismo nombre
enfermería o
del registro
Bacteriólogo (a)
Carpeta con el
Auxiliar de
mismo nombre
enfermería o
del registro
Bacteriólogo (a)
TIEMPO
DE
DESTINO
RETENCIÓ FINAL
N
20 años
Destrucción
20 años
Destrucción
20 años
Destrucción
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-19
salud
PROCEDIMIENTO DE REFERENCIA Y
Fecha Vigencia
27/03/2011
CONTRAREFERENCIA EN LABORATORIO CLINICO
Página
66
Documento
Controlado
1. NORMATIVIDAD
Decreto 1011 del 2006
Resolución 1043 de 2006, anexo técnico 1
2. TERMINOS Y DEFINICIONES
REFERENCIA: Envío de usuarios o elementos de ayuda diagnóstica por parte de las Instituciones Prestadoras
de Servicios de Salud (IPS) a otras de acuerdo con el grado de complejidad, a través de las ARS y/o EPS para
su complementación diagnóstica y/o tratamiento definitivo.
CONTRARREFERENCIA: Respuesta de la IPS receptora de la referencia a las ARS y/o EPS donde se
consigna las recomendaciones o manejo en salud que debe darse al afiliado una vez concluidos los
procedimientos solicitados o simplemente la información dada respecto del estado de salud del usuario.
REMISIÓN: Procedimiento por el cual se transfiere la atención en salud de un usuario a otro profesional o
institución con la consiguiente transferencia de responsabilidad sobre el cuidado del mismo.
INTERCONSULTA: Es la solicitud elevada por el profesional o IPS responsable de la atención del usuario a
otros profesionales o IPS para que emitan juicios y orientaciones sobre la conducta a seguir sin que estos
profesionales o instituciones asuman la responsabilidad directa de su manejo.
ESE Departamental Solución
salud
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA RECEPCION DE PACIENTES
AMBULATORIOS Y DE CONSULTA EXTERNA PARA
TOMA DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO CLINICO
Código
PR-LAB-20
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
67
Documento
Controlado
PROCEDIMIENTO PARA RECEPCION DE PACIENTES
AMBULATORIOS Y DE CONSULTA EXTERNA PARA
TOMA DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO CLINICO
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA RECEPCION DE PACIENTES
AMBULATORIOS Y DE CONSULTA EXTERNA PARA
TOMA DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO CLINICO
1.
Código
PR-LAB-20
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
68
Documento
Controlado
OBJETIVO
Establecer los pasos para una correcta recepción y toma de muestra de los pacientes ambulatorios y de
consulta externa del laboratorio clínico.
2.
ALCANCE Y RESPONSABLES
PACIENTES AMBULATORIOS
Este procedimiento inicia con la llegada de los pacientes al laboratorio clínico.
>
La auxiliar de laboratorio o bacteriólogo(a) es responsable de saludar amablemente al paciente y
informar al paciente del procedimiento a realizar y de verificar los siguientes requisitos: Los datos
consignados en la orden médica se encuentren completos y legibles, El paciente posea RIPS . Dar
numeración interna a la orden (código consecutivo interno del laboratorio), Indicar al paciente que pase
a la toma de muestra, Rotular los tubos o láminas con el código consecutivo interno del laboratorio,
Tomar las muestras al paciente según MN-LAB-601 Disponer las muestras en las gradillas
correspondientes para luego ser llevadas a las diferentes áreas de procesamiento, si las muestras son
urgentes llevarlas inmediatamente al área
de procesamiento correspondiente dando aviso a la
bacterióloga(o). y de entregar los resultados de los análisis al paciente.
>
El profesional del laboratorio (Bacteriólogo(a) es responsable de Apoyar al personal auxiliar, y de
definir la validez de una muestra para el inicio del análisis en cada sección.
PACIENTES AMBULATORIOS
Este procedimiento inicia con la llegada de los pacientes al laboratorio clínico.
>
El profesional del laboratorio (Bacteriólogo(a) es responsable de saludar amablemente al paciente
y de verificar los siguientes requisitos: Los datos consignados en la orden médica se encuentren
completos y legibles, el paciente posea factura de todos los exámenes ordenados, que el paciente
cumpla con todos los requisitos para los exámenes solicitados (ayuno, toma de medicamentos, dieta
etc.),
ESE Departamental Solución
salud
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA RECEPCION DE PACIENTES
AMBULATORIOS Y DE CONSULTA EXTERNA PARA
TOMA DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO CLINICO

Código
PR-LAB-20
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
69
Documento
Controlado
preguntarle a paciente los motivos del examen si este no se encuentra registrado en la orden medica y
datos adicionales necesarios para la realización del examen como peso, Fecha ultima regla etc. El
profesional del laboratorio se encarga también de informarle al paciente la fecha en que tiene que venir
a reclamar los resultados de los análisis y de entregarle el código que le fue asignado, además el
profesional del laboratorio debe ingresar al sistema interno de información la orden medica con todos
los datos del paciente, exámenes solicitados y diagnostico y condiciones especiales e Indicar al
paciente que pase a la toma de muestra. Su responsabilidad termina con el procesamiento de las
muestras correspondientes y el reporte de los resultados en el sistema interno de información, su
posterior validación e impresión.
>
Auxiliar de Laboratorio: su responsabilidad inicia con el llamado de paciente por su nombre para
iniciar la toma de muestra, la verificación de los datos de los tubos correspondan con los del paciente y la
toma de muestra correspondiente según MN-LAB-601. continúa con la disposición de las muestras en las
gradillas correspondientes para luego ser llevadas a las diferentes áreas de procesamiento, y de entregar
los resultados de los análisis al paciente.
1.
GENERALIDADES
Criterios de Rechazo de Solicitudes de exámenes
Si las solicitudes de los exámenes no cumplen los requisitos para su toma y procesamiento el laboratorio
deberá aclarar las discrepancias con el paciente e indicarle el procedimiento a seguir, sea la discrepancia de
orden medico (en este caso dirigirse nuevamente con el medico que realizo la solicitud y que este aclare la
orden medica y así dirigirse nuevamente al laboratorio) o administrativo (exámenes sin facturar o facturas
vencidas).
1.
DESARROLLO
PACIENTES AMBULATORIOS:
Este procedimiento inicia con la llegada de los pacientes al laboratorio clínico.
1. La auxiliar de laboratorio es responsable de saludar amablemente al paciente e informar al
ESE Departamental Solución
salud
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA RECEPCION DE PACIENTES
AMBULATORIOS Y DE CONSULTA EXTERNA PARA
TOMA DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO CLINICO
Código
PR-LAB-20
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
70
Documento
Controlado
paciente del procedimiento a realizar y de verificar los siguientes requisitos:
>
Los datos consignados en la orden médica se encuentren completos y legibles.
>
Fecha
>
Nombres y apellidos completos
>
No de historia clínica
>
Seguridad social
>
Edad.
>
Impresión Diagnostica
>
Exámenes ordenados
>
Nombre, firma y sello del médico solicitante.
>
Para baciloscopias y cultivos de micobacterias: se deben solicitar dirección, Teléfono.
>
Para HIV: Formato consentimiento informado correctamente diligenciado, fotocopia seguridad social y
documento de identidad.
>
El paciente posea RIPS
>
Dar numeración interna a la orden (código consecutivo interno del laboratorio) y facturar
inmediatamente.
>
Indicar al paciente que pase a la toma de muestra.
>
Rotular los tubos o láminas con el código consecutivo interno del laboratorio.
>
Tomar las muestras al paciente según MN-LAB-601.
>
Disponer las muestras en las gradillas correspondientes para luego ser llevadas a las diferentes áreas
de procesamiento, si las muestras son urgentes llevarlas inmediatamente al área de procesamiento
correspondiente dando aviso a la bacterióloga(o).
>
El profesional del laboratorio (Bacterióloga) Apoyar al personal auxiliar, y de definir la validez de una
muestra para el inicio del análisis en cada sección.
5. REGISTROS DE CALIDAD
IDENTIFICACIÓN DE RESPONSABLE DE TIEMPO DE
DESTINO
LA CARPETA
ALMACENAMIENTO RETENCIÓN
FINAL
NO
FR-GC-35 CONFORMIDADES
Bacteriólogo Trimestral Destrucción
CÓDIGO
REGISTRO PRODUCTO
NO CONFORME
LABORATORIO CLINICO
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO DE ADQUISICION
DE REACTIVOS Y DISPOSITIVOS
MEDICOS PARA EL LABORATORIO CLINICO
Versión 1
Código
PR-LAB-21
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
71
Documento
Controlado
PROCEDIMIENTO DE ADQUISICION
DE REACTIVOS Y DISPOSITIVOS
MEDICOS PARA EL LABORATORIO CLINICO
ESE Departamental Solución
salud
Código
PR-LAB-21
Versión 1
PROCEDIMIENTO DE ADQUISICION
DE REACTIVOS Y DISPOSITIVOS
MEDICOS PARA EL LABORATORIO CLINICO
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
72
Documento
Controlado
OBJETIVO
Contar y mantener el stock de reactivos y dispositivos médicos requeridos para la prestación de los servicios
de salud ofertados, en el centro de atención.
ALCANCES
Aplica para todo el personal que labora en el centro de atención.
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la Bacterióloga del laboratorio clínico.
GENERALIDADES
LINEAMIENTOS TÉCNICOS PARA LA ADQUISICIÓN DE INSUMOS.
Se conoce como proceso de gestión de insumos y suministros al conjunto de acciones mediante las cuales se
programan, ejecutan y controlan los procedimientos de adquisición, distribución y consumo de elementos,
materiales, y reactivos que necesitamos para realizar nuestro trabajo.
CARACTERÍSTICAS DE LOS REACTIVOS Y DISPOSITIVOS MEDICOS
Un reactivo y dispositivo medico debe tener las siguientes características:





Debe ser de marca conocida
Debe ser estable en su composición, almacenamiento y consumo.
Debe tener una fecha de expiración visible
Debe tener un registro INVIMA
Debe tener un costo racional
PRESENTACIÓN DE LOS INSUMOS
Cada insumo o reactivo presenta una serie de características que permiten su clasificación y, de acuerdo con
las necesidades y volúmenes de consumo, determinar las cantidades requeridas.
Cuando usamos como insumos los reactivos de laboratorio, éstos deben tener registro INVIMA, lo que significa
que este organismo de vigilancia ha autorizado su comercialización en el país.
Siempre se debe tener en cuenta la fecha de vencimiento de cada producto la cual no podrá ser inferior a un año
a partir de su adquisición.
Así mismo, se analizarán las condiciones de estabilidad del producto, desde su elaboración hasta su consumo.
Éstas se verifican en su etiqueta o inserto.
PROGRAMACIÓN DE LOS PEDIDOS
Para realizar la programación de un pedido debemos tener en cuenta:
 El sistema de información de la ESE tiene el módulo de farmacia que permite llevar el kárdex en cada
farmacia de cada centro. El kárdex no se lleva en el laboratorio.
 El Profesional del laboratorio debe ser quien elabore el pedido junto al auxiliar de farmacia y con visto
bueno del director del centro.
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salud
Versión 1
PROCEDIMIENTO DE ADQUISICION
DE REACTIVOS Y DISPOSITIVOS
MEDICOS PARA EL LABORATORIO CLINICO

Código
PR-LAB-21
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
73
Documento
Controlado
Se llenará el formato de pedido trimestral y se le entregará al servicio farmacéutico, el cual lo enviara a la
sede administrativa.
EMBALAJE Y TRANSPORTE DE INSUMOS
Para garantizar que el producto recibido se encuentre en óptimas condiciones se debe tener en cuenta:
 Las casas comerciales, especialmente las que funcionan fuera de la ciudad, deben garantizar la estabilidad
de los reactivos con un adecuado embalaje durante el transporte, para evitar que lleguen rotas, existan
escapes internos, etc.
 Al momento de recibir el pedido, se debe verificar que el producto se encuentre en óptimas condiciones.
 En caso de encontrar inconsistencias que representen algún riesgo debe reportarse de inmediato y devolver
el producto.
 La transportadora no debe demorar la entrega; el almacenamiento de algunos reactivos fuera de nevera en la
mayoría de los casos es crítico.
 Semanalmente el laboratorio pasa el pedido a la farmacia y registra su entrada, no en Kárdex, sino en el
formato de entrada de reactivos al laboratorio, donde se tienen en cuenta: reactivo, casa comercial,
presentación, fecha de vencimiento, registro invima, y temperatura de conservación.
RECEPCIÓN TÉCNICA Y ADMINISTRATIVA DE INSUMOS.
Una vez llegan los reactivos y dispositivos médicos al servicio farmacéutico, la auxiliar del servicio es la
responsable del almacenamiento y elaboración del Kárdex de cada insumo. Se realizan las siguientes
actividades:
 Es responsabilidad de la auxiliar del servicio farmacéutico, la encargada de conocer cuándo llega un pedido y
verificar su contenido, de hacer el Kárdex a pedidos nuevos y descargar consumos por mes.
 Velar porque los productos recibidos sean almacenados en sus respectivos sitios, bajo las condiciones de
temperatura y humedad definidas por el fabricante.
DISTRIBUCIÓN DE INSUMOS AL LABORATORIO CLINICO
De acuerdo con el pedido entregado por cada área, la auxiliar del servicio farmacéutico hará la distribución del
pedido.
Una vez recibido el pedido, el responsable del servicio realizara su Kárdex interno para iniciar el registro de
los consumos y el almacenamiento, bajo las condiciones
de temperatura y humedad definidas por el fabricante. Para el efecto, se tendrán en cuenta las siguientes
instrucciones:

Llevar registro diario de temperatura y humedad de almacenamiento en neveras, o el depósito según el
caso.
 Ordenar en la nevera, los reactivos de acuerdo con las fechas de vencimiento más próximas.
 Evitar el polvo.
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Código
PR-LAB-21
Versión 1
PROCEDIMIENTO DE ADQUISICION
DE REACTIVOS Y DISPOSITIVOS
MEDICOS PARA EL LABORATORIO CLINICO
Fecha Vigencia
27/03/2011
FLUJOGRAMA
INICIO
Identificar existencias y
definir necesidades
Solicitar el pedido al servicio
farmacéutico, el cual
realizara la solicitud ante el
comité de compras de la
Sede Administradora
Recepción del pedido
por parte de los
centros de atención.
Segregación de
reactivos y dispositivos
médicos
Descargar
consumo
Recepción por parte
del servicio de
laboratorio clínico.
REGISTROS DE CALIDAD
> Registro de entrada de reactivos
al servicio de laboratorio
> Registro de temperatura de la nevera
> Registro de temperatura y humedad
del parto.
FIN
Página
74
Documento
Controlado
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salud
PROCEDIMIENTO DE ADQUISICION
DE REACTIVOS Y DISPOSITIVOS
MEDICOS PARA EL LABORATORIO CLINICO
Código
PR-LAB-21
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
75
Documento
Controlado
NORMATIVIDAD
Ley 100 de 1993, Artículo 245,
Decreto 4725 de 2005 del Ministerio de Protección Social sobre dispositivos médicos,
Acta 7 de 2009 de Invima documentos que no requieren registro sanitario.
Resolución 1043 de octubre de 2006 "Por el cual se establecen condiciones que deben
cumplir los prestadores de servicios de salud para habilitación.
TERMINOS Y DEFINICIONES
STOCK: Cantidad de insumos existentes en una entidad.
INVENTARIO: Se define al registro documental de los bienes y demás cosas pertenecientes a una persona o
comunidad, hecho con orden y precisión.
KARDEX: Registro de entradas y salidas, o cualquier otro registro contable.
SEGREGACION: Separar, apartar o aislar una mercancía peligrosa de otra que puede ser o no peligrosa, de
acuerdo con la compatibilidad que exista entre ellas.
SEMAFORIZACION: Es una herramienta que le permitirá determinar en el momento oportuno que
medicamentos están próximos a vencer, permitiéndole del mismo modo ejercer un control con los
medicamentos de baja rotación.
BIBLIOGRAFIA

MANUAL DE CONVENIOS Y CONTRATOS, Adoptado mediante Resolución de Rectoría No. 1952 del
22 de diciembre de 2008, Universidad nacional de colombia.
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salud
PROCEDIMIENTO DE MANEJO INTERNO DE
RESIDUOS HOSPITALARIOS EN
LABORATORIO Y LA TOMA DE MUESTRAS
Versión 1
Código
PR-LAB-22
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
76
Documento
Controlado
PROCEDIMIENTO DE MANEJO INTERNO DE
RESIDUOS HOSPITALARIOS EN
LABORATORIO Y LA TOMA DE MUESTRAS
ESE Departamental Solución
salud
Código
PR-LAB-22
Versión 1
PROCEDIMIENTO DE MANEJO INTERNO DE
RESIDUOS HOSPITALARIOS EN
LABORATORIO Y LA TOMA DE MUESTRAS
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
77
Documento
Controlado
OBJETIVO
Definir los procedimientos a seguir para lograr un adecuado manejo interno de los residuos hospitalarios de las
diferentes áreas del servicio de laboratorio clínico y toma de muestras en el centro de atención.
ALCANCES
Aplica para el personal que labora en el centro de atención y que está involucrado en el manejo de los desechos
de la toma de muestras y del laboratorio clínico.
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la auxiliar, Bacterióloga y personal de servicios generales.
GENERALIDADES
El objetivo principal de un manejo adecuado de los desechos, es reducir tanto como sea posible los riesgos que
para la salud de la población hospitalaria, la comunidad y el medio ambiente, se derivan del inadecuado manejo
de los diferentes tipos de desechos que genera las instituciones de salud, en especial de aquellos desechos que
por su carácter infeccioso o sus propiedades químicas o físicas presentan un alto grado de peligrosidad.
DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO:
Elementos y materiales




Bolsas rojas
Bolsas verdes
Guardianes
Hipoclorito de sodio a 5000 ppm
MANEJO DE DESECHOS EN LA TOMA DE MUESTRAS:
Para residuos cortopunzantes (agujas, bisturís, lancetas y otros)

Llene el contenedor de elementos cortopunzantes (Guardián) sólo hasta sus ¾ partes, retire y selle el
recipiente, e introdúzcalo en bolsa roja previamente rotulada como material cortopunzante toma de muestras
de laboratorio clínico.
 Amarre la bolsa y luego entréguela al personal de servicios generales para su transporte interno hasta el
depósito de residuos donde posteriormente será recogida por la empresa recolectora de los residuos
hospitalarios.
Para residuos sólidos (guantes, torundas, escobillones)
 Si los residuos son guantes, torundas de algodón, escobillones, gasas, sondas, jeringas, empaques
contaminados, tapabocas u otros elementos considerados como peligrosos pero que no son
cortopunzantes, depositarlos en bolsa roja, es decir los rotulados como “BIOSANITARIOS”; evitando que la
caneca se rebose y se puedan generar derrames de los desechos, amarre las bolsas y entréguelas al
personal de servicios para su transporte interno, al depósito , donde posteriormente serán recogidas por la
empresa recolectora de
ESE Departamental Solución
salud
Versión 1
PROCEDIMIENTO DE MANEJO INTERNO DE
RESIDUOS HOSPITALARIOS EN
LABORATORIO Y LA TOMA DE MUESTRAS
Código
PR-LAB-22
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
78
Documento
Controlado
los residuos hospitalarios.
> Los empaques de sondas, jeringas u otros elementos no contaminados, se depositaran en bolsa verde,
rotulada como biodegradable, amarre las bolsas y entréguelas al personal de servicios generales para su
transporte interno, al depósito, donde posteriormente serán recogidas por la empresa del servicio público
especial de aseo
MANEJO DE DESECHOS EN EL LABORATORIO CLINICO:
Para residuos líquidos (orinas, sueros, plasma, sangre)
> Vierta los residuos líquidos en un recipiente que contenga una dilución de hipoclorito de sodio a 5.000 PPM
> Deje actuar por espacio de 30 minutos
> Una vez hayan transcurrido los 30 minutos, decantar el contenido del recipiente y colocar en bolsa roja, en
caneca rotulada como BIOSANITARIO, amarre las bolsas y entréguelas al personal de servicios generales
para su transporte interno, al depósito , donde posteriormente serán recogidas por la empresa recolectora
de los residuos hospitalarios.
> La solución de hipoclorito de sodio desechar en el vertedero y dejar correr abundante agua.
Para residuos sólidos
> Si los residuos son guantes, torundas de algodón, escobillones, gasas, sondas, jeringas, empaques
contaminados, tapabocas u otros elementos considerados como peligrosos pero que no son
cortopunzantes, depositarlos en bolsa roja, es decir los rotulados como “BIOSANITARIOS”; evitando que la
caneca se rebose y se puedan generar derrames de los desechos, amarre las bolsas y entréguelas al
personal de servicios generales para su transporte interno, al depósito , donde posteriormente serán
recogidas por la empresa recolectora de los residuos hospitalarios.
> Si los residuos son coágulos de sangre estos de desactivarán depositándolos en un recipiente al cual se le
agrega hipoclorito de sodio a 5000 ppm.
> Deje actuar por un período de 30 minutos
> Una vez hayan transcurrido los 30 minutos, deseche el hipoclorito por el vertedero, dejando correr
abundante agua y deposite los coágulos en bolsa roja, amárrela y entréguela al personal de servicios
generales para su transporte interno hasta el depósito donde posteriormente serán recogidas por la
empresa recolectora de los residuos hospitalarios.
> Los empaques de reactivos u otros elementos no contaminados, se depositaran en bolsa verde, rotulada
como biodegradable, amarre las bolsas y entréguelas al personal de servicios generales para su transporte
interno, al depósito, donde posteriormente serán recogidas por la empresa del servicio público especial de
aseo
Ø
Los coprológicos y muestras de baciloscopias se pueden descartar dentro de guantes usados, amarrados y empacar en
bolsa roja para recolectar diariamente.
Para material (laminas, laminillas, pipetas, tubos)
>
>
>
>
Inactivar en frasco de boca ancha, con hipoclorito de sodio a 5000 ppm, por 30 minutos.
Decantar el hipoclorito por el vertedero y dejar correr abundante agua.
Lavar con solución jabonosa.
Enjuagar.
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PROCEDIMIENTO DE MANEJO INTERNO DE
RESIDUOS HOSPITALARIOS EN
LABORATORIO Y LA TOMA DE MUESTRAS
Versión 1
Código
PR-LAB-22
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
79
Documento
Controlado
ADVERTENCIAS Y RECOMENDACIONES:
> Recuerde que para evitar accidentes ocupacionales, las agujas deben introducirse en el guardián sin
reenfundar. Las fundas o caperuzas de protección se arrojan en el recipiente con bolsa verde o gris,
siempre y cuando no se encuentren contaminadas de sangre u otro fluido corporal.
> Recuerde que el Hipoclorito de Sodio utilizado en la institución viene en una concentración del 5%, por lo
tanto para preparar una dilución al 0,5% ó 5.000 PPM, se deben agregar 100 cc de hipoclorito de sodio a 900
cc de agua.; mientras que para preparar una dilución al 0,1% o 500 PPM, se deben agregar 20 cc de
hipoclorito a 980 cc de agua. Los anteriores cálculos resultan de aplicar la formula
Concentración deseada x
Volumen deseado
Concentración conocida
Donde la concentración deseada es 0,5%; el volumen deseado es de 1.000 cc y la concentración conocida
es de 5%, este cálculo aplica para una dilución de 5.000 PPM ó al 0,5%
V=
En caso de presentarse derrames de sangre o líquidos corporales debe agregar una dilución de hipoclorito de
sodio a 5000 PPM, dejar por un período de 30 minutos para desactivar y luego proceda con su remoción con un
paño seco.
> Considerar los desechos como potencialmente peligrosos, por ser el producto de todos los procesos
biológicos y químicos.
En el manejo de los desechos se deben tener en cuenta tres elementos básicos:
> El Individuo
> Las acciones Institucionales
> La coordinación interinstitucional.
> Clasificar los residuos en la fuente, utilizando recipientes debidamente marcados y/o bolsas con los códigos
de colores respectivos de acuerdo con el tipo de residuo que se vaya a desechar.
> BOLSA ROJA: Desechos Anatomopatológicos. Residuos que implican contaminación biológica
> BOLSA VERDE: Desechos ordinarios, comunes, no reciclables
Ø CARACTERÍSTICAS DE LAS BOLSAS:
> La resistencia de las bolsas debe soportar la tensión ejercida por los residuos contenidos y por su manipulación.
> El material plástico de las bolsas para residuos infecciosos, debe ser polietileno de alta densidad, o el material que se
determine necesario para la desactivación o el tratamiento de estos residuos.
> El peso individual de la bolsa con los residuos no debe exceder los 8 Kg.
> La resistencia de cada una de las bolsas no debe ser inferior a 20 kg.
> Los colores de bolsas seguirán el código establecido, serán de alta densidad y calibre mínimo de 1.4 para bolsas
pequeñas y de 1.6 milésimas de pulgada para bolsas grandes, suficiente para evitar el derrame durante el
almacenamiento en el lugar de generación, recolección, movimiento interno, almacenamiento central y disposición
final de los residuos que contengan.
> CARACTERISTICAS DE LAS CANECAS:
> Color acorde a la clasificación.
> Impermeables, material plástico.
> Livianas: facilitan transporte y manejo.
> Herméticas: con tapa.
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO DE MANEJO INTERNO DE
RESIDUOS HOSPITALARIOS EN
LABORATORIO Y LA TOMA DE MUESTRAS
<

Código
PR-LAB-22
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
80
Documento
Controlado
Tamaño adecuado, superficie interna lisa.
Marcadas con el área.
 ALMACENAMIENTO
Debe estar dotado con todos los recipientes que corresponden a la clasificación de los residuos. Debe tener
características específicas:






Área restringida al personal ajeno al manejo de desechos.
Segura: Señalizada para prevenir sobre los riesgos del área, sobre el tipo de residuos y los códigos de
colores.
Ventilación e iluminación adecuada.
Pisos duros y lavables.
Paredes impermeables.
Higiénico y limpio: Permanezca en óptimas condiciones de higiene y limpieza (dotación de agua,
sistema de drenaje, programas continuos de limpieza y desinfección, programas de control de plagas).
 Dar información y educación continuada sobre el manejo de los residuos a todo el personal involucrado en el
proceso.
 Proteger el ambiente a través del manejo adecuado de los residuos, adquiriendo un compromiso con el
futuro.
FLUJOGRAMA
INICIO
Servicio de toma de
muestra y laboratorio
Desechos como agujas
depositar en guardián,
sellarlo, rotularlo y empacarlo
en bolsa roja llevarlo al
depósito de los residuos.
Desechos como gasas,
algodones, guantes,
escobillones etc., depositarlos
en bolsa rojas, sellarla, rotularla
y llevarla al depósito de los residuos
Desechos no contaminados
depositarlos en bolsa verde y
llevarlos al depósito de los
residuos.
Recolección de los residuos por
parte de la empresa
recolectora de residuos
hospitalarios y por el de aseo.
FIN
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO DE MANEJO INTERNO DE
RESIDUOS HOSPITALARIOS EN
LABORATORIO Y LA TOMA DE MUESTRAS
Código
PR-LAB-22
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
81
Documento
Controlado
REGISTROS DE CALIDAD

Registro de limpieza y desinfección del material de vidrio.

Registro Rh 1.
NORMATIVIDAD
· Resolución 1164/2002 y demás normas que la modifiquen adicionen o sustituyan.
· Resolución 1043 de octubre de 2006 “Por el cual se establecen condiciones que deben
cumplir los prestadores de servicios de salud para habilitación.
TERMINOS Y DEFINICIONES
INACTIVACION: Supresión del efecto tóxico de un germen o una toxina, conservando propiedades de utilidad
para la terapéutica.
RESIDUOS BIOSANITARIOS: Son todos aquellos elementos o instrumentos utilizados durante la ejecución
de los procedimientos asistenciales que tienen contacto con materia orgánica, sangre o fluidos corporales del
paciente humano o animal tales como: gasas, apósitos, aplicadores, algodones, drenes, vendajes, mechas,
guantes, bolsas para transfusiones sanguíneas, catéteres, sondas, material de laboratorio como tubos
capilares y de ensayo, medios de cultivo, láminas porta objetos y cubre objetos, laminillas, sistemas cerrados y
sellados de drenajes, ropas desechables, toallas higiénicas, pañales o cualquier otro elemento desechable
que la tecnología médica introduzca para los fines previstos en el presente numeral.
RESIDUOS CORTOPUNZANTES: Son aquellos que por sus características punzantes o cortantes pueden
dar origen a un accidente percutáneo infeccioso. Dentro de éstos se encuentran: limas, lancetas, cuchillas,
agujas, restos de ampolletas, pipetas, láminas de bisturí o vidrio, y cualquier otro elemento que por sus
características cortopunzantes pueda lesionar y ocasionar un riesgo infeccioso.
SEGREGACION: Separar, apartar o aislar una mercancía peligrosa de otra que puede ser o no peligrosa, de
acuerdo con la compatibilidad que exista entre ellas.
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO DE MANEJO INTERNO DE
RESIDUOS HOSPITALARIOS EN
LABORATORIO Y LA TOMA DE MUESTRAS
Versión 1
Código
PR-LAB-22
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
82
Documento
Controlado
BIBLIOGRAFIA









MONTREAL, Julio. Consideración sobre el manejo de residuos de hospitales en América Latina.
Programa de salud ambiental OMS, OPS. Washington, 2003.
VARGAS BEJARANO, Carlos y col. Residuos sólidos industriales. Santafé de Bogotá, 2004.
INSTITUTO DE SEGUROS SOCIALES. El abc de la seguridad en el laboratorio. Santafé de Bogotá,
2004.
D. BERNABEL. Seguridad manual para laboratorio. E. Merk Darmstadt, 2005.
GARCÍA, Hilda y col. Buenas prácticas de laboratorio, manual de administración de laboratorio de
control de calidad de medicamentos. Fernando Chacón Editores, 2005
FERNÁNDEZ LLANEZ, Roberto. Riesgo biológico ocupacional y medidas de seguridad en los
laboratorios médicos, Instituto de medicina tropical, Pedro Kaurie, Cuba, abril 2007.
OSORIO C., Carlos Manuel. Ls incineración y los desechos hospitalarios en: Boletín epidemológico de
Antioquia, servicio seccional de salud, Medellín, 2007
LYNCH BLACKMAN, Nelly. “Seguridad operativa”, una necesidad en los laboratorios de salud
universidad de Zulia Maracaibo, Venezuela, 2008.
OPS /CEPIS, Guía para el manejo interno de residuos sólidos en centros de atención de salud.Lima,
Perú 2009.
ESE Departamental Solución
salud
Versión 1
PROCEDIMIENTO DE RUTINA DIARIA DE
MANTENIMIENTO DE EQUIPOS BIOMEDICOS
DEL LABORATORIO CLINICO
Código
PR-LAB-23
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
83
Documento
Controlado
PROCEDIMIENTO DE RUTINA DIARIA DE
MANTENIMIENTO DE EQUIPOS BIOMEDICOS
DEL LABORATORIO CLINICO
ESE Departamental Solución
salud
Código
PR-LAB-23
Versión 1
PROCEDIMIENTO DE RUTINA DIARIA DE
MANTENIMIENTO DE EQUIPOS BIOMEDICOS
DEL LABORATORIO CLINICO
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
84
Documento
Controlado
OBJETIVO
Realiza el aseo de los equipos o instrumental con el propósito de remover organismos y suciedad para
garantizar la efectividad de los procesos de limpieza y desinfección.
ALCANCES
Aplica para el personal que labora en el centro de atención y que está involucrado en la limpieza y desinfección
de los equipos de laboratorio clínico.
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la auxiliar y/o Bacterióloga del laboratorio clínico.
GENERALIDADES
Es el procedimiento mediante el cual se realiza el aseo de los equipos de laboratorio con el fin de remover
organismos y suciedad para garantizar la efectividad de los procesos de limpieza y desinfección.
DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO:
Elementos y materiales
>
>
>
>
Recipiente
Agua
Jabón
Hipoclorito de sodio a 5000 ppm
>
Aliste el material necesario
>
Colóquese los elementos de protección personal.
Con un paño humedecido con solución limpiadora (agua + jabón), limpie con movimientos horizontales las
superficies de los equipos del área técnica del laboratorio, luego enjuague el paño y pase nuevamente
con movimientos verticales para retirar el detergente aplicado. Asegúrese que los equipos queden bien
limpios.
>
>
>
Una vez los haya limpiado, proceda con la aplicación con hipoclorito de sodio 5000 ppm, deje actuar por
20 minutos y luego remueva con paño húmedo y deje secar.
Si se presenta derrame en centrífuga, con guantes gruesos y gasa impregnada en solución desinfectante
de hipoclorito de sodio 0,5% - 1% limpiar la superficie de la centrifuga y esperar 30 minutos. Los tubos de
centrífuga contaminados colocarlos en balde con hipoclorito por 30 minutos. Limpiar con solución
jabonosa y enjuagar con trapo limpio. Los tubos de la centrifuga enjuagarlos en agua corriente y secarlos
según necesidad.
La limpieza y desinfección de los equipos y mobiliario se debe hacer diaria, después de terminar labores,
y las superficies, equipos utilizados directamente, sobre o por el paciente, se deben asear entre atención
y atención.
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salud
Versión 1
PROCEDIMIENTO DE RUTINA DIARIA DE
MANTENIMIENTO DE EQUIPOS BIOMEDICOS
DEL LABORATORIO CLINICO
Código
PR-LAB-23
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
85
Documento
Controlado
ADVERTENCIAS Y RECOMENDACIONES:

Recuerde que el Hipoclorito de Sodio utilizado en la institución viene en una concentración del 5%, por lo
tanto para preparar una dilución al 0,5% ó 5.000 PPM, se deben agregar 100 cc de hipoclorito de sodio a
900 cc de agua.; mientras que para preparar una dilución al 0,1% o 500 PPM, se deben agregar 20 cc de
hipoclorito a 980 cc de agua. Los anteriores cálculos resultan de aplicar la formula
Concentración
de s e ada
x
V ol um e n
deseado
V=
Concentración
conocida
Donde la concentración deseada es 0,5%; el volumen deseado es de 1.000 cc y la concentración conocida es
de 5%, este cálculo aplica para una dilución de 5.000 PPM ó al 0,5%
En caso de presentarse derrames de sangre o líquidos corporales debe agregar una dilución de hipoclorito de
sodio a 5000 PPM, dejar por un período de 30 minutos para desactivar y luego proceda con su remoción con
un paño seco.
LIMPIEZA DE EQUIPOS ENVIADOS A MANTENIMIENTO
Es obligación del personal del laboratorio la desinfección y limpieza (según los estándares), de los equipos o
instrumentos antes del envió de los mismos a reparación o mantenimiento. Diligenciar “Registro limpieza y
desinfección de equipos” Formato mantenimiento.
RUTINA DIARIA DE DESINFECCION
Antes de iniciar cada jornada de trabajo se debe realizar la desinfección de las áreas de trabajo incluyendo
mesones, superficie de equipos. Limpieza de pisos y evacuar las canecas en uso.
RUTINA SEMANAL DE DESINFECCION
Incluye la rutina diaria de desinfección y adicionalmente limpieza de paredes, ventanas y baños.
RUTINA QUINCENAL DE DESINFECCION
Incluye la rutina diaria y semanal de desinfección y adicionalmente lavado de pisos.
ESE Departamental Solución
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Código
PR-LAB-23
Versión 1
PROCEDIMIENTO DE RUTINA DIARIA DE
MANTENIMIENTO DE EQUIPOS BIOMEDICOS
DEL LABORATORIO CLINICO
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
86
Documento
Controlado
LAVADO DE SUPERFICIES DE EQUIPOS Y MUEBLES
Frotar la
superficie de
los equipos y
muebles con
agua y jabón
Auxiliar de
Retirar con agua
potable
Laboratorio
Se debe realizar
diariamente antes y
después de utilizar los
equipos.
Aplicar solución de
hipoclorito de sodio
en concentración de
500 ppm.
REGISTROS DE CALIDAD

Registro diario de limpieza y desinfección de equipos.
NORMATIVIDAD
Resolución 1043 de octubre de 2006 “Por el cual establecen condiciones que deben cumplir los prestadores de
servicios de salud para habilitación.
TERMINOS Y DEFINICIONES
DESINFECCIÓN: Es un proceso que elimina los microorganismos patógenos, con la excepción de las
endoesporas bacterianas, de los objetos inanimados. Se lleva a cabo con líquidos químicos.
DESINFECCIÓN RUTINARIA: La realizada cuando la contaminación es menor o al finalizar las labores
diarias.
DESINFECTANTES: Agente químico o sustancia físicas que destruye microorganismos en crecimiento, pero
no necesariamente sus formas resistentes, como esporas, excepto cuando el uso indicado es en contra de
ellas. Al igual que los germicidas, destruyen diferentes gérmenes, pero a diferencia de ellos, éstos sólo se
aplican a objetos inanimados. Además de su actividad, se debe revisar en detalle la compatibilidad con los
equipos y para ello es importante conocer las recomendaciones de sus fabricantes. Para su elección también
se deben tener en cuenta la toxicidad, el olor, la compatibilidad con otros compuestos y su posible efecto
residual.
ESE Departamental Solución
salud
Versión 1
PROCEDIMIENTO DE RUTINA DIARIA DE
MANTENIMIENTO DE EQUIPOS BIOMEDICOS
DEL LABORATORIO CLINICO
Código
PR-LAB-23
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
87
Documento
Controlado
LIMPIEZA: Es la remoción de todos los materiales extraños (detritus, sangre, proteínas, etc.) que se adhiere a
los diferentes objetos. Se realiza con agua, detergentes y productos enzimáticos. Siempre debe anteceder a
los procesos de desinfección y esterilización. Es altamente efectiva para remover microorganismos. En Europa
se conoce con el nombre de descontaminación.
DETERGENTE: Sustancia que facilita la separación de materias extrañas presentes en superficies sólidas,
cuando se emplean en un disolvente (usualmente agua) en una operación de Lavado, sin causar abrasión o
corrosión.
ENJUAGUE: Eliminación de detergentes, agentes químicos y otros productos usados en la operación de
limpieza, higienización y desinfección, por medio de agua limpia y potable. Se realiza por operaciones de
mezcla y dilución.
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PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS DE BACILOSCOPIA
Versión 1
Código
PR-LAB-24
Fecha Vigencia
27/03/2011
PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS
DE BACILOSCOPIA
Página
88
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PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS DE BACILOSCOPIA
Código
PR-LAB-24
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
89
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OBJETIVO
Búsqueda microscópica de Bacilos Acido Alcohol Resistente a partir de una muestra de esputo que se obtiene
por expectoración.
ALCANCES
Aplica para los usuarios que solicitan el servicio en el centro de atención.
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la Bacterióloga del servicio de laboratorio clínico.
GENERALIDADES
Se estima que alrededor de un tercio de la población mundial, dos mil millones de personas, están infectadas
con Mycobacterium tuberculosis, bacilo causante de la tuberculosis; aproximadamente 8 millones de ellos
enferman anualmente y cerca de dos millones mueren por la enfermedad, aún cuando se cuenta con técnicas
de diagnóstico sencillas y precisas y tratamientos eficaces.
La transmisión de los bacilos de la tuberculosis se produce casi exclusivamente por medio de núcleos
suspendidos en pequeñas gotas que son expulsadas con la expectoración de las personas afectadas por
tuberculosis pulmonar. Estas pequeñas gotas pueden permanecer infectantes en el aire durante bastante
tiempo y pueden ser inhaladas por otras personas. La infección de los contactos es más probable cuando
conviven o permanecen durante un tiempo prolongado cerca del enfermo que está expectorando bacilos y en
un ambiente poco ventilado.
No todas las personas infectadas enferman, sólo una de cada diez aproximadamente, que son las más
susceptibles. La tuberculosis puede manifestarse en cualquier órgano, porque M.tuberculosis se disemina
por todo el organismo; sin embargo, la enfermedad pulmonar es la más frecuente (80-85% de todos los
casos diagnosticados) debido a que el bacilo necesita abundante oxígeno para multiplicarse. En los
pulmones de los enfermos se pueden formar cavidades en las que se alojan grandes poblaciones de
bacilos que pueden ser detectados en muestras de esputos.
Los síntomas más característicos de la tuberculosis pulmonar son la tos y la expectoración persistentes por
más de 2 semanas. A las personas con estos síntomas se los llama Sintomáticos Respiratorios (SR). Otras
manifestaciones pueden ser pérdida de peso, febrícula, sudores nocturnos, cansancio físico y dolores de tórax.
El diagnóstico de certeza de tuberculosis puede hacerse en forma confiable en el laboratorio demostrando la
presencia de bacilos en una muestra de la lesión por medio de la baciloscopia (examen microscópico) o el
cultivo.
Para que la baciloscopia sea positiva es preciso que la muestra tenga como mínimo, entre 5.000 y 10.000
bacilos por mililitro de muestra. Este alto contenido de bacilos se encuentra en los pacientes con tuberculosis
pulmonar, especialmente en aquellos con enfermedad avanzada y con lesiones cavitadas. Estos pacientes son
los que transmiten los bacilos manteniendo la enfermedad en la comunidad.
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PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS DE BACILOSCOPIA
Versión 1
Código
PR-LAB-24
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
90
Documento
Controlado
El Programa de Control de Tuberculosis tiene como objetivo principal cortar la cadena de transmisión,
diagnosticando tempranamente los casos infectantes y tratándolos con esquemas eficaces hasta lograr su
curación. La estrategia recomendada internacionalmente para alcanzar este objetivo es la del tratamiento
abreviado estrictamente supervisado, TAES o DOTS, según se utilice sus siglas en castellano o en inglés
respectivamente. Esta estrategia requiere el compromiso político para asegurar los recursos para controlar la
tuberculosis, el acceso a la baciloscopia con calidad asegurada para la detección de casos. el control de la
evolución de los pacientes, el acceso y disponibilidad ininterrumpidos de las drogas que integran los esquemas
estandarizados de tratamiento para curar a los enfermos, y un sistema de registros e información que permita
evaluar el resultado de los tratamientos y el desempeño del Programa de Control.
Para que el laboratorio pueda obtener resultados confiables no sólo es necesario que ejecute las técnicas
correctamente. También necesita recibir una buena muestra, entendiéndose por tal la que proviene del sitio de
la lesión que se investiga, obtenida en cantidad suficiente, colocada en un envase adecuado, bien identificada,
conservada y transportada.
La muestra más examinada es el esputo debido a que, como se ha dicho, la tuberculosis pulmonar es la más
frecuente. Sin embargo, dado que la enfermedad puede manifestarse en cualquier órgano, con menor
frecuencia puede requerirse la investigación de muestras muy variadas: orina, líquido cefalorraquídeo, líquido
pleural, líquido ascítico, sangre, pus de cavidades abiertas, biopsias. Estas muestras de lesiones
extrapulmonares deben procesarse también por cultivo.
EL ESPUTO
El envase
Debe tener las siguientes características:
Boca ancha: de no menos de 50 mm de diámetro
Capacidad entre 30 y 50 ml: para facilitar que el paciente pueda depositar la expectoración con facilidad
dentro , sin ensuciar sus manos o las paredes del frasco y para que en el laboratorio se pueda seleccionar y
tomar la partícula más adecuada, con comodidad, para realizar el extendido.
Cierre hermético: con tapa a rosca, para evitar derrames durante el transporte y la producción de aerosoles
cuando se abre en el laboratorio. Las tapas a presión generan mayor riesgo de formación de aerosoles y
salpicaduras en el momento de ser retiradas
Material plástico transparente, resistente a roturas, para poder observar la calidad de la muestra cuando la
entrega el paciente, evitar roturas y derrames de material infeccioso y para que pueda ser desechado.
No se recomienda lavar y reutilizar frascos de vidrio, para evitar posibles errores en la baciloscopia originados
en la transferencia de material de una muestra a otra y minimizar la manipulación de material potencialmente
infeccioso.
Número de muestras y momento de la recolección
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PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS DE BACILOSCOPIA
Versión 1
Código
PR-LAB-24
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
91
Documento
Controlado
Para diagnóstico
Como la eliminación de los bacilos por el esputo no es constante, es conveniente analizar más de una muestra
de cada sintomático respiratorio, para el diagnóstico de la tuberculosis. La primera muestra puede detectar
aproximadamente el 80% de los casos positivos, la segunda agrega un 15% y la tercera un 5% más.
Para control de tratamiento
El tratamiento de la tuberculosis comprende dos fases: una inicial intensiva que dura entre 2 y 3 meses y otra de
consolidación que dura de 4 a 5 meses, dependiendo de la categoría del paciente y del esquema adoptado por
el PNCT (Programa Nacional de Control de Tuberculosis).
La disminución paulatina y sostenida en la escala de positividad hasta la negativización de la baciloscopia
evidencia buena evolución del paciente Independientemente del esquema, se aconseja examinar por
baciloscopia una muestra por mes de cada paciente de tuberculosis pulmonar con baciloscopia inicial positiva.
Si esto no es posible, se debe examinar por lo menos una muestra MATINAL al final de la fase intensiva.
Si la baciloscopia es negativa, coincidiendo con mejoría clínica y cumplimiento del tratamiento, se pasa a la
segunda fase de tratamiento. Si por el contrario, la baciloscopia continúa positiva, será enviada para cultivo
para el caso en que se requiera prueba de sensibilidad y se evaluará si el paciente puede pasar a la fase de
continuación o si debe extenderse la primera fase.
Luego se debe tomar al menos otra muestra para microscopía al finalizar el 4º mes para controlar la evolución
del paciente y detectar un posible fracaso del tratamiento, y una al finalizar el tratamiento para confirmar la
curación.
La detección del fracaso de tratamiento es más seguro cuando se basa en reiterados resultados positivos de
baciloscopias en sucesivas muestras del paciente.
Algunos pacientes que inician su tratamiento con baciloscopia altamente positiva y están respondiendo bien al
tratamiento pueden seguir presentando baciloscopia positiva al finalizar la fase intensiva, aunque con menor
grado de positividad. Es posible también que expectoraren bacilos muertos que son vistos en el examen
microscópico. El cultivo permite determinar si son bacilos vivos o no viables (no cultivables o muertos). Si la
mayor parte o todos los bacilos vistos son no viables, el cultivo presentará escasas colonias o será negativo, a
pesar de la baciloscopia positiva y esto coincidirá con una evolución clínica favorable.
Para organizar la internación de pacientes
Para evitar la transmisión de tuberculosis intrahospitalaria el paciente bacilífero que, excepcionalmente,
requiera ser internado deberá permanecer en aislamiento hasta que la baciloscopia de tres muestras de esputo
tomadas en días sucesivos resulte negativa. En este caso es recomendable evaluar al paciente con
baciloscopias de esputo semanales desde el momento en que la positividad es categorizada como una cruz,
para detectar oportunamente la negativización y permitir que el aislamiento finalice lo antes posible.
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PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS DE BACILOSCOPIA
Versión 1
Código
PR-LAB-24
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
92
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Controlado
Obtención espontánea del esputo
> El primer paso para asegurar la calidad de la baciloscopia consiste en explicar al Sintomático respiratorio, con
mucha claridad, la importancia de examinar muestras de esputo, la necesidad de recolectar esputo y no
saliva,la forma de lograr una buena muestra, dónde colectarla y cómo manipularla hasta entregarla en el
laboratorio
Para la recolección de las muestras
> Elegir un lugar bien ventilado y que ofrezca privacidad. Puede ser una habitación bien ventilada y con acceso
de luz natural (sol) o algún lugar abierto no concurrido. Son inadecuados los lugares cerrados o muy
concurridos tales como laboratorios, consultorios médicos, salas de espera o baños, ya que éste es el proceso
más riesgoso entre todos los necesarios para realizar la baciloscopia.
> Entregar al sintomático respiratorio el envase de recolección ya rotulado con su nombre o número de
identificación y el servicio que solicita la baciloscopia. Estos datos deben ser escritos en la pared del frasco y no
en la tapa para evitar errores, con rótulos que no se despeguen o con lápiz indeleble.
> Solicitar al sintomático respiratorio una buena muestra de esputo utilizando la palabra que lo identifica en
cada lugar (gargajo, del fondo del pecho, etc) instruyéndolo con lenguaje simple y comprensible para que:
>
>
>
>
inspire profundamente llenando sus pulmones de aire tanto como sea posible
retenga el aire un momento
expulse luego la expectoración con un esfuerzo de tos, tratando de arrastrar las secreciones del pulmón
recoja el esputo producido dentro del envase tratando de que entre en su totalidad, sin manchar sus manos o
las paredes externas del frasco
> repita esta operación otras dos veces colocando todas las secreciones en el mismo frasco
> limpie el exterior del envase con un pañuelo de papel y se lave las manos con agua y jabón
Calidad de la muestra
> La muestra de esputo mucopurulenta, proveniente de árbol bronquial, es la que asegura mayor probabilidad
de que se puedan observar bacilos.
> Una buena muestra tiene aproximadamente 3 a 5ml, es generalmente espesa y mucoide. Puede ser fluida
con partículas de material purulento. El color es variable (blanco, amarillento y hasta verdoso). A veces son
sanguinolentas.
> Las secreciones nasales, faríngeas o la saliva no son buenas muestras para investigar tuberculosis, aunque
es conveniente examinarlas, de todas formas, porque siempre existe la posibilidad de que contengan parte de
la expectoración o bacilos expulsados por la tos que hayan quedado en la boca, nariz o faringe.
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PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS DE BACILOSCOPIA
Versión 1
Código
PR-LAB-24
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
93
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RECEPCION DE LOS PACIENTES
El laboratorio debe recibir las muestras durante toda la jornada de atención a los pacientes.
Luego puede regular el momento en que las procesa ya que el esputo puede conservarse unos días, sobre todo
si sólo va a ser examinado por baciloscopia. Aún así, el examen debe ser realizado con la mayor premura
posible, dentro de una rutina lógica de trabajo
Después de recibida la muestra es necesario agilizar los procedimientos en todo lo posible. Cuanto antes se
procese, mayor será la posibilidad de encontrar en ella M. tuberculosis por baciloscopia o cultivo. La
temperatura ambiente y el transcurso del tiempo favorecen la multiplicación de los gérmenes habituales del
árbol respiratorio y de la boca que desnaturalizan las proteínas del esputo, dificultan la elección de la partícula
útil y favorecen la destrucción del bacilo. La multiplicación de la flora habitual o contaminante de las muestras
de orina o contenido gástrico aumenta la posibilidad de que el cultivo resulte contaminado.
DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
>
>
>
Lavarse las manos
Colocarse la bata y guantes
Ubicar en la mesa de superficie lisa, bandeja o papel embebido en hipoclorito de sodio al 1% sólo lo
necesario para realizar el extendido:
>
mechero
>
aplicadores
>
soporte para los extendidos
>
lápiz para marcar láminas portaobjetos
>
láminas portaobjetos nuevos, previamente sumergidos en alcohol y secados al aire.
>
Destapar con cuidado el envase.
>
Partir un aplicador en dos, tratando de que las puntas queden ásperas.
>
Tomar una parte del aplicador con la mano izquierda y la otra con la derecha, entre el pulgar y el índice, y
con los extremos irregulares seleccionar la partícula más densa o purulenta de la muestra de esputo.
Enrollarla en una de los dos partes del aplicador con la ayuda de la otra. Si la muestra contiene varias
porciones mucopurulentas, tratar de mezclarlas con movimientos muy suaves del palillo y luego tomar una
porción de la mezcla. Si sólo hay pequeñas partículas purulentas, escoger tres o más y mezclarlas en el
mismo portaobjetos para homogeneizarlas.
>
>
Colocar la(s) partícula(s) seleccionada(s) sobre el portaobjetos y extenderla con el aplicador con
movimientos suaves, circulares, tratando de dispersarla en forma homogénea en el centro de la lámina,
dibujando un círculo u óvalo de 2 cm de largo por 1 a 2 cm de ancho, sin llegar a los bordes de la lámina para
evitar que el operador se contamine al manipularla.
Verificar que el extendido tenga grosor homogéneo y adecuado. Si es demasiado fino, es posible producir
un resultado falso negativo. Si es muy grueso, el material puede desprenderse durante la coloración o
puede resultar difícil la visualización de bacilos debajo de una capa gruesa de moco.
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PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS DE BACILOSCOPIA
>
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>
>
>
>
>
>
>
>
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Código
PR-LAB-24
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
94
Documento
Controlado
Dejar el extendido en un soporte ubicado al costado de la mesada para que se seque a temperatura
ambiente.
Fijar el extendido con calor cuando ya esté seco
Colorear con Ziehl Neelsen
Cubrir totalmente la superficie del extendido con fucsina básica fenicada
Con la llama de un hisopo embebido en alcohol calentar suavemente por debajo de los extendidos, con
movimientos de vaivén, hasta que observe que se desprenden los primeros vapores blancos, por 5
minutos. No hervir la fucsina.
Enjuagar con abundante agua.
Cubrir la totalidad del extendido con solución decolorante alcohol acido y dejar actuar
aproximadamente 3 minutos
Enjuagar con abundante agua a baja presión.
Cubrir todo el extendido con solución de azul de metileno.
Dejar actuar durante un minuto.
Dejar secar las láminas a temperatura ambiente
Agregar 1 gota de aceite de inmersión y leer en 100X
INFORME DE LOS RESULTADOS
Resultado del examen
microscópico
No se encuentran BAAR
en los 100 campos observados
Se observan de 1 a 9 BAAR
en 100 campos observados
Se observa entre 10 y 99 BAAR
en 100 campos observados
Se observan de 1 a 10 BAAR
por campo en 50 campos
observados
Se observan más de 10 BAAR
por campo en 20 campos
observados
Informe
No se observan bacilos ácido - alcohol
resistentes
Nº exacto de bacilos en
100 campos
Positivo (+)
Positivo (++)
Positivo (+++)
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PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS DE BACILOSCOPIA
Código
PR-LAB-24
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
FLUJOGRAMA
INICIO
Coger la muestra
de esputo
En una lamina realizar el
extendido circular en el
centro de esta
Dejar secar a temperatura
ambiente y fijar el
extendido con calor
cuando ya este seco
Realizar la coloración de
Ziehl Neelsen
y secar a
temperatura ambiente
Agregar una gota de aceite
de inmersión y observar en
100 X
Reportar en
el registro de
resultados
FIN
Página
95
Documento
Controlado
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PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS DE BACILOSCOPIA
Versión 1
Código
PR-LAB-24
Fecha Vigencia
27/03/2011
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96
Documento
Controlado
REGISTROS DE CALIDAD
>
Registro de diario de pacientes, exámenes solicitados y resultados de los mismos.
>
Reporte de resultados
>
Historia clínica
NORMATIVIDAD:
·
·
Manual para el diagnóstico bacteriológico de la tuberculosis , normas y guía
técnica. Organización panamericana de la salud 2008.
Resolución 412 de 2000
TERMINOS Y DEFINICIONES
TUBERCULOSIS: Es una enfermedad infectocontagiosa producida por la bacteria micobacterium
tuberculosis. Esta bacteria puede afectar cualquier parte del organismo sin embargo lo más frecuente es la
presentación como un cuadro bronconeumónico.
MUCOPURULENTO: Secreciones que contienen moco y pus.
SECRECION: Proceso por el que una célula o un ser vivo vierte al exterior gracias a sustancias de cualquier
clase. También se llama secreción a la sustancia liberada.
EXPECTORACION: Expulsión, después de un acceso de tos, de secreciones patológicas provenientes de las
vías traqueo bronquiales. A menudo, por extensión, se da el nombre de expectoración al propio gargajo, es
decir al producto de la expectoración.
ESPUTO: Es una secreción que se produce en los pulmones y en los bronquios que puede ser expulsada
cuando se da una tos profunda
BIBLIOGRAFIA
>
Acosta Reyes I, Reyes L, Rodríguez A. Marcelino B, Diclo J, Cabada RE, Heredia J, Tejada D. Red
Nacional de Laboratorios del Programa Nacional de Control de Tuberculosis. Manual de Normas Para el
Uso de la Bacteriología en Tuberculosis. República Dominicana. 2004.
>
Aziz MA, Ba F, Becx-Bleumink M, Bretzel G, Humes R, Iademarco MF, Sang Jae Kim, Lamothe F,
Paramasivan CN, Ridderhof J, Sloutsky A, Van Deum A, Shah KV, Weyer K. External Quality Assessment
for AFB Smear Microscopy. WHO, APHL, CDC, UATLD, KNCV, RIT. Washington DC, 2002.
Birkin N, Espinal M, Granch R, Jarvis W, Kumaresan J, Rieder H, Simone P. Normas para la prevención
de la Tuberculosis en los establecimientos de asistencia sanitaria en condiciones de recursos limitados.
WHO/CDS/TB/99269. 2002.
Blancarte L, de Kantor, I, Latini O, Laszlo A, Valenzuela P, Yáñez A. INPPAZ. Bacteriología de la
tuberculosis. La muestra. El examen microscópico. Nota Técnica Nº26 / Rev1. OPS/OMS. Martínez
(Buenos Aires, Argentina), 1988.
Camacho Prado M, Limache Ormachea G, Valdez Taboada D. Red Nacional de Laboratorios de
Tuberculosis de Bolivia. Manual de Laboratorio. La Paz, 2000.
>
>
>
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE BILIRRUBINAS
Código
PR-LAB-25
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
PROCEDIMIENTO PARA
EL ANALISIS
DE BILIRRUBINA
Página
97
Documento
Controlado
ESE Departamental Solución
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE BILIRRUBINAS
Código
PR-LAB-25
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
98
Documento
Controlado
OBJETIVO
Realizar el examen de bilirrubina con fotómetro manual, garantizando la calidad y oportunidad en el montaje y
entrega del resultado en el centro de atención.
ALCANCES
Aplica para los usuarios que solicitan el servicio en el centro de atención.
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la Bacterióloga del servicio de laboratorio clínico.
GENERALIDADES
La bilirrubina es un producto derivado del metabolismo de la hemoglobina. Los hematíes al degradarse liberan
la hemoglobina que es metabolizada a dos moléculas el grupo heme y el grupo globina, el grupo heme se
transforma en biliverdina y esta en bilirrubina a la cual se le llama "no conjugada" o indirecta. Al pasar por el
hígado esta bilirrubina se conjuga con ácido glucurónido transformándose en bilirrubina "conjugada" o directa.
El hígado segrega esta bilirrubina directa a través de las vías biliares hacia el intestino, al metabolizarse por la
flora intestinal se convierte en urobilinas que dan el color marrón a las heces. Parte de estas urobilinas se
reabsorben y pueden aparecer en la orina en forma de urobilinógeno.
Cuando se eleva la bilirrubina, la piel y los tejidos toman un color amarillo que se llama ictericia.
Según cuál sea el origen de la bilirrubina elevada podemos saber si es un problema de hígado (elevación de la
bilirrubina no conjugada) o de las vías biliares (elevación de la bilirrubina conjugada).
Cuando se realiza un análisis de rutina se mide la bilirrubina total (directa más indirecta), el 70 al 85 %
corresponde a la bilirrubina no conjugada o indirecta.
Bilirrubina delta En colestasias prolongadas, una fracción de la bilirrubina se une covalentemente a la
albúmina, lo que se conoce como bilirrubina delta. Esta bilirrubina reacciona como bilirrubina conjugada, pero
no se excreta por la orina y tiene una vida media plasmática prolongada, igual a la de la albúmina. La existencia
de esta bilirrubina explica que pueda prolongarse la ictericia por períodos prolongados luego de un cuadro de
colestasia, incluso después de que la función hepática se ha normalizado.
Manifestaciones clínicas de la hiperbilirrubinemia La elevación de la bilirrubina se manifiesta como
ictericia. El umbral para la detección clínica de ictericia está entre 2 y 3 mg/dL. Cuando la hiperbilirrubinemia es
directa (conjugada), se produce eliminación de la bilirrubina por orina, lo que produce un color oscuro
característico, llamado coluria. Durante el período de recuperación de un episodio de ictericia prolongada
puede desaparecer la coluria pero mantenerse la ictericia, lo que se explica por la bilirrubina delta.
Si hay una obstrucción completa de la vía biliar o una falla de la excreción hepática muy marcada de la
bilirrubina, ésta no llega al intestino y no produce la pigmentación color café de las deposiciones normales.
Esto explica la acolia, que describe la presencia de deposiciones blanquecinas.
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salud
PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE BILIRRUBINAS
Versión 1
Código
PR-LAB-25
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
99
Documento
Controlado
Interpretación de la bilirrubina elevada
Una vez que se determina una elevación de bilirrubina en los exámenes de sangre, el primer paso es verificar si
se trata de una hiperbilirrubinemia de predominio conjugado (hiperbilirrubinemia "directa") o no conjugado
(hiperbilirrubinemia "indirecta"). Habitualmente se habla de hiperbilirrubinemia de predominio directo cuando la
bilirrubina directa representa más del 30% de la bilirrubina total.
Hiperbilirrubinemia indirecta
La causa de hiperbilirrubinemia indirecta es una producción aumentada de bilirrubina, habitualmente por
aumento del catabolismo de hemoglobina, por ejemplo en anemias hemolíticas. En estas enfermedades se
encuentran signos de hemólisis en otros exámenes de sangre, como anemia, VCM elevada, LDH elevada y
haptoglobina disminuida. La hemólisis raramente produce elevaciones de bilirrubina mayores de 6 mg/dL. Otra
causa muy frecuente de hiperbilirrubinemia indirecta es el síndrome de Gilbert, que se caracteriza por una
disminución de la capacidad hepática de conjugación de la bilirrubina. Las otras pruebas hepáticas son
normales en el síndrome de Gilbert.
Una causa muy infrecuente de elevación de bilirrubina no conjugada es el síndrome de Crigler-Najjar, que
habitualmente se diagnostica al momento de nacer por hiperbilirrubinemia marcada (>20 mg/dL en CriglerNajjar tipo I).
Hiperbilirrubinemia directa
La hiperbilirrubinemia directa se asocia a enfermedades hepáticas debido a una insuficiente capacidad de
excreción. La elevación de bilirrubina conjugada en sangre es uno de los hallazgos característicos de los
cuadros colestásicos y se acompaña de elevación de fosfatasas alcalinas y GGT. Su aumento puede estar
dado por varias causas:
>
Obstrucción de la vía biliar: Ya sea por cálculos, tumores de la vía biliar o páncreas.
Enfermedades hepáticas colestásicas: Cirrosis biliar primaria, colangitis esclerosante primaria o
secundaria, toxicidad por medicamentos y tóxicos, etc.
>
> Hepatitis agudas: Una inflamación aguda del hígado puede producir elevaciones importantes de la
bilirrubina por falla de la excreción a nivel de la célula hepática. En estos casos la elevación de bilirrubina es de
predominio directo y se acompaña de elevaciones importantes de aminotransferasas (transaminasas, SGPT y
SGOT). Las hepatitis virales (virus hepatitis A, hepatitis B), hepatitis por toxicidad de medicamentos (toxicidad
por paracetamol) o tóxicos (p. ej. toxicidad por hongos) pueden producir daño hepático e ictericia.
>
Cirrosis: La cirrosis hepática puede acompañarse de elevaciones progresivas de la bilirrubina. Es
importante destacar que la elevación de bilirrubina es un fenómeno relativamente tardío en las enfermedades
hepáticas crónicas y refleja un daño importante de la función hepática.
Elevaciones aisladas de bilirrubina directa: Algunas enfermedades genéticas poco frecuentes se
caracterizan por elevaciones aisladas de bilirrubina directa, con el resto de las pruebas hepáticas normales.
Estos cuadros incluyen el síndrome de Rotor y Dubin-Johnson.
>
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE BILIRRUBINAS
Versión 1
Código
PR-LAB-25
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
100
Documento
Controlado
DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
EQUIPO NECESARIO:
> Centrífuga
> Fotómetro automatizado o manual con filtro de lectura a 546 nm. y 578 nm.
> Pipetas de 50, 100 y 1000 lamdas.
> Timer ó cronómetro.
REACTIVOS NECESARIOS
> Reactivo 1. Nitrato sódico
> Reactivo 2. Acido sulfanílico
> Reactivo 3. Cafeína
> Reactivo 4. Tartrato
> Solución salina 0.85%
> Controles de calidad (normal y patológico).
> Los reactivos están listos para su uso. La fecha de caducidad está indicada en la etiqueta.
> Debe conservarse a 2 – 8ºC.
METODO DE ESTANDARIZACION Y CALIBRACION
Es necesario para asegurar la validez de todas las muestras que se procesan, vigilar diferentes aspectos que
nos conducen a la meta de lograr resultados de buena calidad. Diariamente al igual que para los equipos
automáticos se deben correr sueros controles que serán depositados en las cubetas del equipo en el lugar
asignado para ello.
El Bacteriólogo debe estar atento para evitar agotamiento de los sueros y vigilar localización del mismo; por
medio de estos sueros podemos entonces verificar nuestro control de calidad (QC) y el equipo almacenara
diariamente los datos de absorbancia para poder construir las gráficas de LEVEY JENNING, la cual nos debe
dar datos entre la media (x) y ± 2ds; si los datos que se observan salen de este rango es necesario controlar
este error pues nos habla de resultados de mala calidad.
Otro aspecto que se considera diariamente es el de la calibración el cual en el equipo se realiza por medio de
suero calibradores/standard de concentraciones conocidas las cuales deben estar dentro del rango permisible
y a la vez nos servirá para la construcción de la curva de calibración y determinación de la linealidad o límite de
la reacción. Los valores de calibración son actualizados automáticamente cada vez que se realiza una
calibración.
El bacteriólogo asignado para el manejo del equipo debe estar pendiente de las alarmas que el equipo
automatizado reporta cuando los sueros controles, calibradores y reactivos presentan absorbancias altas y
bajas, además que debe repetir aquellas muestras que se salen de los rangos de referencia como método de
confirmación de resultados.
CRITERIOS Y PROCEDIMIENTOS DE CONTROL QUE DEFINEN RESULTADOS INACEPTABLES
 Muestras muy ictéricas y valores bajos es indispensable repetirlos.
 Muestras hemolizadas no pueden analizarse.
 Lecturas negativas, se rechazan y repiten.
 Lectura de la bilirrubina directa mayor que la total, se rechaza y se toman los correctivos necesarios.
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE BILIRRUBINAS
Código
PR-LAB-25
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
101
Documento
Controlado
ACCIONES CORRECTIVAS PARA RESULTADOS INACEPTABLES
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>
Calibración del equipo. (remitirse al manual del equipo)
Evitar imprecisión en los resultados, lo que se logra con: buen purgado del circuito,
Comprobar que las conexiones de los tubos no tengan fugas, en caso de equipo automatizado. O por
una imprecisión al pipetear.
Vigilar las puntas de las jeringuillas, si están desgastadas cambiarlas.
Utilizar adecuado volumen de muestra en los portamuestra.
Realizar la limpieza del circuito con agua destilada.
Evitar obstrucción en las agujas de muestras y deformación o curvas en la misma, si esto sucede
sustituirlas.
Verificar reactivos y llenar el depósito de éstos.
Centrifugar la muestra en los primeros 30 minutos.
Rechazar muestras hemolizadas, hiperlipemicas e insuficientes.
Refrigerar muestras que no se procesen el mismo día a 4ºC, inmediatamente se separe el coágulo.
Confirmar linealidad de la prueba y diluir si es necesario.
Verificar posición de las muestras en los portamuestras y confrontar con la hoja de carga.
Realizar periódicamente el mantenimiento del equipo
También es importante verificar en los reactivos el lote, la fecha de vencimiento, reactivos en mal estado
y agua contaminada, pues el equipo y el mismo bacteriólogo detectan cualquiera de estos errores y no
realiza en forma adecuada el análisis pedido.
PROCEDIMIENTO Y LECTURA
Los reactivos deben atemperarse a temperatura ambiente (15 – 25ºC).
Longitud de onda: 546 nm
Cubeta: 1 cm paso de luz
Temperatura: Ambiente (20 – 25ºC)
Lectura: Contra blanco de muestra.
FOTOMETRO MANUAL:
Marcar tubos de ensayo como blanco total y total problema, por cada una de las muestras; y blanco directa y
directa problema
BILIRRUBINA TOTAL
>
Del reactivo 1, agregar la cantidad especificada y estandarizada para la técnica sólo a los tubos
marcados como blanco total y muestra.
>
Del reactivo 2, agregar la cantidad especificada y estandarizada para la técnica al tubo marcado como
muestra.
>
Mezclar e incubar por 5 minutos
>
Agregar 100 lamdas de muestra a ambos tubos.
>
Mezclar e incubar a temperatura ambiente de 10 a 30 minutos y leer.
BILIRRUBINA DIRECTA
> Del reactivo 3, agregar la cantidad especificada y estandarizada para la técnica, sólo a los tubos marcados
como blanco directa y muestra.
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE BILIRRUBINAS
Código
PR-LAB-25
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
102
Documento
Controlado
> Del reactivo 4, agregar la cantidad especificada y estandarizada para la técnica al tubo marcado como
muestra.
> Mezclar
> Adicionar 100 lamdas de muestra a ambos tubos antes de 2 minutos
>
Se mezcla y se incuba a temperatura ambiente exactamente por 5 minutos
>
Leer inmediatamente.
>
>
>
>
>
Para bilirrubina directa:
Filtro: 546nm
Factor:13
Selector: contra factor
Incubar a temperatura ambiente de 10 a 30 minutos.
>
>
>
>
>
Para bilirrubina total:
Filtro: 546nm
Factor: 13
Selector: Contra factor
Incubar a temperatura ambiente exactamente a los 5 minutos.
EXPRESION DEL RESULTADO
En el laboratorio los resultados se expresan en mg/dl.
VALORES DE REFERENCIA
El intervalo de referencia es de hasta 1 mg/dl, para la bilirrubina total.
El intervalo de referencia es de hasta 0.25mg/dl, para bilirrubina directa.
Estos valores se dan a título orientativo; es recomendable que cada laboratorio establezca sus propios
intervalos de normalidad.
Las técnicas estandarizadas varían según la casa comercial en uso, a lo cual debe darse prioridad.
LINEALIDAD DEL METODO
El método para bilirrubina total es lineal hasta 30 mg/dl, para concentraciones mayores realizar diluciones 1:2,
ó 1:5
El método es lineal hasta 15mg/dl de bilirrubina directa, para concentraciones
mayores realizar diluciones 1:2, ó 1:5
ANOTACIONES SOBRE INTERFERENCIA TECNICA
La luz directa solar a temperatura ambiente causa disminución de la bilirrubina en 50% en el intervalo de una
hora.
Soluciones de limpieza del material como el hipoclorito y dextran pueden producir turbidez que no se puede
corregir completamente por medio de un blanco, aumentando los valores.
Las muestras hemolizadas dan lugar a resultados falsamente bajos en este análisis. Algunos medicamentos
como eritromicina, fenilbutazona, novobiocina, cloroquina pueden aumentar los niveles séricos de bilirrubina.
La cafeína y la teofilina disminuyen los valores de la bilirrubina sérica.
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE BILIRRUBINAS
Versión 1
Código
PR-LAB-25
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
103
Documento
Controlado
Condiciones de la Muestra:
>
>
>
>
>
>
>
>
>
Es necesario estar en ayunas al menos 4 horas antes de la determinación.
Las determinaciones de Bilirrubina total mediante un método diazo requieren suero o plasma, pero se
prefiere suero ya que el agregado de alcohol durante el ensayo puede precipitar las proteínas del plasma.
La hemólisis disminuye erróneamente los resultados, debido a una mayor absorbancia del blanco.
La contaminación con eritrocitos debe ser eliminada por centrifugación.
El suero turbio crea artefactos que interfieren con el ensayo espectofotometrico por esta razón debe
excluirse su utilización.
La bilirrubina es muy sensible a la luz y el calor la descompone, en consecuencia el análisis debe efectuarse
rápidamente y bajo luz atenuada para evitar resultados bajos falsos.
También es posible determinar bilirrubina en LCR y orina pero hay que tener en cuenta precauciones
especiales.
Hay medicamentos que alteran los resultados y elevan la bilirrubina como son: Alopurinol, esteroides,
antibióticos, antimaláricos, azatioprina, clopropamida, colinérgicos, codeina, diuréticos, metrotexate,
metildopa, morfina, anticonceptivos orales, fenotiazinas, rifampicina, salicilatos, sulfonamidas y la teofilina
Pueden disminuir su nivel en sangre los barbitúricos, la cafeína y la penicilina.
Interpretación:
La bilirrubina se eleva fisiológicamente en condiciones ya descritas, pero tiene importantes aumentos en
ciertas patologías tanto hepáticas como post hepáticas obstructivas y no obstructivas.
Las anemias hemolíticas la elevan considerablemente tanto en el recién nacido como en el adulto.
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE BILIRRUBINAS
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Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
104
Documento
Controlado
FLUJOGRAMA
INICIO
Blanco
bilirrubina
total
Muestra
bilirrubina
total
Blanco
bilirrubina
directa
Agregar 1 ml
reactivo 1
Muestra
bilirrubina
directa
Agregar 1 ml de
reactivo 3
Agregar 40 lamdas
de reactivo 2
Agregar 40 lamdas
de reactivo 4
Mezclar y agregar
muestra antes de
los 2 minutos
Mezclar e incubar
por 5 minutos
Agregar 100 lamdas
de muestra
Agregar 100
lambdas de la
muestra
Mezclar y dejar en reposo a t°
ambiente por 5 minutos
Mezclar y dejar en
reposo 10-30 min a
t° ambiente
Leer 546 nm,
factor 13
Leer a 546 nm,
factor 13
FIN
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE BILIRRUBINAS
Versión 1
Código
PR-LAB-25
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
105
Documento
Controlado
REGISTROS DE CALIDAD
> Registro de diario de pacientes, exámenes solicitados y resultados de los mismos.
> Reporte de resultados
> Historia clínica
NORMATIVIDAD
Inserto del reactivo en uso
TERMINOS Y DEFINICIONES
ICTERICIA: Consiste en el color amarillento de la piel, las membranas mucosas y la esclerótica (parte blanca)
del ojo que se produce debido a una alta concentración en sangre de una sustancia denominada bilirrubina, un
subproducto de los glóbulos rojos viejos. Aparece en muy diversas enfermedades. El color de la piel depende
del nivel de blirrubina. Si está moderadamente elevado, el color es amarillento, mientras que cuando el nivel es
alto, tiende a adquirir un color marrón.
ACOLIA: Ausencia de secreción de pigmentos biliares. Cuando se presenta en el transcurso de una hepatitis,
provoca la desaparición de la ictericia, mientras que persiste la decoloración de las materias fecales
(agravación del pronóstico).
HIPERBILIRRUBINEMIA: Es un trastorno cuya característica principal es una cantidad excesiva de bilirrubina.
En el 10 a 15% de los nacidos normales a término las cifras de ella pueden llegar a ser lo suficientemente
elevados para hacerse visible como ictericia ante el examen físico realizado por el médico.
CIRROSIS HEPÁTICA: Es la consecuencia de un daño acumulado en el hígado, durante años, caracterizado
por acumulación de fibrosis en el tejido hepático.
HEPATITIS: Enfermedad del hígado que causa inflamación. Los síntomas incluyen el agrandamiento
del hígado, fiebre, náusea, vómito, dolor abdominal y orina oscura.
OBSTRUCCION BILIAR: Es un bloqueo en los conductos que transportan la bilis desde el hígado hasta
la vesícula biliar y el intestino delgado.
BIBLIOGRAFIA
 Pearlman FC and Lee RTY. Detection and measurement of total bilirubin in serum, with use of surfactants as
solubilizing agents. Clin Chem 1974; 20: 447-453.
 Zoppi F, Peracino A, Fenili D, Marcovina S and Ramella C. Metodo per la determinazione della bilirubina
totale e coniugata. Uso di un tensioattivo cationico come agente solubilizzante. Giorn It Chim Cl 1976; 1:343359.
 Tietz Textbook of Clinical Chemistry, 2nd edition. Burtis CA, Ashwood ER. WB Saunders Co., 1996.
 Young DS. Effects of drugs on clinical laboratory tests, 3th ed. AACC Press, 2000
 Friedman and Young. Effects of disease on clinical laboratory tests, 3th ed. AACC Press, 2005.
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE GLICEMIA PRE Y POST CURVA
Y TEST DE O’SULLIVAN
Código
PR-LAB-26
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
106
Documento
Controlado
PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE GLICEMIA PRE Y POST CURVA
Y TEST DE O’SULLIVAN
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PR-LAB-26
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE GLICEMIA PRE Y POST CURVA
Y TEST DE O’SULLIVAN
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
107
Documento
Controlado
OBJETIVO
Realizar el examen de glicemia pre y post prandial con fotómetro manual, garantizando la calidad y oportunidad
en el montaje y entrega del resultado en el centro de atención
ALCANCES
Aplica para los usuarios que solicitan el servicio en el centro de atención
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la Bacterióloga del servicio de laboratorio clínico.
GENERALIDADES
La glicemia pre y post mide el comportamiento de la glucosa sanguínea basal y dos horas después de ingerir un
monómero de glucosa, suministrado por el laboratorio. La muestra ideal es post carga de glucosa y no la de
post-prandial (post-desayuno).
FUNDAMENTO O PRINCIPIO
La dieta del adulto normal contiene aproximadamente 45% de carbohidratos, los cuales son transportados por
la glucosa. Las enzimas salivares y gastrointestinales degradan los polisacáridos a monosacáridos de los
cuales, el 80% son glucosa, estos monosacáridos se absorben en el intestino delgado. La glucosa constituye
la mayor parte de los sacáridos de la sangre periférica los cuales son captados por las células hepáticas, a
través de un proceso de difusión simple. Las células del hígado y del riñón metabolizan la glucosa. La glucosa
penetra en las células bajo la influencia de la insulina para formar intracelularmente glucosa 6 fosfato, la cual
finalmente se metaboliza a glucógeno. El diagnostico de los trastornos del metabolismo de los carbohidratos
descansa en parte en la determinación del nivel plasmático de glucosa en ayunas o después de una prueba de
estimulación o supresión. Es uno de los criterios utilizados para el diagnóstico de la diabetes mellitus.
El método es el GOD-PAP.es un test de color-enzimático. Glucosa-oxidasa-peroxidasa. La glucosa es
transformada por la glucosa oxidasa (GOD), en ácido glucónico y en peróxido de hidrógeno, el cual en
presencia de peroxidasa (POD), oxida el cromógeno (4-aminofenazonal/fenol), convirtiéndolo en un
compuesto de color, el cual es cuantificado por el fotómetro del equipo manual o automatizado.
MATERIAL DE PRUEBA O MUESTRA – ESTABILIDAD
Suero o plasma con heparina, o con EDTA.
Estable por 6 días de 2 a 8ºC. Los líquidos corporales son
estables el mismo día a esta temperatura. Pasado un día no se deben procesar.
METODO RECOLECCION DE LA MUESTRA
Muestra de suero: Sangrar en tubo seco, dejar en reposo 5 – 10 minutos centrifugar por espacio de 15 minutos
y, luego decantar el suero, antes de 20 minutos.
Muestra de plasma: Sangrar en tubo con anticoagulante como heparina, EDTA, oxalato o fluoruros dejar en
reposo 5 – 10 minutos centrifugar por espacio de 15 minutos y, luego decantar el plasma, antes de 20 minutos.
FASE DE PRUEBA:
Ø Efectuar la prueba entre las 7 A.M y las 12 M. Se toma muestra de sangre venosa para la glicemia en
ayunas.
Ø Hacer un control de glucosa, si el resultado es mayor o igual a 140 mg/dl, no se debe continuar la
prueba, esta debe hacerse en orina, utilizando una tirilla para descartar glucosuria.
Ø Se puede también realizar Glucometría para el control de glucosa antes de dar la carga al paciente
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Versión 1
PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE GLICEMIA PRE Y POST CURVA
Y TEST DE O’SULLIVAN
Código
PR-LAB-26
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
108
Documento
Controlado
Ø A niños Administrar una dosis de 1.75 gr de glucosa/kg de peso, , a adultos suministrar 75g en 300ml de
agua; debe explicársele a éste que la ingestión debe hacerse máximo en 5 minutos. Se le anota al
paciente su nombre, número de orden que le corresponde en el diario de laboratorio, y las horas a las
cuales debe volver al laboratorio para que se le sangre de nuevo, o sea a las 2 horas de haber ingerido la
carga de glucosa.
Ø Aclararle al paciente, que no debe dejar pasar estas horas, y que avise si vomita porque su prueba debe
repetirse en un lapso de 10 – 15 días.
Ø Al paciente se le deben dar indicaciones claras y precisas sobre que no debe ingerir ningún alimento, ni
café, ni cigarrillo, ni alcohol. Al igual no realizar ejercicio mientras dure su prueba. El paciente tampoco
debe quedarse dormido.
Ø Cada tubo debe ir marcado con el nombre del paciente, el número de orden y la hora de sangrado del
paciente, si es 1, 2, ó 3 horas, etc. La separación de las muestras debe hacerse dentro de los 20 minutos
siguientes a la extracción de la muestra. El procesamiento de las muestras es igual a la técnica de
Glucosa – oxidasa –peroxidasa.
Ø Se puede hacer prueba de glicemia mediante glucometría disponible además de realizarla con tira de
orina.
GLICEMIA PRE Y POST:
Toma de muestra 0 horas
Toma de muestra 2 horas posterior a la ingesta de la carga
CURVA DE GLUCOSA: 5 muestras:
Toma de muestra 0 horas
Toma de muestra 30 minutos posterior a la ingesta de la carga
Toma de muestra 1 hora posterior a la ingesta de la carga
Toma de muestra 2 horas posterior a la ingesta de la carga
Toma de muestra 3 horas horas posterior a la ingesta de la carga
TEST DE O´SULLIVAN
Prueba realizada a las maternas de la siguiente manera:
Paciente en ayunas
Toma de muestra para Glicemia Pre.
Medición de glucometría o prueba de glucosuria
Suministro de 50 gr. De glucosa
Toma de muestra 1 hora después de la ingesta de la carga
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Código
PR-LAB-26
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE GLICEMIA PRE Y POST CURVA
Y TEST DE O’SULLIVAN
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
109
Documento
Controlado
METODO DE ESTANDARIZACION Y CALIBRACION
Es necesario para asegurar la validez de todas las muestras que en él se procesan, vigilar diferentes aspectos
que nos conducen a la meta de lograr resultados de buena calidad. Diariamente al igual que para otros equipos
y purezas se deben correr sueros controles que serán depositados en las cubetas o celas del equipo en el lugar
asignado para ello.
El Bacteriólogo debe estar atento para evitar agotamiento de los sueros y vigilar la localización del mismo si el
equipo axial lo exige; por medio de estos sueros podemos entonces verificar nuestro control de calidad (QC) y
el equipo almacenara diariamente los datos de absorbancia para poder construir las gráficas de LEVEY
JENNING, la cual nos debe dar datos entre la media (x) y ± 2ds; si los datos que se observan salen de este
rango es necesario controlar este error pues nos habla de resultados de mala calidad. Igualmente al revisar el
resultado del punto de control diariamente, se deben tener en cuenta el comportamiento de dicho punto y
revisar la tendencia en relación con los datos anteriores y axial poder establecer la valides de la prueba o la
identificación ya sea de errores aleatorios o sistémicos y proceder a corregir lo necesario para dar exactitud y
precisión a la determinación.
Otro aspecto que se considera diariamente es el de la calibración el cual en el equipo se realiza por medio de
suero calibradores/estándar de concentraciones conocidas las cuales deben estar dentro del rango permisible
y a la vez nos servirá para la construcción de la curva de calibración y determinación de la linealidad o límite de
la reacción. Los valores de calibración son actualizados automáticamente cada vez que se realiza una
calibración.
El manejo adecuado de todos estos aspectos es necesario para que la fiabilidad de los resultados de nuestro
laboratorio aseguren un 100%.
CRITERIOS Y PROCEDIMIENTOS DE CONTROL QUE DEFINEN RESULTADOS INACEPTABLES:
Al inicio del análisis deben correr los controles normal y anormal, si dan dentro del rango del valor esperado se
pueden pasar los resultados y montar las muestras. A los resultados de los pacientes por fuera de los valores de
referencia se le deben hacer medidas correctivas y confirmatorias necesarias.
ACCIONES CORRECTIVAS PARA RESULTADOS INACEPTABLES:
> Los resultados diarios del control de calidad se analizan.
> Si no están dentro del intervalo indicado, revisar reactivo, equipo, estándar, el material de vidrio o cubetas, la
calidad (aspecto) de la muestra.
> Tomar los correctivos necesarios de acuerdo a lo arrojado en este análisis incluyendo diluciones y corrección
de técnica. Calibración del equipo.(Remitirse al manual del equipo).
> Centrifugar muestras lo más rápido posible, en los primeros 20 minutos.
> Cambio de lote de sueros multicalibradores y reactivos, realizar nueva calibración del equipo.
> Verificar reactivos que correspondan a la prueba pedida y evitar agotamiento de los mismos.
> Rechazar muestras hemolizadas e insuficientes.
> Evitar burbujas en las pipetas de muestras y reactivos.
> Muestras que no se procesan el mismo día, refrigerar a 4ºC, inmediatamente se separe el coágulo.
> Confirmar la linealidad de la prueba y si es necesario realizar las diluciones respectiva
> Verificar la posición de las muestras para evitar falsos resultados.
> Asegurar el mantenimiento del equipo.
DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
EQUIPO NECESARIO
> Centrífuga.
> Fotómetro automatizado o manual con filtro de lectura a 492 nm.
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE GLICEMIA PRE Y POST CURVA
Y TEST DE O’SULLIVAN
Código
PR-LAB-26
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
110
Documento
Controlado
> Pipetas
> Baño de María a 37ºC (opcional)
> Timer o cronómetro.
REACTIVOS NECESARIOS:
> Reactivo de trabajo (color) La estabilidad viene en el empaque. Listo para su uso.
> Patrón o estándar
> Sueros Calibradores
> Controles de calidad (normal y anormal)
PROCEDIMIENTO – LECTURA
FOTÓMETRO MANUAL:
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
Longitud de onda: 546 nm
Cubeta: 1 cm paso de luz
Temperatura: 37ºC o ambiente ( 20 – 25ºC )
Lectura: Contra blanco de reactivo.
Programa: Contra Absorbancia ó factor.
Dejar atemperar el reactivo de color durante unos minutos, a temperatura ambiente.
Marcar los tubos correspondientes a blanco, estándar, control normal, control anormal y el número de
cada muestra.
Pipetear en cada tubo de ensayo: 1 ml del reactivo de color y 10 lamdas del estándar, control normal,
control anormal o muestra.
Agitar bien e incubar los tubos durante 10 minutos a temperatura ambiente o 5 minutos a 37ºC.
Leer el estándar, los controles y las muestras frente al blanco, a 546 nm.
La reacción es estable por lo menos 30 minutos.
NOTA: Seguir siempre las indicaciones de la casa comercial.
CALCULOS:
> El primer día laboral de la semana se monta un estándar con el fin de sacar el factor con el cual se
trabajará. Para ello se prepara la dilución según lo estandarizado por el laboratorio
> Se coloca el selector de programa contra estándar
>
EL filtro es 546nm. Puede variar según técnica.
>
Se lava con agua destilada, se aspira, se echa el blanco, se iguala a cero, luego se absorbe. Leer contra
blanco reactivo.
EXPRESION DE RESULTADOS:
Los resultados se expresan en mg/dl (SUERO O PLASMA)
VALORES DE REFERENCIA.
En suero y plasma (en ayunas), los valores normales están entre 76 – 110mg/dl. Estos valores se dan a título
orientativo; es recomendable que cada laboratorio establezca sus propios intervalos de normalidad.
Las técnicas estandarizadas varían según la casa comercial en uso, a lo cual debe darse prioridad.
LINEALIDAD DEL METODO
La linealidad del método se obtiene hasta 500mg/dl.
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Código
PR-LAB-26
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE GLICEMIA PRE Y POST CURVA
Y TEST DE O’SULLIVAN
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
111
Documento
Controlado
INTERFERENCIA TECNIC
>
Sueros ictéricos, lipémicos y altamente turbios llevan a valores alterados.
>
Los fármacos que alteran la regulación del metabolismo de los carbohidratos como ácido etacrínico,
furosemida, indapamida, epinefrina, acetaminofen, ácido ascórbico, hidralazina, ACTH, tiazidas,
cefalosporinas, corticoesteroides y dextran aumentan la concentración sérica de glucosa.
>
Disminuyen los valores séricos de glucosa medicamentos como los salicilatos, levodopa, sulfonilureas,
tolbutamida, glibenclamida, clorpropamida, metformina, propanolol, fósforo y cloruro de potasio
>
Pueden causar hipoglicemia ejercicio exagerado sin previas precauciones, disminución o retardo en
horarios de comida e ingestión de alcohol.
>
Pueden aumentar la concentración de glucosa en sangre, infecciones, fiebre, estrés emocional,
alimentación excesiva y consumo de dulces y azúcares entre otros.
>
El reactivo puede mostrar un color rosado, sin que ello afecte su linealidad.
FLUJOGRAMA
Blanco
Agregar 1 ml
de reactivo de
color
Estándar
Control
normal
Agregar 1 ml
de reactivo
de color
Agregar 1 ml
de reactivo de
color
Agregar 10
lamdas de
estándar
Agregar 10
lamdas de
control
normal
Control
anormal
Agregar 1 ml
de reactivo
de color
Agregar 1 ml
de reactivo
de color
Agregar 10
lamdas de
control
anormal
Agregar 10
lamdas de
muestra
Mezclar y dejar en reposo 10 minutos a
temperatura ambiente o 5 minutos a 37 °C
Leer frente al
blanco a 546 nm
Reportar en el
registro de
resultados
FIN
Muestra
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PROCEDIMIENTO PARA EL ANALISIS
DE GLICEMIA PRE Y POST CURVA
Y TEST DE O’SULLIVAN
Código
PR-LAB-26
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
112
Documento
Controlado
REGISTROS DE CALIDAD

Registro de diario de pacientes, exámenes solicitados y resultados de los mismos.

Reporte de resultados

Historia clínica
NORMATIVIDAD
Inserto del reactivo en uso
TERMINOS Y DEFINICIONES
DIABETES: Es una enfermedad en la que el cuerpo no puede convertir los alimentos en energía debido a la
falta de insulina (una hormona producida por el páncreas), o por a la incapacidad para utilizar la insulina.
GLUCOSA: Monosacárido presente en la fruta y otros alimentos. Es la fuente principal de energía de los
organismos vivos, en el organismo lo encontramos en la sangre o en forma de glucógeno en el hígado, músculo
estriado, en cosmética se usa en el tratamiento de la deshidratación.
CALIBRACION: Conjunto de operaciones que establecen, en condiciones especificadas, la relación entre los
valores de una magnitud indicados por un instrumento de medida o un sistema de medida, o los valores
representados por una medida materializada o por un material de referencia, y los valores correspondientes de
esa magnitud realizados por patrones.
VALIDEZ: Es la eficacia con que un instrumento realmente mide "la variable" que se desea medir.
HIPOGLICEMIA: Es una concentración de glucosa en la sangre anormalmente baja, inferior a 50-60 mg por
100 mL. Se suele denominar shock insulínico, por la frecuencia con que se presenta en pacientes con diabetes
mellitus en tratamiento con insulina.
ANALITO: Es el componente (elemento, compuesto o ion) de interés analítico de una muestra. Son especies
químicas cuya presencia o concentración se desea conocer.
BIBLIOGRAFIA
rd

Diabetes Atlas, 3 edition. International Diabetes Federation, 2006.
 Diabetes Control and Complications Trial (DCCT) Research Group. The effect of intensive treatment of
diabetes on the development and progression of long-term complications in insulin-dependent diabetes
mellitus. N Engl J Med 1993
 Lustman PJ, Clouse RE. Depression in diabetic patients: the relationship between mood and glycemic
control. J Diabetes Complications 2005
 American Diabetes Association. Postprandial blood glucose (Consensus Statement). Diabetes Care
2001
Código
ESE Departamental Solución
Versión 1
PR-LAB-27
salud
Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
Página
113
Documento
Controlado
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE FROTIS DE
SANGRE PERIFERICA
Código
ESE Departamental Solución
Versión 1
PR-LAB-27
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Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
Página
114
Documento
Controlado
OBJETIVO
Realizar extendidos de sangre periférica de calidad para proveer información para realizar un diagnostico.
ALCANCES
Aplica para los usuarios que solicitan el servicio en el centro de atención
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la Bacterióloga del servicio de laboratorio clínico.
GENERALIDADES
Procedimiento por el que se observa bajo un microscopio una muestra de sangre para contar los distintos tipos
de células sanguíneas que circulan (glóbulos rojos, glóbulos blancos, plaquetas, etc.) y para determinar si el
aspecto de las células es anormal.
El extendido periférico tiene cuatro usos importantes que son:
> Proveer información para el diagnóstico
> proveer datos para la selección de exámenes pertinentes para establecer un diagnóstico.
> Como una guía para la terapia.
> Como indicador de los efectos dañinos de la quimioterapia y radioterapia.
TIPO DE MUESTRA
> Sangre venosa anticoagulada con EDTA
> Sangre capilar
PRINCIPIO DEL TEST
Para la evaluación de un extendido periférico se realiza la coloración de WRIGHT estandarizada.
METODO CORRECTO DE RECOLECCION DE LA MUESTRA
> Sangre total tomada en tubo con anticoagulante (tubo tapa lila)
> Sangre capilar por punción con lanceta.
INDICACIONES DE TRANSPORTE Y ALMACENAMIENTO ADECUADO DE LA MUESTRA
> La coloración debe hacerse dentro de las dos primeras horas de la extracción.
> Cuando se obtiene sangre por punción capilar se descarta la primera gota la segunda se transfiere
directamente al portaobjetos o cubreobjetos según corresponda y se procede a realizar la extensión. Si
la gota de sangre permanece por más de 3 segundos ocurre una agrupación de leucocitos y plaquetas
y la formación de rouleaux de células rojas.
Código
ESE Departamental Solución
Versión 1
PR-LAB-27
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Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
Página
115
Documento
Controlado
CAUSAS DE ERROR.
>
Utilizar una gota de sangre demasiado grande o muy pequeña lleva a la realización de extendidos
gruesos donde las células se superponen entre sí o a extendidos delgados donde las células aparecen muy
separada entre si y deformadas. Si la gota de sangre es pequeña la extensión queda muy corta y, si es grande
se llega al extremo de la lámina sin que la extensión sea terminada.
> El espesor del extendido de la lámina o portaobjetos depende de la velocidad del movimiento de la
lámina difusora y del ángulo del cual se sostenga, un ángulo mayor da lugar a un extendido más grueso.
> La extensión en conjunto no debe cubrir la superficie total del porta o cubreobjetos
> Si las laminas o laminillas presentan grasas la extensión presenta agujeros sin aire
> El portaobjetos difusor debe tener los extremos bien esmerilados de no ser así la extensión presentara
ondulaciones o surcos.
COLORACION DE WRIGTH
Teñir extensiones de sangre periférica con el colorante de Wright para lograr el reconocimiento microscópico de
los eritrocitos, leucocitos y plaquetas y estudiar la morfología normal y las diferentes alteraciones.
Fundamento
El colorante de Wright es un colorante policromático compuesto de eosina composición ácida química y azul de
metileno de composición básica.
Las distintas estructuras celulares se tiñen con el colorante de pH antagónico, es así como ácidos nucleicos
toman el colorante básico y la hemoglobina tiene afinidad con el colorante ácido, otras estructuras se tiñen por
combinación de ambos y se llaman neutrófilas.
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
Página
116
Documento
Controlado
Materiales y equipos
> Extendidos de sangre en lamina o laminilla
>
Colorante de Wright
>
Tampón de fosfatos (pH 6,4)
>
Soporte de láminas para la Tinción
>
Agua corriente
>
Cronómetro
>
Papel de filtro
Control de calidad
Una Tinción de Wright bien preparada y cronometrada funciona correctamente si la extensión se ha hecho de
forma adecuada la calidad de la Tinción no puede juzgarse cuando la extensión es gruesa.
El criterio más fiable sobre la calidad de la Tinción y su procedimiento es la forma de cómo se tiñen los
monocitos. Se puede comprobar la Tinción con una extensión fina preparada con sangre de lactante
habitualmente rica en monocitos. El núcleo debe tener una estructura Vesicular fina y en el citoplasma de color
azul grisáceo deben verse los característicos gránulos rosados muy finos si los gránulos monocitarios
aparecen gruesos y de color púrpura hay que pensar en una falla de la Tinción.
Observaciones.
Una Tinción satisfactoria debe dar los siguientes resultados:
>
Glóbulos rojos: de rosado a naranja.
>
Neutrófilos: cromatina púrpura oscura citoplasma rosa pálido gránulos lila.
> Eosinófilos: cromatina púrpura oscura citoplasma azul pálido gránulos naranja brillante.
> Basófilos: cromatina púrpura oscura gránulos azul oscuro
> Linfocitos: cromatina púrpura oscura citoplasma azul cielo
> Monocitos: cromatina púrpura media citoplasma azul grisáceo gránulos lila
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
Página
117
Documento
Controlado
>
Monocitos: cromatina púrpura media citoplasma azul grisáceo gránulos lila
>
Plaquetas: glanulómero de violeta a púrpura hialómero azul claro
>
Si antes de terminar un lote de colorante la calidad de la coloración se altera estandarice de nuevo.
DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
FROTIS DE SANGRE PERIFERICO
> Utilice dos portaobjetos bien limpios.
> Transfiera una pequeña gota de sangre de 2 a 3 mm de diámetro a uno de los portaobjetos
aprox. a 1 cm de uno de los extremos
> Coloque la lámina con la gota de sangre hacia la derecha y sosténgala con la mano
izquierda en posición horizontal con la ayuda de los dedos índice y pulgar en extremos
opuestos.
> Una segunda lamina o portaobjetos difusor se sostiene con el dedo pulgar en el borde de uno de los lados y
los otros cuatro dedos en el otro. Coloque el extremo de esta lámina difusora al frente de la gota de sangre
que esta sobre el primer porta objetos de manera que se forme un ángulo de 30 a 40 grados en las dos
láminas.
> Desplace hacia atrás el portaobjetos difusor sobre la gota de sangre que por capilaridad debe esparcirse en
las 2 terceras partes de su anchura
> Empuje la lamina extensora rápida y suavemente sobre la longitud de la lamina que esta horizontal, como lo
explica la figura 1.3 extienda solo las dos terceras partes del largo de lamina.
Ø
La única presión aplicada debe ser el peso del portaobjetos
Ø
Deje secar el frotis al aire no soplando sobre él.
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
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Documento
Controlado
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
>
Página
119
Documento
Controlado
En una extensión sanguínea en la lamina, correctamente deben estar diferenciadas tres zonas
cabeza, cuerpo y cola.
>
La cabeza es la zona más gruesa del extendido donde debe iniciarse el frotis sanguíneo, el cuerpo
ocupa la mayor parte de la extensión es de espesor uniforme y es la zona ideal para el estudio sanguíneo
allí los glóbulos rojos deben estar ligeramente superpuestos y con la depresión central claramente definida.
La cola es la parte final de la extensión con una terminación irregular. Es el área delgada.
>
>
>
>
>
Realizar coloración de WRIGHT
Dejar secar a temperatura ambiente.
Una vez la lámina esté lista se le agrega una gota de aceite de inmersión.
Se enfoca en 100 en donde los glóbulos rojos se toquen ligeramente entre sí.
Se observan parámetros en cada línea celular, de acuerdo, al número encontrado por campo de cada
una.
COLORACION DE WRIGHT
Es variable y debe estandarizarse para cada lote de reactivo nuevo.
Un modelo es el Siguiente:
>
En los soportes de coloración coloque los extendidos en un plano
>
horizontal con extensión de sangre hacia arriba.
>
Cubra toda la superficie de los extendidos con Wright. El tiempo
>
óptimo de acción del colorante se determina por ensayo y error para
>
cada lote de colorante.(ver inserto)
>
Agregue la cantidad necesaria de agua o tampón para cubrir la
lámina o laminilla hasta formar un cojín,
estandarice el número de gotas de tampón o agua necesarias para lograrlo.
>
Sople suavemente el extendido para mezclar hasta obtener una película uniforme de apariencia metálica
verdosa, estandarice el tiempo necesario para lograr una coloración optima
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
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120
Documento
Controlado
>
Remueva el colorante con agua corriente manteniendo los extendidos en posición horizontal
>
El lavado debe ser rápido de 5 a 6 segundos para evitar la precipitación del colorante sobre la superficie del
extendido.
>
Deje secar al aire libre
>
Quite con una gasa humedecida en alcohol el colorante que queda adherido al dorso de la laminilla
teniendo en cuenta que el alcohol no tenga contacto con la superficie coloreada
>
Los extendidos en laminilla se pueden montar para uso temporal colocándolos con la película de sangre
hacia abajo y sobre una lámina en la que se ha depositado una gota de aceite de inmersión.
EXPRESIÓN DE RESULTADOS
GLÓBULOS BLANCOS: Se informa la cantidad, si están: disminuidos, aumentados, ligeramente disminuidos,
ligeramente aumentados o normales.
Se anota el diferencial y las anormalidades que presenten las células.
GLÓBULOS ROJOS
> HIPOCROMÍA: Cuando la palidez central de los eritrocitos es mayor que 1/3 del diámetro de la célula.
Contar las células hipocrómicas en 10 campos microscópicos y divida el total de esos campos por 10para
establecer el promedio.
>
Normocromía : 0 – 5
>
Ligera Hipocromía : 6 – 15 ( + )
>
Moderada Hipocromía : 16 – 30 ( ++ )
>
Severa Hipocromía : mayor de 30 ( +++ )
>
ANISOCITOSIS: Alteraciones en el tamaño
Normocito: 6 – 8 u
Macrocito: mayor de 9 u
Microcito: 3 – 5 u
Contar cada tipo de eritrocitos en 10 campos microscópicos:
>
Normal : 0 – 5
>
Ligera anisocitosis : 6 – 15 ( + )
>
Moderada anisocitosis : 15 – 30 ( ++ )
>
Severa anisocitosis : mayor de 30 ( +++ )
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
>
POIQUILOCITOSIS: Alteraciones en la forma.
Reportar la poiquilocitosis como ligera, moderada o marcada, se cuenta el número de cada célula roja
anormal en 10 campos microscópicos. Dividir el número total por 10 para sacar el promedio y comparar
con la siguiente tabla:
FORMA
NORMAL
ESFEROCITO
ACANTOCITOS
DREPANOCITOS
ROULEAUX
FORMAS EN SOBRE
DACRIOCITOS
FORMAS BIZARRAS
RABUDAS
CODOCITOS
ESQUISTOCITOS
OVALOCITOS
ELIPTOCITOS
QUERATOCITOS
ESTOMATOCITOS
CÉL. VESICULADAS
>
Página
121
Documento
Controlado
LIGERA (+) MODERADA (++)
SEVERA (+++)
0-1
0-1
0-1
0-1
0-1
2-5
2-5
2-5
2-5
2-5
6-15
6-15
6-15
6-15
6-15
más
más
más
más
más
de
de
de
de
de
15
15
15
15
15
0-1
0-1
0-1
0-1
0-1
0-1
0-1
0-1
0-1
2-5
2-5
2-5
2-5
2-5
2-5
2-5
2-5
2-5
6-15
6-15
6-15
6-15
6-15
6-15
6-15
6-15
6-15
más
más
más
más
más
más
más
más
más
de
de
de
de
de
de
de
de
de
15
15
15
15
15
15
15
15
15
0-1
2-5
6-15
más de 15
POLICROMATOFILIA: Inmadurez de los glóbulos rojos
Contar los eritrocitos policromatofílicos (gris-azulosos) en 10 campos microscópicos, divida el total de estos
campos por 10 para establecer el promedio:
>
>
>
>
>
Normal : 0 – 15
Ligera : 1.6 – 2.5 ( + )
Moderada : 2.6 – 3.5 ( ++ )
Severa : Más de 3.6 ( +++ )
PLAQUETAS: Se informa el número de plaquetas, se observa si presentan alguna alteración en su tamaño
y si hay agregación plaquetaria.
Cuente el número de plaquetas en cada uno de 10 campos microscópicos en diferentes áreas, divida el
número total entre 10 para establecer el promedio y multiplique el resultado por 21.000 para obtener el
recuento estimativo de plaquetas x mm3.
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Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
Página
122
Documento
Controlado
INTERFERENCIAS



Si el colorantes no ha sido filtrado o los soportes de coloración no están en posición horizontal el
colorante se derrama y se forman precipitados que interfieren en la visualización de la morfología de las
células.
Cuando el frotis se realiza con sangre anticoagulada con EDTA , es muy importante no esperar más de 2
horas después de la extracción ya que pueden aparecer alteraciones morfológicas de las células
sanguíneas.
Por suciedad, deterioro o presencia de grasa en el portaobjetos pueden aparecer artefactos.
FLUJOGRAMA
INICIO
Mezclar la
muestra del
cuadro Hemático
En una lamina colocar
una gota de sangre y con
una segunda lamina
realizar el extendido con
cabeza, cuerpo y cola
Dejar secar a temperatura
ambiente
Realizar la coloración de
WRIGHT y secar a
temperatura ambiente
Agregar una gota de aceite
de inmersión y observar en
100 X
Reportar en
el registro de
resultados
FIN
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Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
Página
123
Documento
Controlado
REGISTROS DE CALIDAD

Registro de diario de pacientes, exámenes solicitados y resultados de los mismos.

Reporte de resultados

Historia clínica
NORMATIVIDAD
Manual del laboratorio clínico y banco de sangre de la fundación Santa Fe.
TERMINOS Y DEFINICIONES
PORTAOBJETO: Es una lámina rectangular de vidrio muy delgada, donde se colocan objetos de mínimo
tamaño o preparaciones de baja escala, las cuales van a ser observadas en el microscopio.
CAPILARIDAD: Es una propiedad de los líquidos que depende de su tensión superficial (la cual a su vez,
depende de la cohesión o fuerza intermolecular del líquido), que le confiere la capacidad de subir o bajar por un
tubo capilar.
ACEITE DE INMERSION: El aceite tiene un índice de refracción similar al del vidrio (1,5 aprox.) y se utiliza para
el objetivo de 100X. Se usa generalmente aceite de cedro. No se podrá usar el objetivo de 100X en seco, a
diferencia del de 40X, 10X y menores.
GLOBULOS BLANCOS: (también llamados leucocitos) son un conjunto heterogéneo de células sanguíneas
que son los efectores celulares de la respuesta inmune, así intervienen en la defensa del organismo contra
sustancias extrañas o agentes infecciosos.
GLOBULOS ROJOS: Los eritrocitos, glóbulos rojos o hematíes, son los elementos formes cuantitativamente
más numerosos de la sangre. La hemoglobina es uno de sus principales componentes y su objetivo es
transportar el oxígeno hacia los diferentes tejidos del cuerpo.
PLAQUETA: Pequeña porción de una célula que se encuentra en la sangre y que se desprende de una célula
grande que se encuentra en la médula ósea. Las plaquetas ayudan a la cicatrización y a prevenir hemorragias
porque forman coágulos de sangre. También se llama trombocito.
BIBLIOGRAFIA

David C. Dugdale, III, MD, Professor of Medicine, Division of General Medicine, Department of
Medicine, University of Washington School of Medicine. Also reviewed by David Zieve, MD, MHA, Medical
Director, A.D.A.M., Inc. /2009
 Newland J. The peripheral blood smear. In: Goldman L, Ausiello D, eds. Cecil Medicine. 23rd ed.
Philadelphia, Pa: Saunders Elsevier; 2007:chap 161.
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
27/03/2011
DE KOH- HONGOS
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE
KOH- HONGOS
Página
124
Documento
Controlado
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PR-LAB-28
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Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
27/03/2011
DE KOH- HONGOS
Página
125
Documento
Controlado
OBJETIVO
Observar en una lesión cutánea la presencia de hongos en sus diferentes estructuras, por medio del hidróxido
de potasio o K.O.H.
ALCANCES
Aplica para los usuarios que solicitan el servicio en el centro de atención
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la Bacterióloga del servicio de laboratorio clínico.
GENERALIDADES
Los hongos son seres vivos que no pertenecen ni al reino vegetal, ni al reino animal. Tienen características
i n t e r m e d i a s , p o r l o q u e s o n e x c l u i d o s d e a m b o s g r u p o s .
ESTRUCTURA
> Conserva las características de las células eucariotas.
> Pared celular rígida formada por polisacáridos, polipéptidos y quitina
> Principal esterol de la membrana plasmática: ergosterol
Estos organismos pueden reproducirse de manera asexuada, mediante la propagación por esporas, y de
manera sexual, por la conjugación de hifas masculinas y femeninas, que pueden incluso formar parte de un
mismo organismo. Una vez que la espora alcanza un terreno fértil, el hongo comienza a proliferar y a formar
unos filamentos llamados hifas. El conjunto de hifas conforma lo que se conoce como micelio.
MORFOLOGIA
>
>
>
>
>
Estructura morfológica básica Hifa
Hifa = filamento = talo
Micelios entrecruzamiento de hifas
Levaduras
Mohos
Pseudohifas
Código
ESE Departamental Solución
Versión 1
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Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
27/03/2011
DE KOH- HONGOS
Página
126
Documento
Controlado
Se desarrollan formando estructuras filamentosas llamadas hifas que en su extremidad distal presentan un
saco contenedor de esporas (zoosporas), el zoosporangio. El conjunto de hifas se llama micelio. Esta
estructuración parece compleja a la hora de redactarla, pero se simplifica mucho si la relacionamos con el
crecimiento de una planta; así podríamos hacernos la idea de que las hifas son las ramas, y que en la
punta de las ramas están las flores y los frutos, que serían el zoosporangio, conteniendo las semillas, que
en el caso de los hongos serían las esporas. El conjunto de ramas del árbol constituye la “copa”, así como
el conjunto de hifas constituye el “micelio”
Cabe mencionar que no todos los hongos son iguales, y de hecho, si bien la forma de desarrollo es similar
en la mayoría, la forma del zoosporangio y de las hifas permite muchas veces diferenciar entre una cepa y
otra. Por lo tanto, el esquema de la figura 1 es representativo para comprender el modo de desarrollo de
estos organismos.
Con respecto al tamaño, este grupo está compuesto por organismos uni y pluricelulares, por lo que
encontraremos desde hongos microscópicos hasta hongos macroscópicos de varios metros.
Como dijimos anteriormente, estos organismos no pueden sintetizar sus alimentos, y deben tomarlo del
exterior (heterótrofos). De acuerdo con este aspecto, la forma de vida de los hongos puede ser:
> Parasítica: se nutren de compuestos de otros organismos vivos a los que perjudican.
> Simbiótica: forman una asociación con organismos vivos y ambos sacan beneficio de la unión (líquenes y
micorrizas).
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PR-LAB-28
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Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
27/03/2011
DE KOH- HONGOS
Página
127
Documento
Controlado
Saprofita: se alimentan de material orgánico en descomposición. Los que pueden afectar a nuestros peces son
los hongos parásitos y los saprofitos, los primeros causando infección directa (raro) y los segundos,
beneficiándose de otros procesos patológicos y/o lesiones en los huéspedes que producen materia orgánica
en exceso (más frecuente).
FUENTES DE INFECCION
> Ambiente externo (estado saprófito, micelial)
> Coloniza en forma de esperas o conidias
> Transmisión humano-humano
> Dermatofitosis antropofílicas, por uso común de toallas, peines, sábanas, calzado,
instrumentos de pedicura.
>
>
>
>
Transmisión animal-humano
Especies zoofílicas
Endógena
Saprófitos que se tornan patógenos por una baja en el sistema Inmune (ej. DM, VIH,
antibioticoterápia de uno crónico)
VIAS DE ENTRADA
> Traumática
> Heridas con metales
> Heridas con fragmentos vegetales
> Mordeduras de animales
> Caídas
> Inhalatoria
> Foco primario pulmonar
> Depende de la cantidad de esporas/conidias inhaladas y su virulencia
>
>
>
>
Otras
Deglución
Inoculación accidental
Venoclisis, sondas, catéteres
DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
EXAMEN DIRECTO PARA HONGOS K.O.H
TIPO DE ESPECIMEN
Raspado de la lesión ya sea cutánea, uñas, cabellos y se coloca en contacto con el K.O.H para que este ayude
a evidenciar las estructuras micóticas.
RECOLECCION DE MUESTRAS PARA ESTUDIO DE HONGOS
>
ESCAMAS
>
Interrogar al paciente sobre uso de talcos o cremas que interfieren con examen.
>
Abstenerse de tratamiento antimicótico 10 días previos al estudio.
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PR-LAB-28
salud
Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
27/03/2011
DE KOH- HONGOS
> Limpiar el área de toma con gasa humedecida en agua destilada estéril o alcohol (no debe
utilizar algodón en la limpieza del área afectada).
> Raspar cuidadosamente con cuchilla estéril de bisturí los bordes de la lesión.
> Colocar las escamas desprendidas sobre un portaobjetos de vidrio o dentro de una caja de
petri.
> Si existen vesículas deben romperse con la punta de la cuchilla o de una lanceta estéril y su
contenido ser depositado en los recipientes indicados.
> Puede colocarse también cinta pegante transparente sobre la lesión y después de haber
presionado la lesión con la misma, retirarla y posteriormente pegar la cinta en el
portaobjetos.
> Procurar tomar muestra suficiente para examen directo y cultivo.
> Procesar antes de dos horas.
> UÑAS
> Remover esmaltes de uña, tres días antes del estudio.
> Abstenerse de tratamiento antimicótico local 15 días previos al estudio.
> Limpiar área de toma con gasa estéril humedecida no con algodón.
> Raspar con cuchilla estéril de bisturí la zona de la placa ungueal afectado, de extremo distal
a proximal.
> Si la lesión se encuentra en la región distal de la uña, cortar con tijeras o cortaúñas estériles
la porción afectada.
> Procurar tomar muestra suficiente para examen directo y cultivos.
> Procesar antes de dos horas.
Página
128
Documento
Controlado
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Versión 1
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salud
Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
27/03/2011
DE KOH- HONGOS
Página
129
Documento
Controlado
CABELLOS
> Elegir con lupa los cabellos afectados (opacos, descoloridos, con nódulos, quebradizos,
etc.), cortar con tijeras los cabellos elegidos y depositarlos en caja de petri estéril, si se aprecia
descamación de cuero cabelludo recolectar escamas del mismo; deben recolectarse mínimo 5
cabellos, procesar las muestras antes de dos horas.
PREPARACION Y ESTABILIDAD DE LOS REACTIVOS
El hidróxido de potasio está listo para su uso, y se puede utilizar hasta la fecha de vencimiento según el
fabricante. Se debe almacenar a temperatura ambiente (25 C).
METODOLOGIA
El frotis de KOH muestra levaduras, hifas o micelios puede indicar la presencia de por ejemplo una tiña, pie de
atleta tiña inguinal o muchas otras infecciones micóticas.
VALORES DE REFERENCIA
Negativo, no debe haber ninguna estructura micótica.
EXPRESION DE LOS RESULTADOS
La presencia de estructuras micóticas en la piel del paciente es un diagnostico de enfermedad micótica la cual
debe ser tratada inmediatamente.
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Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
27/03/2011
DE KOH- HONGOS
FLUJOGRAMA
INICIO
Raspado
de la lesión
Poner en contacto
con el KOH
Observar la presencia o
ausencia de estructuras
Reportar en
el registro de
resultados
FIN
Página
130
Documento
Controlado
Código
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Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
27/03/2011
DE KOH- HONGOS
Página
131
Documento
Controlado
REGISTROS DE CALIDAD
 Registro de diario de pacientes, exámenes solicitados y resultados de los mismos.

Reporte de resultados

Historia clínica
NORMATIVIDAD
Inserto del reactivo en uso
TERMINOS Y DEFINICIONES
MICOSIS: Infección ocasionada por hongos que se caracteriza por causar enrojecimiento, manchas, comezón,
descamación, irritación y agrietamiento de la piel. Es importante aclarar que sufrir este tipo de afección no
necesariamente es sinónimo de falta de higiene, ya que la humedad propia del clima caluroso, vestir traje de
baño mojado por periodos prolongados y ropa ajustada, así como seguir tratamiento con antibióticos, usar
zapatos cerrados y sintéticos, y no calzar sandalias cuando se acude a baños en hoteles o gimnasios, son
determinantes en el desarrollo de dichos microorganismos.
HIFA: Unidad vegetativa estructural en los hongos. Es un filamento tubular, con pared celular que contiene
citoplasma y organoides, pudiendo presentar tabiques o no. Su complemento cromosómico es variable.
MICELIO: Parte vegetativa del hongo. Está subterráneo y es el autentico hongo. Su función es absorber del
suelo los distintos compuestos orgánicos necesarios para alimentarse. Está formado por un conjunto de
filamentos blancos, hifas y septos. El micelio va creciendo en forma circular y va produciendo setas para su
reproducción mediante esporas
VESICULAS: Ampollas llenas de liquido
BIBLIOGRAFIA


Diagnostico Clinico por el Laboratorio Todd Sanford 2002
Blood-Radostits. 1992. Medicina Veterinaria. 7º edición. Editorial Interamericana. México
DF.
 Crump. 1973. Slafranine Toxicosis (Slobber factor). Journal of the Americ Veterinary
Medicine. Col. 163. Nº 1.
 CA Armstrong. El examen de la piel y el enfoque para el diagnóstico de enfermedades de la
piel. En:, L Ausiello D, eds. Goldman Medicina Cecil. 23a ed. Philadelphia, Pa: Saunders
Elsevier; 2007: cap 462.
 RP Rapini. Clínica y diagnóstico diferencial patológico. En: JL Jorizzo, JL Rapini, RP eds
Bolognia. Dermatología. 2 ª ed.Philadelphia, Pa: Mosby Elsevier; 2008: vol 1.
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Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS FLUJO VAGINAL
Página
132
Documento
Controlado
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
DE FROTIS
FLUJO VAGINAL
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Fecha Vigencia
PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS FLUJO VAGINAL
Página
133
Documento
Controlado
OBJETIVO
Realizar la prueba de frotis de flujo vaginal, para la determinación de vaginitis y vaginosis a usuarios del centro
de atención.
ALCANCES
Aplica para los usuarios que solicitan el servicio en el centro de atención.
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la Bacterióloga del servicio de laboratorio clínico.
GENERALIDADES
La leucorrea es una de las causas más frecuentes por los que una mujer acude a consulta de medicina general
y de ginecología. Es el síntoma más frecuente en pacientes ginecológicas (30%). Raramente es grave y
usualmente es por infecciones vaginales o cervicales. Toda mujer en edad fértil tiene una secreción vaginal que
lubrica y protege las paredes vaginales, esta secreción tiene las siguientes características:
pH:
3,8 a 4,2
Color:
Blanco
Consistencia: Filante
Olor:
Ausente
Bacterias:
Lactobacilos
Citología:
Células epiteliales
DEFINICIÓN
El término leucorrea viene del griego "leucos, blanco y rrea, fluir o fluido": flujo blanquecino de las vías genitales
femeninas y se refiere en general a cualquier flujo vaginal que no sea hemático
La leucorrea, más que un síntoma es un síndrome porque el escurrimiento vaginal por sí solo ofrece
características determinables clínicamente y es un medio de estudio físico, microscópico y bacteriológico.
Estos hechos conducen a una conclusión: en toda leucorrea deben estudiarse todos esos aspectos para definir
su naturaleza y determinar la conducta terapéutica a seguir.
CLASIFICACIÓN
Se debe recordar que el origen puede ser infeccioso o no. Más de la mitad de los casos son de origen
infeccioso, en los que la transmisión sexual ocupa un papel importante. Los demás casos se deben a otros
procesos como reacciones alérgicas, traumatismos, problemas hormonales, etc. En ocasiones estas causas
pueden estar solapadas, el diagnóstico es más difícil y el proceso puede cronificarse.
Dentro de las causas infecciosas encontramos tricomonas, la candidiasis, la vaginosis bacteriana y las
causadas por otros microorganismos tales como el gonococo, el herpes y la clamidia.
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Las que no son infecciosas están favorecidas por el aumento del pH vaginal y entre sus principales causas se
encuentran las reacciones alérgicas, los traumatismos, factores térmicos, hormonales, neoplasias e
iatrogenia.
Hay que recordar que "no hay vaginitis puras", y habitualmente están comprometidos el cérvix y los genitales
externos.
Vaginosis Bacteriana
Candidiasis
Trichomoniasis
Herpes genital
Cuerpo extraño
Atrofia
Inespecífica
FACTORES DE RIESGO
Existen factores que predisponen a infección vulvovaginal o irritación incluyendo:
>
>
>
>
>
>
>
>
Actividad sexual
Infección local o sistémica reciente
Uso de antibióticos
Historia de diabetes
Infecciones vulvovaginales previas
Practicas de higiene vaginal ( duchas)
Métodos anticonceptivos
Historia menstrual
DIAGNOSTICO
Historia clínica
Es un paso muy importante en la evaluación de las causas potenciales para evaluar la leucorrea. Se debe tener
en cuenta los síntomas tales como ardor, prurito y olor, y las características del flujo consistencia, viscosidad y
color.
 Examen físico
Genitales externos: detectar lesiones, edema de los labios, ulceraciones, y condilomas.
Región inguinal: presencia o ausencia de adenopatías.
 Especuloscopia
Características del flujo: consistencia, viscosidad, color y olor
Evidencia de trauma, anormalidades congénitas o características de las lesiones
Presencia o ausencia de anormalidades cervicales

Frotis de flujo vaginal
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
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FROTIS FLUJO VAGINAL
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ETIOLOGIA, CUADRO CLINICO Y MANEJO
Vaginitis por Tricomonas
Causadas por Trichomona vaginalis, un protozoo que se contagia fundamentalmente por transmisión sexual.
Es habitualmente asintomática en el varón y supone el 20% de todas las vulvovaginitis.
Clínica:
Aunque puede ser asintomática, suele haber flujo abundante, espumoso, maloliente y amarillo-verdoso, que
cursa con prurito vulvovaginal, dispareunia y disuria. Estos síntomas se acrecientan con la menstruación. Es
característico el “cérvix de fresa” y el eritema vaginal.
Diagnóstico:
Una toma de fondo de saco vaginal y cuello (y/o uretra del hombre y mujer) diluida en suero fisiológico sobre un
porta permite la visualización de tricomonas (en movimiento cuando tiene flagelo, o inmóvil en no flagelado) y
de leucocitos en un 50% de los casos. Cuando no se pueden visualizar tricomonas y existe una sospecha
clínica clara puede recurrirse al cultivo, que se realiza en medio específico de Diamond. El pH es mayor de 4,5.
Tratamiento:
Metronidazol 2 gramos por vía oral dosis única
Metronidazol 500 mg cada 12 horas durante 7 días
Tinidazol 2 gr. en dosis única por vía oral
Debe recomendarse tratamiento de la pareja además de abstención de relaciones sexuales mientras dure
éste.
En caso de recidiva debemos comprobar el correcto tratamiento de la pareja sexual y recomendar una nueva
pauta con 2 gr. Metronidazol y si persiste pautar una de mayor duración: 2 gramos por vía oral durante 3-5 días
Vaginitis por Cándidas
Aproximadamente el 25% de las vulvovaginitis son Candidiasis, producidas por distintas especies del género
cándida: Albicans (80-90%), Glabatra y Tropicalis. Clínicamente indistinguibles, las 2 últimas más resistentes al
tratamiento.
Entre los factores predisponentes destacan: uso reciente de antibióticos de amplio espectro, diabetes mal
controlada y VIH. Son menos reconocidos o más discutibles: toma de anticonceptivos orales, embarazo, uso
de corticoides y contaminación sexual.
Clínica:
Prurito intenso, leucorrea blanquecina grumosa con aspecto caseoso, además de disuria y dispareunia. Se
intensifica la semana previa a la menstruación y disminuye con el inicio del sangrado.
Eritema y tumefacción de la vulva. Es muy frecuente la asociación de candidiasis con otras infecciones. En
estos casos los síntomas son menos específicos. En el varón produce balanitis.
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Diagnóstico:
El examen directo se puede realizar con suero salino, visualizándose esporas, o con KOH al 10%, que digiere
las células epiteliales, dejando sólo las esporas y micelIos. El pH es ácido <4,5. No es necesario hacer cultivo
de forma rutinaria, aunque es útil en casos recurrentes o dudosos.
Tratamiento:
Clotrimazol: Óvulos de 500 mg dosis única o 100 mg por 7 días
Crema al 1% 5 g/d por 7 días
Miconazol:
Crema al 2%: 5 g/d por 7 días
Óvulos de 100 mg: 1 ovulo por 7 noches
Itraconazol: Cápsulas 100 mg: 200 mg/d por 3 días
Isoconazol: Crema vaginal por 40 g
Aproximadamente el 15% de las cepas de C. albicans son resistentes a los imidazoles. Los triazoles orales se
deben reservar a los casos de fracaso del tratamiento vaginal o cuando no es posible utilizar esa vía:
Ketoconazol: 400 mg/día por 7 a 14 días
Fluconazol: 150 mg vía oral dosis única
Vaginosis Bacteriana
Es una alteración en el ecosistema bacteriano de la vagina, con sobrecrecimiento de la Gandnerella vaginalis,
junto con bacterias anaerobias y disminución de lactobacilos.
Clínica:
La mayoría de las pacientes son asintomáticas, y se diagnostican en una exploración o citología de rutina. El
síntoma fundamental es leucorrea blanco-grisácea, adherente, maloliente, con un característico “olor a
pescado”. Al no producir inflamación tisular, las pacientes no refieren prurito, dispareunia ni disuria. La
vaginosis bacteriana se asocia a parto prematuro y aumento de infecciones tras una maniobra invasiva
(inserción de DIU o histeroscopia, por ejemplo).
Diagnóstico:
Se han de cumplir 3 de los 4 criterios diagnósticos:
>
>
>
>
Secreción homogénea aumentada en volumen de aspecto blanco-grisácea y adherente.
PH >4,5
Olor a aminas antes o después de instilarle KOH
Células clave (células del epitelio vaginal que aparecen recubiertas de bacterias, lo que les da un
aspecto granular, como rebozadas). Deben existir al menos un 20% de células clave en el frotis. Los
lactobacilus son escasos o están ausentes.
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Tratamiento:
Metronidazol oral: 500 mg cada 12 horas durante 7 días
2 gr. dosis única
Metronidazol óvulos 500 mg por 7 noches
Clindamicina oral: 300 mg cada 12 horas por 7 días
Clindamicina tópica: óvulos 100 mg durante 3 noches o en crema durante 7 noches
Cervicitis por Neisseria gonorroheae
Causada por la Neisseria gonorroheae bacteria aerobia, extracelular, en forma de diplococo gram negativo. Se
caracteriza por la inflamación y secreción de la mucosa endocervical.
Clínica:
La paciente consulta por leucorrea amarillo verdosa de mal olor. Puede presentar polaquiuria y disuria o
síntomas de irritación rectal. La infección puede presentarse en forma asintomática. Además puede ascender
al tracto reproductor femenino produciendo enfermedad pélvica inflamatoria presentando dolor y fiebre.
Diagnóstico
A la especuloscopia se observa cérvix inflamado con salida de secreción muco-purulenta amarilla o verdosa
Laboratorio: al examinar la secreción endocervical con tinción de Gram encontramos abundantes PMN (más
de 5 por campo) y diplococos Gram negativos extracelulares e intracelulares (fagocitados por macrófagos). El
cultivo se realiza en agar chocolate o Tayer-Martin.
Tratamiento
Cefxime 400 mg vía oral dosis única
Ceftriaxone 125 mg IM dosis única
Ciprofloxacina 500 mg dosis única
Ofloxacina 400 mg vía oral dosis única
Levofloxacina 250 mg vía oral dosis única
Espectinomicina 2 g IM dosis única
Se debe adicionar tratamiento para la chlamidia.
Azitromicina 1 g vía oral dosis única
Doxiciclina 100 mg vía oral cada 12 horas por 14 días
Eritromicina base 500 mg cuatro veces al día por 7 días
COMPLICACIONES
o
o
o
Enfermedad pélvica inflamatoria
Dolor pélvico crónico
Infertilidad
DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
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Toma de muestra
Para el diagnóstico de las vaginosis y vaginitis bacterianas, el estudio debe iniciarse con una correcta toma de
muestra, para esto debe colocarse el espéculo sin lubricantes y tomar la muestra con escobillón estéril de las
paredes de la vagina. Se recomienda tomar por lo menos, dos escobillones, uno para el extendido y otro para el
examen en fresco, el cual se coloca en 1ml de solución salina estéril.
Examen directo
>
>
>
>
>
>
>
Medir el ph
Preparar tres portaobjetos para el examen directo.
Colocar 1 gota de la suspensión del flujo en la solución salina, en cada uno de los portaobjetos.
En el primero se coloca un cubreobjetos y se observa al microscopio {10X y 40X}.
En el segundo adicionar una gota de KOH y colocar un cubreobjeto. Observar al microscopio {10X y
40X}.
Con el tercer portaobjetos realizar u extendido para colorear con Gram.
Observar al microscopio {10X, 40X y 100X}e informar.
Prueba de aminas
La secreción vaginal de las mujeres con vaginosis bacteriana posee diferentes aminas: putrecina, cadaverina,
metilamina, isobutilamina, histamina y fenetilamina. Estas aminas son el resultado de la decarboxilación de los
aminoácidos, realizada por las bacterias anaeróbicas y aeróbicas que se han incrementado y ocasionan un
olor característico en la secreción vaginal; este olor se puede intensificar por la alcalinización de la secreción
con KOH a una concentración del 10% al 20%.
Para realizar la prueba de las aminas, se coloca una gota de la secreción vaginal en un portaobjeto y se
adiciona una gota de KOH, inmediatamente se intensifica el olor a “pescado”.
Células guía
Se definen como células epiteliales vaginales con apariencia irregular y de borde indefinido, debido a que G.
vaginalis se adhiere a la superficie de la célula y enmascara su contorno.
Cuando las células guía, representan del 10% al 20% de las células epiteliales vaginales, se considera un
criterio diagnóstico para la vaginosis bacteriana.
Las células pueden dañarse o destruirse al realizar el extendido de la secreción vaginal para colorear con
Gram, por eso, es adecuado identificarlas en el examen en fresco.
Coloración de Gram.
Con uno de los escobillones con la muestra, realice un extendido, teniendo en cuenta de hacerlo con
movimientos circulares, empezando del centro hacia la periferia y sin hacer presión para evitar la destrucción
de las células.
Dejar secar al aire, fijar con calor y colorear con Gram
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Coloración de Gram
Fundamento:
Según la reacción al Gram las bacterias se dividen en Gram positivas, se tiñen de color violeta, y en Gram
negativas se tiñen de color rojo. La división de las bacterias en Gram positivas y en Gram negativas está dada
por las diferencias físicas y químicas en la composición de la pared celular.
La pared celular de las bacterias Gram positivas, está compuesta en un 50%-60% por peptidoglicano y en un
40%-50% por ácidos teicoicos y polisacáridos. En las bacterias Gram positivas el cristal violeta se fija a la pared
celular y con la adición del lugol, se produce el complejo cristal violeta-yodo el cual es resistente a la
decoloración.
La pared celular de las bacterias Gram negativas está compuesta por una delgada capa de peptidoglicano que
constituye del 5%-10% del peso de la pared celular, recubriendo esta capa se encuentra una membrana
externa compleja, constituida por: fosfolípidos, lipopolisacáridos y proteínas. El decolorante en las bacterias
Gram negativas actúa como un solvente de los lípidos presentes, los poros de la pared se aumentan de tamaño
y el complejo cristal violeta-yodo se libera, tomando la bacteria el colorante secundario o de contraste
{safranina}.
Es importante estandarizar los métodos de coloración para obtener resultados constantes y fidedignos, para
esto es necesario valorar los resultados con microorganismos control, en los que se conozca la reacción del
Gram.
La coloración de Gram es una prueba crítica, para el diagnóstico presuntivo y rápido de agentes infecciosos,
también sirve para valorar la calidad de la muestra clínica.
Reactivos
>
>
>
>
Cristal violeta
Lugol
Acetona
Safranina o fucsina
Procedimiento
>
>
>
>
>
>
>
>
>
Fijar la preparación con calor
Cubrirla con cristal violeta por 1 minuto
Lavar con agua
Cubrir la preparación con lugol por 1 minuto
Lavar con agua
Cubrir la preparación con el alcohol etílico por 30 segundos
Lavar con agua
Cubrir con fucsina por 1 o 2 minutos.
Lavar con agua y dejar secar
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
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Fallas en la coloración
Cuando las preparaciones coloreadas son de difícil interpretación, por ejemplo: organismos Gram positivos
débilmente coloreados, retención del cristal violeta por los organismos Gram negativos o preparaciones que se
colorean solamente en los bordes, puede deberse a diferentes causas:
>
>
>
>
Uso de láminas portaobjetos sucias
Extendidos muy gruesos
Sobrecalentamiento al fijar con calor
Excesivo lavado durante la coloración
FLUJOGRAMA
INICIO
Flujo
vaginal
Examen en fresco
Prueba de aminas, y
células guía
Coloración de Gram
Reportar en
el registro de
resultados
FIN
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS DE
27/03/2011
FROTIS FLUJO VAGINAL
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REGISTROS DE CALIDAD
>
Registro de diario de pacientes, exámenes solicitados y resultados de los mismos.
>
Reporte de resultados
>
Historia clínica
TERMINOS Y DEFINICIONES
VAGINITIS: Se define como aquel proceso inflamatorio de la mucosa vaginal que por lo general suele
acompañarse de un aumento en la secreción vaginal.
Causa picazón o escozor en los genitales femeninos y a veces también exudado (flujo vaginal). La vaginitis se
presenta más a menudo en mujeres diabéticas que en las que no padecen esta enfermedad.
VAGINOSIS: Aumento del flujo debido a una gran descarga de células. No hay reacción inflamatoria.
La vaginosis bacteriana se debe a un desequilibrio de las bacterias que por lo general están presentes en la
vagina. La cantidad de lactobacilos disminuye a la vez que aumenta el número de ciertos otros tipos de
bacterias malignas.
INFECCION: Invasión del organismo por agentes patógenos, especialmente microscópicos, como bacterias y
virus, y posterior desarrollo de los mismos.
DIAGNOSTICO: Procedimiento por el cual se identifica una enfermedad, entidad nosológica, síndrome, o
cualquier condición de salud-enfermedad
CONDILOMA: Elevación verrugosa que se localiza en ario, vulva o glande, pene y ano.
BIBLIOGRAFIA
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treatment guidelines. MMWR Recomm Rep 2002 May 10;51(RR-6):42-8
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Ñañez H, Ruiz AI: Texto de Obstetricia y Perinatología. Primera Edición, Santafé de Bogotá,
1999; 494.
Beck William: NMS Obstetrics and gynecology 3r edition
Angel Edith: Infecciones en obstetricia y ginecología. Curso virtual 2005.
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
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DE PRUEBA DE EMBARAZO
PROCEDIMIENTO PARA
ANALISIS DE PRUEBA
DE EMBARAZO
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DE PRUEBA DE EMBARAZO
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OBJETIVO
Detectar la hormona del embarazo la HCG en sangre u orina, por medio de la prueba cualitativa.
ALCANCES
Aplica para los usuarios que solicitan el servicio en el centro de atención.
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la Bacterióloga del servicio de laboratorio clínico.
GENERALIDADES
La Gonadotropina Coriónica Humana es una hormona glicoprotéica, secretada por la placenta en desarrollo,
corto tiempo después de la implantación del óvulo fecundado. Hacia el octavo día después de la implantación,
el óvulo fecundado inicia su actividad trofoblástica produciendo millonésimas de miligramo de HCG que se
pueden detectar a través de técnicas cualitativas o cuantitativas.
Las hormonas glucoproteínicas, HCG, hormona luteinizante, hormona estimulante del folículo y TSH están
formadas por dos subunidades distintas; la subunidad alfa es similar en todas las hormonas glucoproteínicas;
mientras que la subunidad beta es única en cada hormona. La mayor sensibilidad de HCG beta permite saber si
hay embarazo de 6 a 10 días después de la implantación. Durante el embarazo normal, se puede detectar HCG
hasta 4 a 6 semanas después del parto.
El intervalo para que desaparezca la HCG después de la evacuación de un embarazo molar, ya sea por
histerectomía o mediante succión y legrado es de 73 a 76 días, con límites de 11 a 219 días.
Además, existe una gran variedad de neoplasias diferenciadas y mal diferenciadas que producen
gonadotropina coriónica ectópica. El análisis para HCG total o la HCG beta puede detectar tumores ectópicos
(coriocarcinoma, mola hidatiforme y tumores testiculares germinales).
DETERMINACION DE PRUEBA DE EMBARAZO (HCG CUALITATIVA)
Explicación de la prueba:
Estas pruebas cualitativas permiten detectar el embarazo normal. Son más rápidas, pero menos sensibles
(sensibilidad de 20 a 50 mUI/ml) que las pruebas cuantitativas; sin embargo; esto sucede tanto en un embarazo
normal como en uno ectópico.
En la prueba cualitativa de HCG, la subunidad beta se utiliza en la detección que no es sistemática de HCG. La
prueba constituye el método más sensible y específico para detectar un embarazo temprano, diagnosticar
embarazo ectópico o amenaza de aborto. También es útil en el estudio de los tumores testiculares. Se eleva en
el coriocarcinoma, carcinoma de células embrionarias y en el embarazo ectópico.
La HCG es muy útil en el seguimiento de las neoplasias de células germinales que producen HCG,
especialmente de las neoplasias trofoblástica. En las neoplasias de células germinales en el varón, tanto la
HCG beta como la fetoproteína alfa son útiles como marcadores tumorales y se pueden utilizar para valorar las
recurrencias.
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
27/03/2011
DE PRUEBA DE EMBARAZO
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METODO CORRECTO DE RECOLECCION DE LA MUESTRA
> Orina: la orina debe ser recogida en un recipiente plástico o de vidrio limpio y seco sin ningún
preservativo. Es preferible usar la primera orina de la mañana ya que contiene una concentración más alta
de HCG, sin embargo una muestra de orina de otra hora puede ser usada.
Si la orina está turbia debe ser centrifugada antes de realizar el test.
> Suero: Sangre total tomada en tubo sin anticoagulante (tubo tapa roja o tapa amarilla) para obtener
suero.
INDICACIONES DE TRANSPORTE Y ALMACENAMIENTO ADECUADO DE LA MUESTRA
> La muestra de orina se puede conservar entre 2 – 8 ºC por 2 días y congelada a –20 ºC hasta 5 días.
SIGNIFICADO CLÍNICO:
La HCG se eleva en:
> Embarazo
> Mola hidatiforme
> Coiocarcinoma
> Seminoma
> Teratoma ovárico y testicular
> Embarazo múltiple
> Neoplasias de estómago, páncreas, pulmón, colon e hígado
> Melanoma maligno y sarcoma
> La HCG disminuye en:
> Amenaza de aborto
> Embarazo ectópico
DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
(Ver inserto en uso)
PRINCIPIO DEL TEST
Es un inmunoensayo cromatográfico rápido para la detección de la HCG en orina o en suero, que sirve como
ayuda para la detección temprana del embarazo. La membrana está recubierta con anticuerpos anti HCG de
ratón en la región de línea de prueba (T) y anticuerpos de cabra anti-ratón, en la región de la línea de control (C).
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
27/03/2011
DE PRUEBA DE EMBARAZO
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Durante la prueba, la muestra reacciona con el conjugado (anticuerpos anti HCG-oro coloidal)
el cual ha sido recubierto en el dispositivo del test. La mezcla migra cromatográficamente por capilaridad para
reaccionar con los anticuerpos anti-HCG de la membrana y genera una línea roja.
La presencia de esta línea roja indica resultado positivo mientras que la ausencia indica resultado negativo.
Sin tener en cuenta la presencia de HCG, cuando la mezcla continúa migrando por la membrana a la región de
anticuerpos de cabra anti-ratón, una línea roja en la región de control (C) siempre aparecerá.
La presencia de esta línea roja sirve para verificar que el volumen de la muestra fue suficiente y el flujo
apropiado como un control para el reactivo.
PREPARACIÓN Y ESTABILIDAD DE LOS REACTIVOS
El Test está listo para su uso y se puede conservar a una temperatura de 2 – 30ºC hasta la fecha de caducidad
indicado en el estuche. No se debe congelar.
METODOLOGÍA
> Test inmunocromatográfico cualitativo
> Parámetros según hoja adjunta
EXPRESIÓN DE RESULTADOS
La concentración de HCG en orina y suero de mujeres embarazada aumenta rápidamente, frecuentemente
excede las 100 mUI/mL después de la ausencia del periodo menstrual y aumenta entre 30.000 y 100.000
mUI/mL a las 10 o 12 semanas de gestación.
INTERFERENCIAS
No se presenta interferencia con las siguientes sustancias:
> Hemoglobina : 0.4 g/L
> Bilirrubina : 30 mg/dL
> Ácido úrico : 0.2 g/dL
> Glucosa : 2 g/dL
> Ácido ascórbico : 20 mg/dL
> Acetaminofén : 20 mg/dL
> Ácido salicílico : 20 mg/dL
> Atropina : 20 mg/dL
> Cafeína : 20 mg/Dl
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PPROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
27/03/2011
DE PRUEBA DE EMBARAZO
ESPECIFICIDAD: no se presenta reacción cruzada con las siguientes hormonas:
> FSH : 1000 mU/mL
> LH : 300 mU/mL
> TSH : 1000 uU/Ml
SENSIBILIDAD
> ORINA : 20 mU/mL
> SUERO : 10 mU/mL
FLUJOGRAMA
INICIO
Suero u
orina
Agregar una gota al test
inmunocromatografico
cualitativo
Observar la presencia o
ausencia de la línea
indicadora
Reportar en
el registro de
resultados
FIN
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PROCEDIMIENTO PARA ANALISIS
27/03/2011
DE PRUEBA DE EMBARAZO
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REGISTROS DE CALIDAD
> Registro de diario de pacientes, exámenes solicitados y resultados de los mismos.
> Reporte de resultados
> Historia clínica
NORMATIVIDAD
Inserto del reactivo en uso
TERMINOS Y DEFINICIONES
HORMONA: Sustancias químicas de acción especializada que actuando como mensajeras, controlan tejidos
y órganos situados en cualquier parte del organismo, en aquellas células que responden al estímulo que
provocan. La diferencia entre las hormonas de animales y plantas está en que las primeras se elaboran en
órganos específicos y regulan casi todas las funciones orgánicas.
ANÁLISIS CUALITATIVO: Es aquel que refiere a los aspectos de calidad, valor o ponderación de un objeto,
individuo, entidad o estado. Por oposición, existe el análisis cuantitativo, que se emplea para determinar la
cantidad de un ingrediente, elemento o variable en una entidad dada.
SENSIBILIDAD: Cuando se refiere a una prueba médica, la sensibilidad se refiere al porcentaje de personas
cuya prueba resulta positiva a una enfermedad específica, entre un grupo de personas que padecen dicha
enfermedad. Ninguna prueba tiene 100% de sensibilidad porque algunas personas que padecen la
enfermedad tendrán resultados negativos, o sea (falsos negativos).
ESPECIFICIDAD: Cuando se trata de una prueba médica, la especificidad se refiere al porcentaje de personas
cuyas pruebas tiene resultados negativos para una enfermedad específica entre un grupo de personas que no
padecen de la enfermedad. Ninguna prueba es 100% específica porque algunas personas que no padecen de
la enfermedad tendrán resultados positivos en la prueba de la enfermedad (falso positivos).
CONCENTRACIÓN: Proporción que habrá en la misma de soluto, que es la sustancia que se agrega y
de solvente, que es la sustancia sobre la cual se echará la anterior. Cuanto menor sea la proporción de
soluto sobre el solvente, menor concentración tendrá la solución y cuanto mayor sea, mayor concentración
poseerá.
INTERFERENCIA: Alteración o perturbación del desarrollo normal de una cosa mediante la interposición de un
obstáculo
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BIBLIOGRAFIA
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Ellington, Joanna (2004). «Sperm Transport to the Fallopian Tubes». Frequently Asked Questions with
Dr. E. INGfertility Inc. Consultado el 13-08-2006.
>
Phillips, Pat (2007). «Early Pregnancy Tests». Pregnancy Test FAQ. Consultado el 04-03-2007.
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
PR-LAB-33
salud
Fecha Vigencia
SEGUIMIENTO A RIESGOS INHERENTES AL
27/03/2011
SERVICIO DE TOMA DE MUESTRAS
SEGUIMIENTO A RIESGOS
INHERENTES AL
SERVICIO DE
TOMA DE MUESTRAS
Página
149
Documento
Controlado
Código
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Versión 2
PR-LAB-33
salud
Fecha Vigencia
SEGUIMIENTO A RIESGOS INHERENTES AL
27/03/2011
SERVICIO DE TOMA DE MUESTRAS
Página
150
Documento
Controlado
OBJETIVO:
Realizar el reporte, evaluación y seguimiento de los casos en los cuales se presentan
complicaciones asociadas a la toma de muestras de laboratorio clínico en la atención del
paciente
ALCANCE:
Se inicia cuando la auxiliar de laborato
rio o bacterióloga, detectan un riesgo y/o
complicación con el paciente, durante el proceso de toma de muestras y termina con las
medidas correctivas realizas por la auxiliar en cuanto a ofrecer primeros auxilios si es
necesario y realizar su respectivo reporte.
INSUMOS REQUERIDOS Y SUS PROVEEDORES:
Formato para registro de riesgo.
SALIDAS O RESULTADOS Y CLIENTES:
Riesgo reportado y como se manejo.
PRINCIPALES SUBPROCESOS:
Evaluación y reporte del riesgo en la toma de muestras donde sucedió el incidente.
INDICADORES DE GESTION:
Números de riesgos en el mes/ total de pacientes atendidos en el mes
DESCRIPCIÓN DE LOS RIESGOS EN LA TOMA DE MUESTRAS
RIESGO
Ø
MEDIDAS CORRECTIVAS
Complicaciones de los procedimientos diagnósticos:
1.Recibir la Orden que no pertenece al paciente
-Preguntar en el momento de reci
bir la orden, si es la persona que
se va a sangrar corroborando su
nombre y sus datos.
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SEGUIMIENTO A RIESGOS INHERENTES AL
27/03/2011
SERVICIO DE TOMA DE MUESTRAS
2.Orden de solicitud de Exámenes con datos desactualizados
Página
151
Documento
Controlado
- Al momento de Atender al paciente
confirmar datos, siendo ellos los
que los suministran.
3.Tomar las muestras de los exámenes en los
tubos que no son.
- Identificar los exámenes previamenTe antes de realizar la sangría.
4.No interrogar al paciente sobre sus condiciones básales previa toma de la muestra.
-Si se incurrió en el error, se debe toMar nuevamente la muestra y expli
al paciente, el porqué se le debe
repetir la muestra.
5. No marcar los tubos
- Marcar siempre los tubos antes de
sangrar al paciente.
6.Posterior a la toma de muestra que el
paciente se desmaye.
-Prestar los primeros Auxilios: Acostar
Paciente, levantarle las piernas, y
ponerlo a que inhale alcohol, llamar
al médico.
7.Presentación de Hematoma en el sitio
de la punción.
-Retirar la aguja si aun no ha podido
Sangrar al paciente, no realizar masa
jes, pero presión si, e intentar en otro
brazo.
Ø
Perdida del derecho a la intimidad del pacient
resultados y registros.
1.Descuido en el proceso de entrega de los
Resultados, o en la custodia de los registros.
Ø
e por fallas en la privacidad de los
-Preguntar en el momento de entreGar el resultado, si es la persona
Correcta, corroborando su
nombre y sus datos.
Resultados intercambiados entre paciente.
1.Al momento de separar una muestra
colocarle el nombre de otro usuario.
-Aquellas muestras que requieren sePararse en un tubo diferente al piloto
(pruebas de coagulación) se deben
marcar simultáneamente los 2 tubos
al momento de sangrar al paciente.
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salud
Fecha Vigencia
SEGUIMIENTO A RIESGOS INHERENTES AL
27/03/2011
SERVICIO DE TOMA DE MUESTRAS
2. Entregar resultados a un homónimo.
Ø
- En el momento de entregar resultaDos, realizar la verificación contra la
cedula.
Resultados de exámenes no solicitados.
1.Recibir y/o tomar muestras que no están solicitadas en la orden.
Ø
Página
152
Documento
Controlado
- En el momento de revisar muestras
Contra orden, identificar el error, co
rregirlo y dar aviso al paciente.
Resultados de exámenes que llegaron inoportunamente.
1.Demora en el procesamiento de la muestra
- En el momento de realizar el montaje
De las muestras, disponer del tiempo
Necesario, sin distracciones.
DESCRIPCIÓN DEL PROCESO
Auxiliar de Laboratorio:
1.
2.
3.
4.
Detectar el riesgo y/o complicación y diligenciar el formato
Practicar primeros auxilios en caso de necesitarse o realizar las correcciones de
acuerdo al riesgo.
Terminar de diligenciar el formato con cuales fueron los correctivos aplicados y
si se corrigió el riesgo.
Llevar el formato diligenciado al laboratorio para su correspondiente registro y
estadadistica.
Coordinadora de Laboratorio:
5.
6.
7.
Consolidar la información de los formatos y calcular los indicadores de gestión
correspondientes.
Identificar, analizar, cuantificar y realizarles el seguimiento mensualmente a los
indicadores, si se presentaron documentar las acciones correc tivas aplicadas y
analizar si se corrigió el riesgo, de lo contrario adoptar otra medida.
Enviar copia del reporte al coordinador del Centro de atención, y a nivel central.
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salud
GUIA PARA REMISIÓN DE
MUESTRAS HISTOPATOLOGICAS
Versión 1
Código
GUI-LAB-01
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
153
Documento
Controlado
GUIA PARA REMISIÓN DE
MUESTRAS HISTOPATOLOGICAS
ESE Departamental Solución
salud
GUIA PARA REMISIÓN DE
MUESTRAS HISTOPATOLOGICAS
Código
GUI-LAB-01
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
154
Documento
Controlado
OBJETIVO
Proporcionar información para clasificar las sustancias infecciosas para su transporte y para garantizar su
embalaje/envasado seguro.
ALCANCE Y RESPONSABLES
Este procedimiento inicia desde la solicitud de atención de un paciente y termina con el envió o recepción de
las muestras en el laboratorio.
Todo el personal es responsable de seguir las directrices aquí consignadas.
GENERALIDADES
DEFINICION
Es la especialidad médica que se encarga del estudio de las lesiones celulares, tejidos, órganos, de sus
consecuencias estructurales y funcionales y por tanto de las repercusiones en el organismo.
El transporte de material infeccioso y potencialmente infeccioso está sometido a reglamentaciones nacionales
e internacionales estrictas. Esas reglamentaciones describen el uso apropiado de materiales de
embalaje/envasado, además de otros requisitos.
El personal de laboratorio debe enviar de acuerdo con las normas de transporte aplicables, cuyo cumplimiento
permitirá:
1. Reducir la probabilidad de que los embalajes/envases se estropeen y derramen su contenido, y con ello
2. Reducir el número de exposiciones que den lugar a posibles infecciones, y
3. Mejorar la eficiencia de la entrega de los envíos.
Toma de muestras para histopatología.
Las muestras para histopatología se pueden colocar en un mismo frasco, en lo posible este debe ser de boca
ancha y bien tapado para que no derrame líquido.
Las muestras deben enviarse separadas de otras que tengan como destino bacteriología o virología.
El fijador que se utiliza mas comúnmente es el formol al 10%, para prepararlo se mezclan 1 parte de formol al
40% y 9 partes de agua (100 ml + 900 ml respectivamente para preparar 1 litro) y se adicionan 6,5 gr. de fosfato
de sodio anhidro difásico y 4 gr. de fosfato de sodio monobásico. Los dos compuestos de fosfato evitan la
formación de hematina ácida, que es un pigmento de color marrón oro birrefringente que puede ser confundido
con hemosiderina, bilirrubina, hematoidina y aposiderina. Aunque estos dos fosfatos son esenciales, en la
práctica generalmente se usa el formol diluído en agua solamente. No enviar la muestra en formol puro (sin
diluir).
Las muestras de tejido para estudio histopatológico deben ser de un espesor menor de 5 mm (con
excepción de las muestras de cerebro y ojos). Los cortes mas gruesos pueden fijarse de manera
incorrecta. La longitud y el ancho no son críticos, pero se considera conveniente una muestra de 3 x 4 cm.
La relación correcta entre el formol y la muestra es de 10:1.
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GUIA PARA REMISIÓN DE
MUESTRAS HISTOPATOLOGICAS
Código
GUI-LAB-01
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
155
Documento
Controlado
La muestra de tejido óptima de una lesión observada macroscópicamente debe incluir tejido afectado y tejido
aparentemente normal.
Para muestra de cerebro que son de gran tamaño, deben realizarse 4 o 5 cortes longitudinales del mismo para
que penetre el fijador. Los cortes no debe ser completos sino que abarquen las 2/3 partes del espesor para
mantener al cerebro cortado longitudinalmente pero sin que los cortes se separen, esto sirve para no perder la
referencia anatómica de las partes del cerebro. Deben fijarse en contenedores más grandes por 24-48 hs. y
luego pasarse a un frasco más pequeño (de boca ancha).
Adjunte un listado de los órganos remitidos, un resumen de la historia clínica y todos los hallazgos de necropsia
incluyendo extensión, color, consistencia de los tejidos etc. Enuncie un diagnóstico presuntivo de acuerdo con
los hallazgos clínicos y de necropsia. Esta información es muy útil para que el patólogo pueda hacer una
correlación clínica con los hallazgos histopatológicos y debe ser adjuntada adherido externamente a la caja
cuando se utiliza un servicio de mensajería para el envío de la muestra.
Transporte de muestras.
Por norma general lo ideal es que las muestras lleguen al laboratorio lo antes posible.
Al acondicionar muestras que deben ser enviadas refrigeradas (a excepción de las muestras para cultivo de
Trichomonas que deben ser enviadas a temperatura ambiente), tenga en cuenta las siguientes
recomendaciones:
Esté seguro que las muestras estén identificadas con marcador resistente al agua.
Utilice una caja de telgopor (icopor) proporcional al tamaño o número de muestras a enviar. Utilice
refrigerantes.
Prepare una historia clínica que incluya, nombre del paciente, datos completos relacionados con el paciente,
análisis solicitados. Cuando se incluyen los síntomas clínicos se facilita la interpretación de los resultados
obtenidos. Coloque esta información en un sobre dentro de una bolsa de nylon en el interior de la caja de
telgopor.
Refrigerantes
Las pilas congeladas deberán colocarse fuera del recipiente secundario se colocará en un envase a prueba de
fugas ; el embalaje exterior o el sobre embalaje deberán también ser a prueba de fugas. No deberá colocarse
pilas congeladas en el interior de los recipientes primario o secundario, debido al riesgo de explosión. Puede
utilizarse un embalaje/envase termo aislado especialmente diseñado como recipiente para pilas congeladas
(nevera de icopor).
Identifique la caja con la palabra URGENTE e informe al laboratorio la empresa transportadora y número de
guía para estar pendiente de su recepción.(Aplica si se envió por el servicio de mensajería.)
A) Rótulo identificatorio: material enviado y el conservador o fijador utilizado
B) Información:
1) Datos del profesional
2) Datos del paciente
3) Datos de la muestra: fecha de extracción, zona de la cual se extrajo, y descripción macroscópica
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GUIA PARA REMISIÓN DE
MUESTRAS HISTOPATOLOGICAS
Versión 1
Código
GUI-LAB-01
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
156
Documento
Controlado
5) Breve historia clínica: signos, evolución, tratamiento, estudios complementarios realizados
7) Diagnóstico presuntivo
C) Análisis requeridos:
Histopatología
Recipiente de boca ancha y buen cierre (preferentemente de plástico)
Líquido fijador – Formol 10 % (o Formaldheído al 4%) (si es bufferado mejor)
Muestra de 0,5 cm. (a 1 cm.) de espesor (feteada)
Material lo más fresco posible. Tomar tejido normal y tejido afectado
Temperatura ambiente, nunca congelar una pieza.
PROCEDIMIENTO DE CONSERVACION, REMISIÓN y TRANSPORTE DE MUESTRAS
Condiciones generales de las muestras
Las muestras para histopatología deben estar debidamente empacadas se pueden colocar en un mismo
frasco, en lo posible este debe ser de boca ancha y bien tapado para que no derrame líquido. Completamente
sellado, refrigeradas según el caso.
Muestras remitidas a Laboratorio Externo
1. Recibir Orden medica.
2. Verificar que los exámenes a remitir estén contemplados en el Plan Obligatorio de Salud.
3. Tomar muestra
4. Registrar los exámenes a remitir
5. Guardar original de la orden medica en carpeta destinada para tal fin.
6. Marcar el recipiente con los siguientes datos:

Nombre Completo del paciente.

Historia Clínica

Edad

Examen Solicitado
7. Separar la muestra a remitir en cantidad suficiente y embalar en el recipiente.
8. Al momento de entregar las muestras verificar temperatura de la nevera de transporte y registrar en FRLAB-102. Realizar ajustes de Temperatura en caso de ser necesario.
9. Entregar las muestras al encargado de recepción del Laboratorio externo.
10. Guardar copia del formato de remisión de la muestra al Laboratorio externo.
11. Realizar seguimiento, respecto al reporte de la muestra.
12. Garantizar la confidencialidad de los resultados.
TRANSPORTE INTRAHOSPITALARIO DE MUESTRAS
Para transportar las muestras dentro del centro de atencion hacia el Laboratorio deben de seguirse los
siguientes pasos:
1. Las muestras deben estar Correctamente rotuladas antes de ingresarlas a la nevera de transporte.
2. Los frascos deben estar correctamente tapados.
3. Las muestras deberán transportarse lo más pronto posible después de tomadas.
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GUIA PARA REMISIÓN DE
MUESTRAS HISTOPATOLOGICAS
Código
GUI-LAB-01
Versión 1
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
157
Documento
Controlado
REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE
REGISTRO
Registro de
temperatura
nevera de
transporte
Libro de
Muestras a
Remitir
Laboratorio de
Referencia
CÓDIGO
IDENTIFICACIÓ
N DE LA
CARPETA
FR-LAB102
Registro de
temperatura
nevera de
transporte
FR-LAB100
RESPONSABLE TIEMPO
DE
DE
ALMACENAMIE RETENCI
NTO
ÓN
Personal del
laboratorio
Libro de Muestras
Personal
a Remitir
responsable de
Laboratorio de
la sección
Referencia
DESTINO
FINAL
Trimestral
Destrucció
n
Lo
estipulado
para la
Historia
Clínica
Archivo
TERMINOS Y DEFINICIONES
Histopatologia: Es la especialidad médica que se encarga del estudio de las lesiones celulares, tejidos,
órganos, de sus consecuencias estructurales y funcionales y por tanto de las repercusiones en el
organismo.
Embalaje: Es un recipiente o envoltura que contiene productos temporalmente y sirve principalmente para
agrupar unidades de un producto pensando en su manipulación, transporte y almacenaje. ...
Telgopor: El poliestireno expandido (EPS) es un material plástico espumado, derivado del poliestireno y
utilizado en el sector del envase y la construcción. En los países hispanohablantes se le conoce coloquialmente
por varios nombres, algunos de ellos derivados del nombre de su fabricante:Argentina: Telgopor (tela gomosa
porosa), marca comercial de la empresa Hulytego. Bolivia: Plastoformo. Brasil: Isopor. Colombia: Icopor, por
su fabricante, Industria Colombiana de Porosos.
Revisión Bibliografica

Manual de Bioseguridad en el Laboratorio, 3 edición, Organización Mundial de la Salud, OMS. 2005
 Curso de gestión de calidad para laboratorios, Módulo 11: Bioseguridad, Organización Panamericana de
la salud. 2005
 Guía sobre la reglamentación relativa al transporte de sustancias infecciosas, Organización Mundial de la
Salud OMS, 2005
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salud
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA
REMISIÓN DE MUESTRAS
TOMADAS EN EL
LABORATORIO CLINICO
Código
GUI-LAB-02
Fecha Vigencia
27/03/2011
PROCEDIMIENTO PARA
REMISIÓN DE MUESTRAS
TOMADAS EN EL
LABORATORIO CLINICO
Página
158
Documento
Controlado
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Código
GUI-LAB-02
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA
REMISIÓN DE MUESTRAS
TOMADAS EN EL
LABORATORIO CLINICO
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
159
Documento
Controlado
1. Objetivo: Garantizar el adecuado transporte y remisión de muestras de laboratorio para
mejorar el proceso de diagnostico, tratamiento y rehabilitación del usuario.
2. flujograma para la remisión de muestras de laboratorio.
Orden de toma de
muestra
Procesamiento de
muestra
Triple embalaje
Conservación de la
cadena de frío
Rotulo de muestra
Transporte de
muestra
SI
Secretaria local de
salud
Evento de
interés en SP
NO
Seguridad social:
vinculado
Seguridad social:
contributivo o
subsidiado
Hospital
EPS o EPS - S
departamental de
Villavicencio
Este esquema aplica para muestras
De TSH Y VIH
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salud
Código
GUI-LAB-02
Versión 2
PROCEDIMIENTO PARA
REMISIÓN DE MUESTRAS
TOMADAS EN EL
LABORATORIO CLINICO
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
160
Documento
Controlado
3. Guía para la toma de muestras, almacenamiento y remisión.
TIPO DE INFECCION
TIPO MUESTRA
ALMACENAMIENTO
MATERIA FECAL: Hasta 14 días después del inicio de Mantener a 4ºC.
La parálisis.
POLIO
ESCOBILLON FARINGEO: Hasta 5 días después del
inicio de los síntomas.
Parálisis Flácida
menores de 15 años LCR: Hasta 5 días después del inicio de los síntomas.
DENGUE
SUERO: Libre de hemólisis y lipemia. Primeros 3
días*.
Mantener a -20ºC*.
Mantener a 4ºC.
SUERO: Libre de hemólisis y lipemia. Después del 5
día de inicio de síntomas ** (5-10 días preferiblemente)
SUERO: Libre de hemólisis y lipemia. Primeros 5 días*. Mantener a -20ºC*
FIEBRE
AMARILLA
ENCEFALITIS
EQUINA
VENEZOLANA
(EEV)
SUERO: Libre de hemólisis y lipemia Después del 5 día Mantener a 4ºC**
de inicio de síntomas **
SUERO: Libre de hemólisis y lipemia (Humano o
equino) Primeros 5 días*.
Si el envío es menos de 24
horas mantener a 4ºC*.
Si el envío es mas de 24
horas mantener a -20ºC*.
SUERO**: Libre de hemólisis y lipemia.
Mantener a 4ºC**.
REMISION DE
MUESTRAS
Recolectar muestra en
frasco plástico de boca
ancha (recolector de orina).
Enviar Refrigerada
conservando la cadena de
frío con pilas refrigerantes.
Diligenciar rotulo completo.
Anexo 1.
Envíar en Triple Embalaje.
Diligenciar ficha de
notificación.
Enviar Refrigerada
conservando la cadena de
frío con pilas refrigerantes.
Diligenciar rotulo.Anexo 1.
Diligenciar ficha de
notificación o formato para
aislamiento viral para
Dengue.
Enviar en Triple Embalaje
Enviar Refrigerada
conservando la cadena de
frío con pilas refrigerantes.
Diligenciar rotulo completo.
Anexo 1.
Diligenciar ficha de
notificación.
Enviar en Triple Embalaje
Enviar Refrigerada
conservando la cadena de
frío con pilas refrigerantes.
Diligenciar rotulo completo.
Anexo 1.
Diligenciar ficha de
notificación.
Enviar en Triple Embalaje
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA
REMISIÓN DE MUESTRAS
TOMADAS EN EL
LABORATORIO CLINICO
TIPO INFECCIÓN
TIPO MUESTRA
Código
GUI-LAB-02
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
161
Documento
Controlado
ALMACENAMIENTO REVISION DE MUESTRAS
Mantener a 4ºC.
Enviar Refrigerada
conservando la cadena de
Mantener a -20ºC*.
frío con pilas refrigerantes.
Diligenciar rotulo completo.
SUERO: Libre de hemólisis y lipemia. Primeros 7 días Depositar en Medio de
Anexo 1.
del inicio de la erupción.*
Transporte Viral (MTV) y
Diligenciar ficha de
mantener a 4ºC dentro de notificación.
Si el caso es confirmado serológicamente es obligatorio las primeras 24 horas y si no Enviar en Triple Embalaje
enviar muestra de hisopado nasofaríngeo y orina sin se puede enviar en este
ENVIAR ORINA MAS
centrifugar. La muestra de orina debe recogers
e tiempo se debe conservar a MUETRA DE SUERO.
durante la primera semana del inicio de la erupción.
-70ºC. ( se realiza en el
Laboratorio de Salud
Pública.)
SUERO: Libre de hemólisis y lipemia.
RUBEOLA
SARAMPION
SUERO: Libre de hemólisis y lipemia. Primeros 7 días Mantener a -20ºC*.
del inicio de la erupción*.
Depositar en Medio de
Si el caso es confirmado serológicamente es obligatorio Transporte Viral (MTV) y
enviar muestra de hisopado nasofaríngeo y orina. La mantener a 4ºC dentro de
muestra de orina debe recogerse durante la pr imera las primeras 24 horas y si no
semana del inicio de la erupción.
se puede enviar en este
tiempo se debe conservar a
-70ºC.
Mantener a 4ºC
( se realiza en el
SUERO: Libre de hemólisis y lipemia. Al primer
Laboratorio de Salud
contacto.
Pública.).
Mantener a 4ºC.
HIV/Sida
RABIA
SUERO: Libre de hemólisis y lipemia. Diligenciar
consentimiento informado.
SUERO: Libre de hemólisis y lipemia.
Mantener a 4ºC.
Enviar Refrigerada
conservando la cadena de
frío con pilas refrigerantes.
Diligenciar rotulo completo.
Anexo 1.
Diligenciar ficha de
notificación.
Enviar en Triple Embalaje
Enviar Refrigerada
conservando la cadena de
frío con pilas refrigerantes.
Diligenciar consentimiento
informado.
Enviar en Triple Embalaje
Enviar Refrigerada
conservando la cadena de
frío con pilas refrigerantes.
Diligenciar rotulo completo.
Anexo 1.Diligenciar ficha de
notificación. Enviar en Triple Embalaje
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA
REMISIÓN DE MUESTRAS
TOMADAS EN EL
LABORATORIO CLINICO
TIPO INFECCIÓN
Código
GUI-LAB-02
Versión 2
TIPO MUESTRA
HEPATITIS A*: Suero desde el inicio de los
síntom as hasta 4-6 m eses
Fecha Vigencia
27/03/2011
ALMACENAMIENTO REVISION DE MUESTRAS
Mantener a 4ºC.
VIRU S D E H EP ATITIS
HEPATITIS B**:Suero desde inicio de síntom as
HEPATITIS C***: Suero después de 4 sem anas
de infección.
VIRU S D E L A
INFLUENZ A
EM B AR AZ AD AS
V ACUN AD AS
IN ADVERTID AM ENTE
CONTR A
S AR AM PION Y
RUBEOL A
TIPO DE INFECCION
MAL DE CHAGAS
FILARIOSIS
LEISHMANIOSIS
CUTANEA
LEISHMANIOSIS
VISCERAL,
MUCOCUTANEA
PALUDISMO
PARASITISMO
INTESTINAL
CISTICERCOSIS
TUBERCULOSIS
TUBERCULOSIS
Escobillón Faríngeo: Inicio de síntom as
Depositar en Medio de
Transporte Viral (MTV) y
m antener
a
4ºC.
Sum inistrado
por
el
Laboratorio
de
Salud
Pública.
Suero:
Libre
de
hem ólisis
y
lipém ia.
Preferiblem ente dos (2) días después de la
vacunación.
Mantener a 4ºC.
Solam ente se aceptan m uestras hasta 30 días
después de la vacunación.
Página
162
Documento
Controlado
Enviar
Refrigerada
conservando la cadena
de
frío
con
pilas
refrigerantes.
Diligenciar
rotulo
com pleto. Anexo 1.
Diligenciar
ficha
de
notificación.
Enviar en Triple Em balaje
Enviar
Refrigerada
conservando la cadena
de
frío
con
pilas
refrigerantes.
Diligenciar
rotulo
com pleto. Anexo 1.
Diligenciar
ficha
de
notificación.
Enviar en Triple Em balaje
Enviar
Refrigerada
conservando la cadena
de
frío
con
pilas
refrigerantes.
Diligenciar
rotulo
com pleto. Anexo 1.
Diligenciar
ficha
de
notificación.
Enviar en Triple Em balaje
TIPO MUESTRA
REMISION DE MUESTRAS
Enviar Refrigerada conse rvando la
cadena de frío
con pilas
Suero: Libre de hemólisis y lipemia
refrigerantes.
Anexar ficha de notificación.
Diligenciar rotulo. Anexo 1
Enviar en Triple Embalaje
Enviar Refrigerada conservando la
Sangre Total.
cadena de frío
con pilas
refrigerantes.
Diligenciar rotulo completo. Anexo 1.
Enviar en Triple Embalaje
Remitir la lámina en una caja o
Extendido de la muestra en una lámina, según parámetros establecidos a envuelta en papel que
Nivel Nacional y fijar con Metanol
Amortigüe golpes.
Enviar en triple embalaje.
Enviar Refrigerada conservando la
Suero: Libre de hemólisis y lipemia
cadena de frío
con pilas
refrigerantes.
Diligenciar rotulo. Anexo 1.
Enviar en Triple Embalaje
Remitir la lámina en una caja o
Sangre Total: Exte ndido de la muestra en una lámina según parámetros
envuelta en papel que
establecidos a Nivel Nacional.
Amortigüe golpes.
Enviar en Triple embalaje.
Enviar Refrigerada conservando la
Materia Fecal: Enviar muestra en frasco de bo ca ancha (frasco recolector cadena de frío
con pilas
de orina) 4 gramos o de 2-3 ml si es diarreica. Idealmente envíe la muestra refrigerantes.
en 10 ml de solución de formol al 5%.
Diligenciar rotulo. Anexo 1.
Enviar en Triple Embalaje
Enviar Refrigerada conservando la
L.C.R: por lo menos 1 ml
cadena de frío
con pilas
refrigerantes.
Diligenciar rotulo. Anexo 1.
Anexar resumen de historia aclínica
Enviar en Triple Embalaje
ESPUTO: Se toma en adultos que se consideran casos sospechosos de
Esputo y Orina: Se recoge en un
TBC, de forma seriada durante tres tomas, en caso de obtener un resultado recipiente plástico de boca ancha con
positivo se debe enviar al laboratorio departamental de salud pública.
cierre hermético.
ORINA:
Aspirado Gastrico: Se toma en
JUGO GASTRICO: Se toma en adultos y niño s que no expectoran, en
recipiente de boca ancha con cierre
recipiente debe contener Fosfato Trisodico (FTS) al 10% suministrado por hermético debe contener 2 ml FTS al
el LSPD. Se requiere tomar tres muestras seriadas.
10% por casa 10ml de aspirado
LIQUIDOS ESTERILES: Como LCR, Pleural o Ascético. Debe ser tomada
Líquidos Estériles: Se toma en un
por un médico especialista.
tubo estéril con tapa de cierre hermético.
ESE Departamental Solución
salud
PROCEDIMIENTO PARA
REMISIÓN DE MUESTRAS
TOMADAS EN EL
LABORATORIO CLINICO
TIPO DE INFECCION
Código
GUI-LAB-02
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
TIPO MUESTRA
IDENTIFICACION DE Cepa aislada y fresca.
CEPAS
Suero: libre de hemólisis y lipemia.
BRUCELOSIS
LEPTOSPIROSIS
TOS FERINA
Suero: libre de hemólisis y lipemia.
HISOPADO NASOFARINGEO EN SU RESPECTIVO MEDIO DE
CULTIVO.
FROTIS EN LAMINA (centrado y pequeño)
Página
163
Documento
Controlado
REMISION DE MUESTRAS
Enviar la cepa en caja de petri
debidamente sellada o el medio de
Transporte suministrado por el LSPD.
Protegida con papel o cartón.
Diligenciar completamente el rótulo,
anexo No. 1
Enviar Refrigerada conservando la
cadena de frío
con pilas
refrigerantes.
Diligenciar rotulo. Anexo 1.
Enviar en Triple Embalaje
Enviar Ref rigerada conservando la
cadena de frío
con pilas
refrigerantes.
Diligenciar rotulo. Anexo 1.
Enviar en Triple Embalaje
Enviar en medio de transpo
rte
suministrado por el LDS junto con el
escobillón flexible y la lámina.
Anexar ficha de notificación.
Triple embalaje
Código
ESE Departamental Solución
Versión 3
IN-LAB-01
salud
Fecha Vigencia
INSTRUCTIVO PARA RECOLECCIÓN DE
27/03/2011
MUESTRAS POR PARTE DEL PACIENTE
INSTRUCTIVO PARA
RECOLECCIÓN DE
MUESTRAS POR PARTE
DEL PACIENTE
Página
164
Documento
Controlado
Código
ESE Departamental Solución
Versión 3
IN-LAB-01
salud
Fecha Vigencia
INSTRUCTIVO PARA RECOLECCIÓN DE
27/03/2011
MUESTRAS POR PARTE DEL PACIENTE
Página
165
Documento
Controlado
1. OBJETIVO
Establecer las recomendaciones generales para el paciente y asegurar una adecuada recolección de
muestras.
2. ALCANCES Y RESPONSABLES
Este procedimiento inicia con la entrega del instructivo al paciente que lo requiera, continua con la
explicación y aclaración del procedimiento del examen solicitado en la orden medica al paciente y
finaliza con la recepción de la muestra en el laboratorio.
Auxiliar de enfermería consultorios y laboratorio clínico: es responsable de entregarle este instructivo
al paciente, con la información escrita sobre la adecuada recolección de la muestra o las condiciones
en que se debe presentar el paciente al examen. Además es responsable de aclarar las dudas que
tenga el paciente respecto al procedimiento y verificar que el paciente le haya comprendido
totalmente
PARA TODOS LOS EXAMENES POR FAVOR INDICAR EL NOMBRE DE TODOS LOS
MEDICAMENTOS QUE ESTA TOMANDO Y A QUE HORA SE LOS TOMA NORMALMENTE O
HACE CUANTO LOS SUSPENDIO
HEMATOLOGIA
Cuadro Hemático, Hemoclasificación o Grupo sanguíneo, Reticulocitos, Plaquetas, Hemoparasitos, Velocidad
de Sedimentación Globular, Tiempo de Protrombina (PT), Tiempo de Tromboplastina (PTT), Tiempo de
coagulación, Tiempo de sangría, Prueba de embarazo, Beta HCG
> No requiere ayuno.
QUIMICA SANGUINEA
Glicemia, Bun, Creatinina, Acido Úrico, Colesterol Total, Triglicéridos, Bilirrubina Total y directa, ASTOS, PCR,
RA test, Perfil Lipidico LDH, Serología,).
>
Tener un ayuno mínimo de 12 horas, evitando el consumo de bebidas
alcoholicas y el cigarrillo en los dos días anteriores a la toma de los exámenes.
>
Bilirrubinas, Bun y Creatinina no requiere ayuno.
DEPURACION CREATININA Y PROTEINURIA 24 horas
>
>
>
El día anterior a la recolección de orina, comprar un recipiente plástico con capacidad de almacenar 4
litros. Lavarlo con agua del chorro y dejarlo secar; mantenerlo dentro de una bolsa plástica negra
desechable.
Levantarse a primera hora en la mañana y orinar en el baño NO RECOGER ESTA ORINA. Anotar la
hora de esta primera orina. Ejemplo: 7+00 a.m.
A partir de este momento recoger toda la orina durante el día y la noche; orinar siempre en un recipiente
limpio y trasvasarlo al galón teniendo cuidado de no derramar la orina. Guardar el galón en la nevera
en lo posible o en un lugar fresco.
Código
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Versión 3
IN-LAB-01
salud
Fecha Vigencia
INSTRUCTIVO PARA RECOLECCIÓN DE
27/03/2011
MUESTRAS POR PARTE DEL PACIENTE
Página
166
Documento
Controlado
> En la mañana siguiente a las 7+00 a.m. usted recogerá toda la primera orina; la pondrá en el galón y se
dirigirá al laboratorio presentándose en ayunas para la toma de muestra de sangre y no olvide traer el
recipiente o los recipientes dentro de la bolsa plástica negra con toda la orina recogida.
> Pesarse e informar el dato a la persona que lo atienda del laboratorio clínico.
NOTA: En caso de derramar orina, o haber olvidado agregar alguna muestra al galón, comenzar de
nuevo el proceso de recolección desde el principio, puede lavar y usar el mismo frasco.
PARCIAL DE ORINA y UROCULTIVO
> Recolectar la primera orina de la mañana en un recipiente plástico de boca ancha nuevo, después de
haber realizado un aseo de los genitales con la ayuda de agua y jabón; descarte la primera parte de la
orina en la taza del baño, recoger en el frasco la siguiente parte (por lo menos la mitad del frasco) y
termine de orinar en la taza del baño. Llevar al laboratorio inmediatamente (menos de 2 horas).
COPROANALISIS (Coprológico, Coproscopico, Azucares reductores, Sangre oculta)
>
>
Recoger la materia fecal que no hayan estado en contacto con el agua del sanitario directamente en el
recipiente plástico desechable que ha conseguido en la droguería.
La muestra deberá ser entregada en el laboratorio clínico lo más pronto posible. Si es liquida menos de
media hora.
Sangre oculta: Durante 3 días antes de la prueba no consumir vitamina C, alcohol o
aspirina. Restringir la ingesta de carnes rojas crudas o semicocidas. Informar si le se
han practicaron estudios radiográficos con contraste en las últimas dos semanas.
BACILOSCOPIA DE ESPUTO
>
Realizarse aseo normal de la boca, no utilizar enjuague bucal. En un recipiente plástico de
boca ancha recolectar la muestra de esputo (flema, gargajo), evitando que la muestra sea de saliva.
En ayunas.
FROTIS VAGINAL
> La paciente que no se debió aplicar óvulos, cremas ni tener relaciones sexuales en los últimos tres
días.
> No debe tener sangrado menstrual.
KOH DE UÑAS O PIEL
>
Lavarse con agua, jabón y secarse bien; no aplicarse ningún tipo de loción, crema, pomada ni
medicamento tres días antes.
Código
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Versión 3
IN-LAB-02
salud
Fecha Vigencia
INSTRUCTIVO PARA RECOLECCIÓN DE
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MUESTRAS POR PARTE DE ENFERMERÍA
Página
167
Documento
Controlado
INSTRUCTIVO PARA
RECOLECCIÓN
DE
MUESTRAS POR PARTE DE
ENFERMERÍA
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MUESTRAS POR PARTE DE ENFERMERIA
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168
Documento
Controlado
1. OBJETIVO
Establecer las recomendaciones generales para enfermería y asegurar una adecuada recolección de
muestras en pacientes hospitalizados y de observación.
2. ALCANCES Y RESPONSABLES
Este procedimiento inicia con la entrega del instructivo al jefe de hospitalización, continua con la explicación y
aclaración del procedimiento si se requiere del examen solicitado en la orden medica a enfermería y finaliza
con la recepción de la muestra en el laboratorio.
Auxiliar de enfermería es responsable de conocer y aplicar este instructivo para la adecuada recolección de la
muestra o las condiciones en que se debe presentar el paciente al examen. Además es responsable de aclarar
las dudas que tenga el paciente respecto al procedimiento y verificar que el paciente le haya comprendido
totalmente.
>
En algunos centros de atención, la bacteriologa tomará las muestras de hospitalización siempre y
cuando haya personal de laboratorio disponible para la toma de muestras de consulta externa
PARA TODOS LOS EXAMENES POR FAVOR INDICAR EL TIPO DE MEDICAMENTOS QUE ESTA
TOMANDO
QUIMICA SANGUINEA
Glicemia, Bun, Creatinina, Acido Úrico, Colesterol Total, Triglicéridos, Bilirrubina Total y directa,
ASTOS, PCR, RA test, Perfil Lipidico LDH, Serología
>
Tener un ayuno mínimo de 12 horas, en caso de urgencia cuando se requiera.
TEST DE HAMBURGER
>
>
>
>
>
Desocupar la vejiga y descartar esta muestra, a partir de este momento, contar tres horas y durante este
tiempo recolecte toda la orina. Nota: El tiempo de retención puede variar y ser indicado por el
medico
La ingesta de líquidos deberá restringirse durante el periodo de recogida en la medida que lo permita el
estado del paciente.
Tener cuidado especial en evitar la contaminación de la muestra con secreciones vaginales o heces.
Es aconsejable guardar la muestra a temperatura ambiente durante la recogida y después de ella.
Entregar la muestra en el Laboratorio lo más pronto posible
HEMATOLOGIA
Cuadro Hemático, Hemoclasificacion o Grupo sanguíneo, Reticulocitos, Plaquetas, Hemoparasitos, Velocidad
de Sedimentación Globular, Tiempo de Protrombina (PT), Tiempo de Tromboplastina (PTT), Tiempo de
coagulación, Tiempo de sangría, Prueba de embarazo, Beta HCG
>
No requiere ayuno.
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Versión 3
IN-LAB-02
salud
Fecha Vigencia
INSTRUCTIVO PARA RECOLECCIÓN DE
27/03/2011
MUESTRAS POR PARTE DE ENFERMERIA
Página
169
Documento
Controlado
DEPURACION CREATININA Y PROTEINURIA 24 horas
>
>
>
>
>
El día anterior a la recolección de orina, conseguir un recipiente plástico oscuro, con capacidad de
almacenar 4 litros. Lavarlo con agua de chorro y dejarlo secar.
Levantar al paciente a primera hora en la mañana y pasarlo orinar en el inodoro. Registrar la hora de
esta primera micción. Ejemplo: 5+00 a.m.
A partir de este momento recoger toda la orina emitida durante el día y la noche orinar siempre en un
recipiente limpio y trasvasarlo al galón teniendo cuidado de no derramar la orina. Guardar el galón en
la nevera o en un lugar fresco.
En la mañana siguiente a las 5+00 a.m. usted recogerá toda la orina de la primera micción y la pondrá
en el galón y se dirigirá al laboratorio junto con la muestra de sangre en ayunas.
Pesar e informar el dato a la persona que lo atiende o anotarlo directamente en la orden medica.
NOTA: En caso de derramar orina, o haber olvidado agregar alguna muestra al galón, comenzar de nuevo
el proceso de recolección.
PARCIAL DE ORINA
>
>
Recolectar la primera orina de la mañana (mitad del chorro) en un recipiente plástico nuevo, después
de haber realizado un aseo de los genitales con la ayuda de agua y jabón; Transportar al laboratorio
inmediatamente (menos de 2 horas). Informar si esta bajo tratamiento antibiótico.
En pacientes hospitalizados se recomienda la recolección de la muestra por medio del sondeo vesical
para evitar posibles contaminaciones. Realizada exclusivamente por el medico o enfermera
PARCIAL DE ORINA PEDIATRIA
>
>
>
Muestra por bolsa recolectora: usada en lactantes y niños pequeños que no controlan el esfínter.
Se debe realizar un buen aseo de la región perianal del niño o niña, colocar la bolsa y retirarla
inmediatamente el niño orine. Evitar que la bolsa permanezca por más de dos horas pegada, en ese
caso retirar y colocar una nueva bolsa. entregar la muestra rápidamente al laboratorio.
Aspiración suprapúbica: más confiable en neonatos y lactantes menores ya que la vejiga en esta
edad es un órgano intrabdominal en lugar de un órgano pélvico como en niños mayores y adultos.
Realizada exclusivamente por el medico.
Sondeo vesical: Es el menos usado ya que conlleva el riesgo del traumatismo uretral o introducción
de una infección secundaria en niños no infectados. . Realizada exclusivamente por el medico.
COPROANALISIS
(Coprológico, Coproscopico, Azucares reductores, Sangre oculta) y
COPROCULTIVO
>
Recolectar las heces directamente en el recipiente plástico, que no hayan estado en contacto con el
agua del sanitario. La muestra deberá ser entregada al laboratorio lo más pronto posible. La muestra no
debe estar contaminada con orina, aplicadores réctales, aceites o agua del baño.
Código
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Versión 3
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Fecha Vigencia
INSTRUCTIVO PARA RECOLECCIÓN DE
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MUESTRAS POR PARTE DE ENFERMERIA
>
>
Página
170
Documento
Controlado
Si el paciente ha tenido un estudio radiográfico con bario, deje transcurrir 10 días para recoger la
muestra de materia fecal.
Entregue la muestra en el laboratorio en un tiempo menor de 30 minutos, contado desde el momento de
la recogida, en caso de muestras liquidas.
Sangre oculta
>
Durante 3 días antes de la prueba no consumir vitamina C, alcohol o aspirina. Restringir la ingesta de
carnes rojas crudas o semicocidas .Informar si le se han practica estudios radiográficos con contraste y
de los medicamentos que se estén tomando,
Recolección de muestra de materia fecal para coprocultivo
> Recoja la muestra emitida espontáneamente, en un recipiente seco, limpio y estéril.
> Entregue la muestra en el laboratorio en un tiempo menor de 30 minutos, contado desde el momento de
la recogida, en caso de muestras liquidas.
BK EN ORINA SIEMPRE ES SERIADO
>
Recolectar la primera orina de la mañana completa (en un recipiente plástico grande, limpio y seco) por
micción espontánea después de haber realizado un aseo de los genitales con la ayuda de agua y jabón.
Transportar al laboratorio inmediatamente (menos de 2 horas).
BACILOSCOPIA
>
Realizarse aseo normal de la boca, no utilizar enjuague bucal. En un recipiente plástico de boca ancha
recolectar la muestra de esputo (flema, gargajo), evitando que la muestra sea de saliva. En ayunas.
FROTIS VAGINAL
>
>
La paciente que no se debió aplicar óvulos, cremas ni tener relaciones sexuales en los últimos tres días.
No debe tener sangrado menstrual.
KOH DE UÑAS O PIEL
> Lavarse con agua, jabón y secarse bien; no aplicarle ningún tipo de loción, crema, pomada ni
medicamento tres días antes.
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salud
MANUAL TRANSPORTE Y REMISIÓN
DE MUESTRAS
Versión 2
Código
MN-LAB-01
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
171
Documento
Controlado
MANUAL TRANSPORTE Y REMISIÓN
DE MUESTRAS
ESE Departamental Solución
salud
MANUAL TRANSPORTE Y REMISIÓN
DE MUESTRAS
Código
MN-LAB-01
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
172
Documento
Controlado
1. OBJETIVO
Proporcionar información para clasificar las sustancias infecciosas para su transporte y para garantizar su
embalaje/envasado seguro.
2. ALCANCE Y RESPONSABLES
Este procedimiento inicia desde la solicitud de atención de un paciente y termina con el envió o recepción de
las muestras en el laboratorio.
Todo el personal es responsable de seguir las directrices aquí consignadas.
3. GENERALIDADES
NO SE ACEPTARA BAJO NINGUNA CIRCUNSTACIA EL TRANSPORTE DE MUESTRAS EN JERINGAS O
ENVALADAS EN GUANTES.
El transporte de material infeccioso y potencialmente infeccioso está sometido a reglamentaciones nacionales
e internacionales estrictas. Esas reglamentaciones describen el uso apropiado de materiales de
embalaje/envasado, además de otros requisitos.
El personal de laboratorio debe enviar las sustancias infecciosas de acuerdo con las normas de transporte
aplicables, cuyo cumplimiento permitirá:
1. Reducir la probabilidad de que los embalajes/envases se estropeen y derramen su contenido, y con ello
2. Reducir el número de exposiciones que den lugar a posibles infecciones, y
3. Mejorar la eficiencia de la entrega de los envíos.
Reglamentación internacional en materia de transportes
La reglamentación internacional relativa al transporte de sustancias infecciosas por cualquier medio de
transporte se basa en las recomendaciones del Comité de Expertos en Transporte de Mercancías Peligrosas
de las Naciones Unidas (UNCETDG), un comité del Consejo Económico y Social de las Naciones Unidas. Las
recomendaciones de dicho comité se presentan en forma de «reglamentación modelo». La Reglamentación
Modelo de las Naciones Unidas queda reflejada en la legislación internacional por medio de los reglamentos
internacionales de transporte.
DEFINICIONES Y CLASIFICACIÓN
Sustancias infecciosas: Para los fines de su transporte, se entiende por sustancias infecciosas las
sustancias respecto de las cuales se sabe o se cree fundadamente que contienen agentes patógenos. Los
agentes patógenos son microorganismos (tales como bacterias, virus, rickettsias, parásitos y hongos) y otros
agentes tales como priones, que pueden causar enfermedades en los animales o en los seres humanos. Las
sustancias infecciosas se dividen en dos categorías.
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salud
MANUAL TRANSPORTE Y REMISIÓN
DE MUESTRAS
Código
MN-LAB-01
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
173
Documento
Controlado
Sustancia infecciosa, Categoría A
Una sustancia infecciosa que se transporta en una forma que, al exponerse a ella, es capaz de causar una
incapacidad permanente, poner en peligro la vida o constituir una enfermedad mortal para los seres humanos o
animales previamente sanos.
Las sustancias infecciosas que, cumpliendo estos criterios, causan enfermedades en seres humanos, se
asignarán al No. UN 2814. Las sustancias infecciosas que causan enfermedades sólo en animales se
asignarán al No. UN 2900.
La adscripción a los No. UN 2814 o 2900 se basará en los antecedentes médicos conocidos del paciente o del
animal del cual procede la sustancia, las condiciones endémicas locales, los síntomas del paciente o del
animal o el asesoramiento de un especialista sobre el estado individual del paciente o del animal.
Sustancia infecciosa, Categoría B
Una sustancia infecciosa que no cumple con los criterios de la categoría A. Las sustancias infecciosas de la
categoría B se asignarán al No. UN 3373, y su designación es “muestras para diagnóstico” ó “muestras
clínicas”.
Material exento
Considerando el bajo riesgo de las sustancias biológicas siguientes, las mismas son exentas de los requisitos y
regulaciones que aplican para las sustancias infecciosas:
> Sustancias que no contengan sustancias infecciosas o que no es probable que causen enfermedades en
seres humanos o animales.
> Sustancias que contengan microorganismos que no son patógenos para los seres humanos o animales.
> Sustancias que se encuentren en una forma en la que cualesquier patógenos hayan sido neutralizados o
inactivados de tal modo que ya no representen un riesgo para la salud.
> Muestras medioambientales (incluidas las muestras de alimentos y de agua) que no se considera que
representen un riesgo significativo de infección.
> Muestras de sangre seca sobre papel filtro y muestras fecales para el diagnóstico sistemático de sangre
oculta.
> Desechos clínicos o médicos descontaminados.
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salud
MANUAL TRANSPORTE Y REMISIÓN
DE MUESTRAS
Código
MN-LAB-01
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
174
Documento
Controlado
Refrigerantes
Pueden utilizarse refrigerantes para estabilizar las sustancias infecciosas de las categorías A y B durante el
tránsito.
Las pilas congeladas deberán colocarse fuera del recipiente secundario se colocará en un envase a prueba de
fugas (recipientes tiras de orina); el embalaje exterior o el sobre embalaje deberán también ser a prueba de
fugas. No deberá colocarse pilas congeladas en el interior de los recipientes primario o secundario, debido al
riesgo de explosión. Puede utilizarse un embalaje/envase termo aislado especialmente diseñado como
recipiente para pilas congeladas (nevera de icopor).
TRANSPORTE DE LAS MUESTRAS
El sistema básico de embalaje/envasado triple
Este sistema de embalaje/envasado, que deberá utilizarse para todas las sustancias infecciosas, comprende
las tres capas siguientes.
Recipiente primario. Un recipiente impermeable y estanco que contiene la muestra. El recipiente se
envuelve en material absorbente suficiente para absorber todo el fluido en caso de rotura (tubos de muestra).
Embalaje/envase exterior. Los embalajes/envases primarios se colocan en embalajes/envases exteriores
de expedición con un material amortiguador adecuado (neveras de icopor). Los embalajes/envases exteriores
protegen el contenido de los elementos exteriores, como daños físicos, mientras se encuentra en tránsito.
Ninguna de las caras del embalaje/envase exterior tendrá dimensiones inferiores a 10 x 10 cm.
4. PROCEDIMIENTO DE CONSERVACION, REMISIÓN y TRANSPORTE DE MUESTRAS
Condiciones generales de las muestras
> Las muestras de suero y plasma deben estar debidamente centrifugadas y empacadas en tubos plásticos
con tapón de caucho o en tubo primario completamente sellado, refrigeradas o congeladas según el caso.
>
Las muestras de sangre total nunca deben ser congeladas.
>
Las muestras de orina deberán ser remitidas en tubos secos tapa roja,
ESE Departamental Solución
salud
MANUAL TRANSPORTE Y REMISIÓN
DE MUESTRAS
Código
MN-LAB-01
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
175
Documento
Controlado
Muestras remitidas a Laboratorio Externo (Laboratorio de Salud Publica)
1. Recibir Orden medica.
2. Verificar que los exámenes a remitir estén contemplados en el Plan Obligatorio de Salud.
3. Tomar muestra según
4. Centrifugar la muestra según corresponda.
5. Registrar los exámenes a remitir en FR-LAB-100 y en los formatos del Laboratorio de Salud Publica
Departamental.
6. Guardar original de la orden medica en carpeta destinada para tal fin.
7. Marcar un tubo plástico con los siguientes datos:
>
Nombre Completo del paciente.
>
Historia Clínica
>
Edad
>
Examen Solicitado
8. Separar la muestra a remitir (Suero o plasma) en cantidad suficiente y embalar en el tubo plástico.
9. Guardar tubo en nevera (Congelador).
10. Al momento de entregar las muestras verificar temperatura de la nevera de transporte y registrar en FRLAB-102. Realizar ajustes de Temperatura en caso de ser necesario.
11. Entregar las muestras al encargado de recepción del Laboratorio de Salud Publica
12. Guardar copia del formato de remisión de la muestra al Laboratorio de Salud Publica.
Muestras para VIH remitidas a Laboratorio Externo (Laboratorio de Salud Publica)
1. Recibir Orden medica
2. Verificar que la orden este acompañada del Pre Test.
3. Tomar muestra
4. Centrifugar la muestra según corresponda.
5. Registrar los exámenes a remitir en FR-LAB-101”Referencia y contrareferencia de muestras para
analisis de VIH para maternas del regimen vinculado.
6. Remisión de muestras para ELISA. para VIH y en los formatos del Laboratorio de Salud Pública
Departamental
7. Guardar original de la orden medica en carpeta destinada para tal fin.
ESE Departamental Solución
salud
MANUAL TRANSPORTE Y REMISIÓN
DE MUESTRAS
Código
MN-LAB-01
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
176
Documento
Controlado
8. Marcar un tubo plástico con los siguientes datos:
>
Nombre Completo del paciente.
>
Historia Clínica
>
Edad
>
Examen Solicitado
9. Separar la muestra a remitir (Suero o plasma) en cantidad suficiente y embalar en el tubo plástico.
10. Guardar tubo en nevera (Congelador).
11. Al momento de entregar las muestras verificar temperatura de la nevera de transporte y registrar en FRLAB-102. Realizar ajustes de Temperatura en caso de ser necesario.
12. Entregar las muestras al encargado de recepción del Laboratorio de Salud Publica
13. Guardar copia del formato de remisión de la muestra al Laboratorio de Salud Publica.
14. Realizar seguimiento, respecto al reporte de la muestra.
15. Garantizar la confidencialidad de los resultados
TRANSPORTE INTRAHOSPITALARIO DE MUESTRAS
Para transportar las muestras dentro del centro de atencion hacia el Laboratorio deben de seguirse los
siguientes pasos:
1. Las muestras deben estar Correctamente rotuladas antes de ingresarlas a la nevera de transporte.
2. Los tubos y frascos deben estar correctamente tapados.
3. Las muestras deberán transportarse en tubos tapa rosca. Las muestras deben transportarse lo más
pronto posible después de tomadas.
4. Los tubos de muestra se deberán colocar dentro de recipiente de paredes rígidas y tapado.
ESE Departamental Solución
salud
MANUAL TRANSPORTE Y REMISIÓN
DE MUESTRAS
5.
Código
MN-LAB-01
Versión 2
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
177
Documento
Controlado
REGISTROS DE CALIDAD
NOMBRE REGISTRO
IDENTIFICACIÓN DE
LA CAR PETA
CÓDIGO
Registro de
RESPONSABLE DE
ALMACENAMIENTO
DESTINO
FINAL
Registro de
temperatura
FR - LAB -
temperatura
Secretaria del
nevera de
102
nevera de
laboratorio
transporte
Trimestral
Destrucció n
transporte
Lo
Libro de
Remisión de
Muestra para
ELISA pa
TIEMPO DE
RETENCIÓN
ra VIH
-
FR LAB
-
101
muestra para
Remitir
Laboratorio de
Referencia
Bacterióloga de
la sección
ELISA para VIH
Libro de
Exámenes a
Remision de
-
100
-
Exámenes a
Remitir
Laboratorio de
Refe rencia
para la
Archivo
Historia
Clínica
Libro de
FR LAB
estipulado
Lo
Bacterióloga de
la sección
estipulado
para la
Archivo
Historia
Clínica
6. BIBLIOGRAFIA

Manual de Bioseguridad en el Laboratorio, 3 edición, Organización Mundial de la Salud, OMS. 2005
 Curso de gestión de calidad para laboratorios, Módulo 11: Bioseguridad, Organización Panamericana de
la salud. 2005
 Guía sobre la reglamentación relativa al transporte de sustancias infecciosas, Organización Mundial de la
Salud OMS, 2005
ESE Departamental Solución
salud
MANUAL TRANSPORTE Y REMISIÓN
DE MUESTRAS
Versión 2
Código
MN-LAB-01
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
178
Documento
Controlado
ESE Departamental Solución
salud
MANUAL DE TOMA DE MUESTRAS
DE TSH NEONATAL
Versión 2
Código
MN-LAB-02
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
179
Documento
Controlado
MANUAL DE TOMA DE MUESTRAS
DE TSH NEONATAL
Código
ESE Departamental Solución
Versión 1
MN-LAB-02
salud
Fecha Vigencia
MANUAL DE TOMA DE MUESTRAS
27/03/2011
DE TSH NEONATAL
Página
180
Documento
Controlado
OBJETIVO
Detectar oportunamente los recién nacidos con Hipotiroidismo Congénito, mediante el tamizaje neonatal,
brindando a los niños la oportunidad de un tratamiento oportuno con el fin de disminuir morbilidad y mortalidad
por esta causa, a los usuarios del centro de atención.
ALCANCES
Aplica para los usuarios que solicitan el servicio en el centro de atención.
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la Bacterióloga y/o auxiliar de enfermería, del laboratorio clínico.
GENERALIDADES
El Hipotiroidismo Congénito es una enfermedad caracterizada por la incapacidad transitoria o permanente de
producirse cantidades adecuadas de Hormona Tiroidea. Esta hormona regula el funcionamiento de los órganos
del cuerpo y es primordial para el desarrollo del cerebro, el crecimiento muscular, óseo, controlar el
metabolismo y la actividad corporal.
Las alteraciones por la no producción adecuada de la hormona, varía de acuerdo al grado de deficiencia
tiroidea. Con el tiempo ocasiona retraso mental, incapacidades físicas, disminución del crecimiento,
alteraciones en la circulación periférica, sistema esquelético entre otros, siendo irreversibles si no se
diagnóstica y trata desde los primeros días de vida.
La mayoría de los niños con Hipotiroidismo Congénito son asintomáticos inicialmente y unos pocos presentan
signos de hipotiroidismo en las primeras semanas. Los lactantes hipotiroideos presentan un aspecto
característico: cara hinchada, mirada triste, la lengua sobresale de la boca por lo que la mantiene abierta.
Los efectos más marcados son usualmente evidentes en:
Piel: Se observa un tinte ictérico que persiste más tiempo que lo usual. Con el tiempo se observa mixedema en
el tejido conectivo y en la lengua que llega a ser protuberante dificultando la alimentación.
Cabello: poco, seco y débil.
Apetito y digestión: el bebé no se interesa por el pecho materno y con dificultad permanece despierto. Tienen
problemas de succión y suelen ahogarse con frecuencia. Puede tener severo estreñimiento y distensión
abdominal. Se presenta frecuentemente hernia umbilical.
Fontanela: Posterior mayor de 5 mm.
Crecimiento: al nacer pueden ser grandes, pero si no se tratan el crecimiento es pobre y con poca ganancia del
peso.
Circulación: Puede presentarse bradicardia, las extremidades se palpan frías y la piel muestra signos de una
pobre circulación.
Código
ESE Departamental Solución
Versión 1
MN-LAB-02
salud
Fecha Vigencia
MANUAL DE TOMA DE MUESTRAS
27/03/2011
DE TSH NEONATAL
Página
181
Documento
Controlado
Desarrollo: Hay marcada hipotonía muscular y letargia, no lloran mucho, duermen en exceso, son perezosos e
inactivos. Los rasgos cretinoides, el retardo en el crecimiento y desarrollo psicomotor se evidencian
progresivamente luego de varios meses de vida.
ETIOLOGIA, INCIDENCIA Y FACTORES DE RIESGO
La causa más frecuente del Hipotiroidismo Congénito está relacionado con el desarrollo anormal de la glándula
tiroides por estar muy pequeña, por dishormonogenesis, estar en un sitio inadecuado, faltar por completo,
destrucción del tejido, falta de estimulación o síntesis defectuosa o anormal de la hormona tiroidea.
Hay factores ambientales asociados con la deprivación del yodo materno nutricional y también por
medicamentos o sustancias antitiroideas.
Esta es una enfermedad relativamente común, La incidencia de los países en vía de desarrollo en población
blanca es de 1: 2.500 y de 1: 3.500 en población negra. De acuerdo con las revisiones estadísticas realizadas
por varias Universidades del país, se reporta una incidencia para nuestro medio de 1: 2.550.
Debe tenerse en cuenta que todo niño está en riesgo, independientemente de su sexo, raza o status
socioeconómico.
El tamizaje neonatal inicia con una buena toma de muestra y finaliza con la confirmación de un caso, para el
inicio del tratamiento oportuno y el seguimiento permanente.
DEFINICION DE CASO

Hipotiroidismo Congénito
Se presenta el momento de nacimiento por déficit de la función de la tiroides de forma permanente o transitoria.

Hipotiroidismo Transitorio
La hipotiroxinemia transitoria neonatal (T4 baja-TSH normal), aparece en el 50% de los niños pretérmino
menores de 37 semanas y en el 25% de todos los recién nacidos pretérmino, la incidencia varía
geográficamente con relación a la ingesta del yodo.
Los bebes de madres que toman medicamentos antitiroideos, deben ser monitoreados cuidadosamente, para
detectar cualquier evidencia de hipotiroidismo transitorio inducido por medicamentos.
El hipotiroidismo congénito autoinmune transitorio se debe al paso transplacentario de anticuerpos
antitiroideos maternos bloqueantes.
Los niños de bajo peso y prematuros no importa el resultado del tamizaje neonatal deben ser ubicados y al mes
de nacidos se debe tomar TSH y T4 en suero.
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
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Caso Probable
Recién nacido con valores de TSH superiores al valor definido como punto de corte normal. Para el país de
acuerdo a estudios en diversas regiones, se recomienda como punto de corte 20mUI/L de sangre de cordón y
cuando se toma el talón en los casos justificados, el punto de corte es de 15mUI/L de sangre. Se debe localizar
el paciente entre la 2 y 4 semana de vida para realizar TSH en suero.

Caso Confirmado
Caso probable de confirmación por laboratorio con T4 inferior al valor definido como punto de corte normal en
una nueva muestra. El punto de corte normal es 42.9 mg/L en suero. Los niños a los que el TSH neonatal ha
dado por encima de la línea de corte deben ser ubicados en un término no mayor de 3 días para realizar el T4 en
suero.
CRITERIOS PARA DEFINICION DE CASOS
DEFINICIÓN
CRITERIO
Todos los recién nacidos
TSH normal, es decir < de 20 mUI/L en sangre de
cordón.
Caso Probable
TSH> de 20 mUI/L en sangre cordón o 15 mUI/L en
sangre de talón
Caso probable retamizado
Caso probable que se estudia con T4
Caso confirmado
T4 < 42.9 mg/L en suero
Caso positivo verdadero
Caso probable que al retamizar se confirma
Caso positivo falso
Caso probable que al retamizar es normal o se
descarta
Caso negativo verdadero
Caso negativo que no desarrolla la enfermedad
Caso negativo falso
Caso negativo que desarrolla la
enfermedad.
MUESTRA PARA EL TAMIZAJE DE HIPOTIROIDISMO CONGÉNITO
Caso
Caso ne gativo
La población objeto del programa son todos los recién nacidos de las maternas atendidas en la sala de partos, a
quienes se les tomará la muestra del cordón antes de su egreso, con el fin de ampliar la cobertura. La muestra
debe ser tomada en la sala de partos al nacimiento.
La toma de la muestra en papel filtro simplifica el traslado desde lugares distantes hasta el laboratorio del
procesamiento, con requerimientos sencillos, además de disminuirse los riesgos biológicos, facilidad en el
almacenamiento, estabilidad y facilidad para la toma de la muestra.
Al realizar la toma de la muestra se debe informar a los padres, en un lenguaje sencillo, claro y especifico, el
objetivo de la prueba, el procedimiento y la importancia de la información precisa del resultado del examen y el
procedimiento de que los padres reclamen siempre el resultado.
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DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
SITIO TOMA TSH NEONATAL
TOMA DE MUESTRAS PARA TSH EN RECIEN NACIDOS
TIEMPO DE TOMA SEGÚN TIEMPO
DE NACIMIENTO
LUGAR TOMA DE LA MUESTRA
Al momento del nacimiento
CORDON UMBILICAL
Hasta 24 horas
TALON
24-48 Horas
No se debe tomar muestra po
generalmente shock hormonal
3 dias - 7 días
TALON
7 días - 15 días
SUERO
r presentarse
NOTA. La muestra debe tomarse AL MOMENTO DEL NACIMIENTO. Solo por
contingencia se tomará fuera de éste tiempo y enviarse lo más pronto posible pues su
resultado debe estar listo a más tardar a los 30 días del nacimiento para iniciar
tratamiento oportuno
La muestra de talón debe ser tomada por médico
El anterior cuadro debe estar publicado en los servicios de parto de los centros de atención
MATERIAL PARA LA TOMA DE MUESTRA
>
Papel filtro estandarizado
La recolección de muestra de sangre seca, es aplicable a cualquier método cuantitativo, el papel debe reunir
características específicas, que garantizan la capacidad de absorción, homogeneidad y el volumen de
retención. El papel se fija a la ficha de registro, debe contener como mínimo cuatro círculos preimpresos, sobre
los cuales se coloca la muestra.
Las áreas dentro de los círculos del papel filtro no se deben tocar en ningún momento, ni siquiera con los
guantes, porque se contaminan con la grasa de la piel y el talco de los guantes y se puede alterar los resultados.
>
Ficha de registro de datos
Esta ficha lleva el papel estandarizado para la toma de muestra. En ella se consignan los datos
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generales:
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
Número consecutivo de ficha de tamizaje (preimpreso): Nº _______
Institución
Nombre de la madre
Dirección
Teléfono
Fecha de nacimiento
Peso al Nacer
Genero (sexo)
Tipo de muestra (cordón o talón)
Fecha de la toma de la muestra
La información de la ficha debe llenarse a mano antes de hacer la toma de muestra, Sobre una superficie limpia
y seca, con letra clara y tinta indeleble – lapicero.
>
Muestra de Sangre de Cordón
Este es el tipo de muestra de elección para el programa de tamizaje neonatal para Hipotiroidismo
Congénito, establecido por la reglamentación nacional, con el fin de dar una cobertura del 100% en los
recién nacidos tamizados. El procedimiento a seguir es el siguiente:
>
Material y equipo
>
Procedimiento
Solicitar al Médico que atiende el parto que en la porción umbilical adherido al niño deje una longitud de
aproximadamente 25 cm al cortarlo y separarlo de la porción placentaria.
La toma de la muestra debe realizarse durante los primeros 20 minutos luego del nacimiento.
El médico o enfermera responsable de dar los cuidados inmediatos, coloca al recién nacido en la mesa
pediátrica de la sala de expulsión o en quirófano y procede a ligar y cortar el cordón umbilical.
Enseguida realizar un asa con el cordón, pinzándolo nuevamente, de tres a cinco centímetros por arriba de la
ligadura. Luego cortar el cordón entre la ligadura y la porción pinzada.
Nunca limpie el cordón con isodine, alcohol yodado o ningún producto que contenga yodo. Use solución salina
y una gasa para este fin. Localizar una vena de la parte media del cordón umbilical. Se recomienda utilizar una
gasa en el momento de tomar la muestra para fijar el cordón. Extraer de 0.5 a 1 ml de sangre, desmontar la
aguja y desecharla.
Tomar la jeringa estéril empuñada con una mano, palma hacia arriba y pulgar en el émbolo. El dedo meñique y
anular deben sujetar el cuerpo de la misma y el medio e índice el émbolo?. Con la otra mano acercar el papel
filtro a la jeringa hasta que ésta última quede sobre los círculos, a una distancia aproximada de 3 mm, presionar
en forma ligera con el pulgar y depositar una gota en cada círculo de la tarjeta que debe estar en forma
horizontal y suspendida.
Es importante que las gotas de sangre impregnen la parte posterior de la tarjeta de papel del filtro y una vez
llenos los círculos, dejar secar las muestras a temperatura ambiente por tres horas. No se deben dejar cerca de
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sitios que emitan calor, no exponer a luz solar directa (las proteínas se desnaturalizan y se fijan al papel filtro) no
amontonar, no permitir que se toque unas a otras para evitar la contaminación.
Durante el procedimiento de toma de muestra deben seguirse las precauciones universales para manipulación
de material de riesgo biológico.
La persona que toma la muestra validará en ese momento la calidad de la muestra. Debe tomarse como
mínimo 3 círculos con calidad óptima. En caso contrario, se deberá repetir la muestra. Se debe registrar en el
libro de toma de muestras. Para las muestras de nacimientos por cesárea, el procedimiento es el mismo.
Cuando las muestras estén completamente secas, guardar las tarjetas (nunca frente a frente) para garantizar
que no coincidan las muestras de sangre de una con la otra o sepárelas una de otra utilizando una hoja de papel
blanco, seco, dentro de un sobre de papel en un lugar seco y fresco alejado de la humedad hasta el envío.
En los sitios donde la temperatura es muy alta (superior 15 – 22 ºC), refrigerar de 2-8 ºC, protegiéndolo de la
humedad, colocándolas en bolsas o sobre de papel hermético hasta el momento del envío al laboratorio de
procesamiento.
Los filtros deben ser entregados inmediatamente al Bacteriologo para verificación de su calidad y ser enviado lo
mas pronto posible.
Si la muestra tomada es inadecuada se debe registrar en el libro, el número de la tarjeta y registrar
específicamente que la calidad de la muestra fue inadecuada. Se deberá tomar nueva muestra en talón antes
del egreso o citar al séptimo día de nacido.
>
Muestra de sangre de Talón
La muestra debe tomarse antes del egreso (Antes de 24 horas) siguientes al nacimiento. Tenga en cuenta los
siguientes aspectos:
>
Material y equipo
Lanceta estéril, guantes estériles, alcohol al 70 % o solución salina, gasa o algodón, ficha de identificación con
papel filtro, Libro de control de toma de muestras y guardián para desecho de material corto – punzante.
>
Procedimiento
Los sitios ideales y recomendados internacionalmente son las áreas laterales mediales de la superficie plantar
del talón del neonato. La punción no se debe realizar en sitios previamente puncionados, áreas edematosas o
inflamadas ni el área central del arco del pie, porque podrían versen afectados nervios, tendones o cartílagos.
Los dedos de las manos son demasiado pequeños y la cercanía al hueso hace peligrosa la punción.
El niño estará cargado por el acompañante con las piernas más bajas que el corazón. Esta maniobra
aumentará la presión venosa y mejorará el flujo sanguíneo. Frotar vigorosamente el sitio de punción con gasa o
algodón y alcohol en agua o solución salina (nunca utilizar soluciones yodadas). Retirar el exceso con una gasa
estéril y dejar secar el pie al aire (los residuos de alcohol pueden contaminar la muestra y alterar los resultados
por hemólisis o dilución de la misma.
Realizar la punción con un solo movimiento continuo con lanceta estéril de 2 a 2.4mm de profundidad para no
lastimar el hueso del bebe. Eliminar la primera gota de sangre limpiando con una gasa o algodón seco, pues
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usualmente ésta contiene líquido de los tejidos que invalidan la muestra. Esta muestra debe ser tomada por el
personal médico idóneo para evitar complicaciones.
Dejar formar la segunda gota de sangre grande presionando y soltando suavemente el sitio de punción. Nunca
exprima esta área, para no causar hemólisis o contaminar con secreciones tisulares.
Luego de formada la gota grande, tocar por capilaridad el papel filtro, lo más cerca posible del centro del círculo,
hasta que absorba y cubra el área. No presionar el papel filtro contra el sitio de punción. Sea Paciente, en
algunos bebes el proceso es lento. La gota debe ser lo suficientemente grande para llenar el círculo en un solo
paso.
No se debe aplicar más de una gota en el mismo círculo porque puede saturarse o producir concentraciones de
sangre no uniformes. La sangre debe aplicarse en un solo lado del papel y examinarse por ambos lados para
verificar que la sangre penetró y saturó el papel.
Si el flujo de sangre disminuyó o aparecen pequeños coágulos y los círculos no pueden llenarse, repetir el
procedimiento utilizando un sitio de punción diferente. Asegúrese de utilizar, lanceta, gasa y alcohol
nuevo.
Durante el procedimiento de toma de muestra deben seguirse las precauciones universales para manipulación
de material de riesgo biológico.
Luego de tomar la muestra el pie del bebe debe elevarse sobre el cuerpo y con una gasa presionar el sitio de
punción hasta que deje de sangrar. No se recomienda vendar la piel puncionada del recién nacido. Las
lancetas y elementos utilizados se desechan en los recipientes de seguridad.
Muestras no Validas y sus causas
La verificación de la calidad de la muestra la llevará a cabo el bacteriologo de cada centro
Los filtros deben ser entregados inmediatamente al bacteriologo para verificación de su calidad y ser
enviados lo mas pronto posible
TIPO DE MUESTRA
Cantidad insuficiente
q
q
Muestra rayad
a o
desgastada
Muestra no había
secado antes del
empaque
Muestra
sobresaturada
Muestra diluida,
desteñida o
contaminada.
q
q
Se empaco antes de secar completamente, el tiempo
varía de acuerdo a las condiciones climáticas.
q
Se aplicó exceso de sangre al papel filtro
Se aplicó sangre a ambos lados del papel
Se apretó o exprimió la zona del área de punción.
Antes o después de la obtención de la muestra el papel
filtro se puso en contacto con la mano, sustancias como
alcohol, soluc iones antisépticas, agua, etc.
Las manchas de sangre se expusieron a calor directo.
No se secó el alcohol del área antes de la punción
El papel filtro entró en contacto con alcohol
La muestra no se seco correctamente
El círculo entró en contacto con gotas de sangre más
de una vez
Se aplico sangre a ambos lados del papel
q
q
q
q
Muestras con anillo
de suero
q
q
q
Presenci a de
coágulos o capas
sucesivas
CAUSA
Se quito el papel filtro antes que la sangre llenara por
completo el círculo o antes que se absorbiera hasta el
lado posterior.
Antes o después de la obtención de la muestra se tocó
el papel filtro con las manos.
Acción mecánica sobre la misma
q
q
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LIBRO DE REGISTRO DE TOMA Y ENVÍO DE MUESTRA
En este se consigna toda la información de las muestras par tamizaje de hipotiroidismo congénito en la sala de
partos.
EMPAQUE
Las muestras no deben ser empacadas en bolsas plásticas de ninguna clase, porque la perdida de intercambio
de aire en el ambiente interno de la bolsa genera calor y humedad que pueden dañar la calidad de la muestra, o
desprender compuestos químicos de la bolsas que pueden interferir con los resultados.
Las tarjetas con las muestras en el papel filtro deben llevar su papel de cubierta, se cierra y sella en un sobre
resistente, permeable al aire y resistente al agua. El sobre debe ser marcado con todos los datos antes de
colocar las muestras en su interior. Deberá colocarse con letra clara el remitente, destinatario y la frase
material biológico seco con bajo riesgo biológico.
SISTEMA DE REFERENCIA Y CONTRAREFERENCIA
La red de tamizaje neonatal se conforma por los laboratorios públicos y privados que realizan la prueba, el
Instituto Nacional de Salud, para propósitos de referencia y contrareferencia y para el flujo de la información de
interés epidemiológico.
La ESE Solución Salud adoptó el formato FR-PYP.028 para realizar seguimiento a la referencia y
contrareferencia de los TSH.
Dicha planilla debe ser diligenciada al remitir las muestras de TSH a cada EPS. Se llevará una planilla por EPS
diligenciando TODAS las casillas incluida obviamente la fecha de envío para realizar seguimiento a la fecha de
reporte del resultado.
En cada centro de atención, los bacteriólogos serán los encargados de realizar el control de referencia y
contrareferencia. A estos profesionales se les hará llegar el filtro junto a la debida documentación para su
remisión.
Los representantes de las EPS deben ser avisados para que se acerquen a recoger las muestras.
La falta de oportunidad en reporte de TSH por parte de las EPS debe ser reportada al director del centro y
posteriormente al nivel central para su gestión.
REGISTROS DE CALIDAD

Registro de toma y envío de TSH neonatal.
. FR- PYP- 028
NORMATIVIDAD
Resolución No 412 de 2000.

BIBLIOGRAFIA
·
·
·
·
·
Resolución No 412 de 2000, por la cual se establecen las actividades, procedimientos e intervenciones
de demanda inducida y obligatorio cumplimiento y se adoptan las normas técnicas y guías de atención
para el desarrollo de las acciones de protección específica y detección temprana y la atención de
enfermedades de interés en salud pública.
Tamizaje neonatal de Hipotiroidismo Congénito. Instituto Nacional de Salud, 2004.
Manual de Normas Técnicas y administrativas, departamento nacional de Promoción y Mantenimiento
de la salud. ISS,2000
Manual para la toma y transporte de muestras. I.N.S. 1999.
Manual de Tamizaje para hipotiroidismo Congénito. Laboratorio Clínico Central. Ibagué.
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MUESTRAS DE LABORATORIO CLINICO
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MUESTRAS DE LABORATORIO CLINICO
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MUESTRAS DE LABORATORIO CLINICO
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NORMAS ESPECÍFICAS DE BIOSEGURIDAD PARA TOMA DE MUESTRAS DE LABORATORIO CLÍNICO
El Riesgo de infección por el VIH y el VHB en la toma de muestras de laboratorio clínico radica principalmente
en la contaminación de las manos y de las mucosas nasal
>
Trate todos los pacientes y el material biológico como potencialmente infectantes.
>
Mantenga el sitio de trabajo en constante orden y aseo.
>
Utilice en forma sistemática guantes de látex para la toma de la muestra y en todo procedimiento que
implique la manipulación de material biológico. Realice el cambio entre paciente.
>
Absténgase de tocar con las manos con guantes puestos cualquier parte del cuerpo y de manipular
objetos diferentes requeridos.
>
Utilizar batas preferiblemente blancas y de manga larga.
>
Evite deambular en áreas diferentes a las de trabajo con elementos de protección personal o material
biológico.
>
Todo personal de la toma de muestras esta en alto riesgo de infectarse con el virus de la hepatitis B por
lo tanto requiere esquema de inmunización.
>
Mantenga los elementos de protección personal en un lugar seguro y en óptimas condiciones
higiénicas.
>
No reutilice material contaminado como agujas, jeringas, o lancetas.
>
Maneje con estricta precaución el material corto punzante y dispóngalo o deséchelo en guardianes de
seguridad para facilitar el transporte y el destino final.
>
No desacople manualmente la aguja de la jeringa o del porta tubo cuando se va a desechar, utilice el
guardián de seguridad.
>
No reinserte la aguja en su protector una vez la haya utilizado.
>
En caso de derrame o contaminación accidental de sangre u otros líquidos sobre la superficie de
trabajo piso o pared se debe aplicar sobre estas hipoclorito al 0.5% y de deja actuar esta solución durante 30
minutos posteriormente se debe realizar otra limpieza con hipoclorito a la misma concentración y luego lavar
con agua y jabón. El personal encargado de realizar este procedimiento debe utilizar guantes mascarilla y bata
de laboratorio.
>
Utilice permanentemente en el área de trabajo los elementos de protección personal necesarios:
protectores oculares, mascarilla, bata plástica y guantes. Las batas deben manejarse como material
contaminado.
>
Lavado de manos, es la forma más eficaz de prevenir la infección cruzada entre pacientes, personal
hospitalario y visitantes. Se realiza con el fin de reducir la flora normal y remover la flora transitoria para
disminuir la diseminación de microorganismos infecciosos.
>
La aplicación de las normas de precaución universal con todos los pacientes, elimina la necesidad de
etiquetas especiales sobre algunas muestras, ya que todas las sangres y líquidos orgánicos de todos los
pacientes deben considerarse como potencialmente infecciosas. De igual manera la bioseguridad debe hacer
parte de la rutina de la toma de muestras de laboratorio y no de situaciones especiales.
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MUESTRAS DE LABORATORIO CLINICO
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190
Documento
Controlado
>
En el caso de enviar muestras fuera del laboratorio se debe empacar el tubo en otro recipiente que sea
resistente de tal manera que en caso de quebrarse el tubo con la muestra; el mensajero o la persona
implicada no tenga riesgo de contaminarse.
>
No se permitirá comer, beber, fumar y o almacenar comidas u otros elementos personales, dentro de
las áreas de trabajo.
>
La ropa protectora de las áreas (batas) nunca debe ser usada fuera del área de trabajo y si se quita
debe de ser desechada automáticamente en una bolsa de material contaminado.
>
>
Usar bata de manga larga, dentro del laboratorio, la cual se colocara al momento de entrar en este y se
quitara antes de abandonar este lugar.
Usar guantes de buena calidad para todo manejo de material biológico, o donde exista riesgo potencial
de contaminación o exposición a fluidos corporales. Cambiarse y desechar guantes una vez se han
contaminado, lavarse las manos y ponerse guantes limpios.
>
>
No frotarse los ojos u otras superficies corporales durante el uso de los guantes.
Una vez terminada la jornada lavar manos y desechar los guantes.
SITUACIONES DE EXPOSICION EN EL PERSONAL DE TOMA
DE MUESTRAS DE LABORATORIO CLINICO
TAREA
Manejo de jeringas, agujas y
material cortopunzante
Manejo de frascos, ampollas y
otros recipientes que contengan
sangre o fluidos corporales.
Manipulación de muestras y
transporte de materiales.
SITUACIONES DE EXPOSICION
Inoculación accidental de sangre u otros
fluidos corporales.
Desperfectos o rupturas en los
recipientes que pueden generar
contacto accidental con sangre u otros
fluídos corporales.
Contacto con sangre, fluídos corporales
y materiales potencialmente infecciosos,
por salpicaduras, aerosoles o derrames.
Chuzones, cortadas, y accidentes por
Descarte de equipos y materiales. descargue inapropiado de jeringas,
agujas y material cortopunzante.
Descarte demuestras.
Contacto con sangre o fluídos
corporales por salpicaduras.
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MANUAL DE BIOSEGURIDAD PARA
LABORATORIO CLINICO
Versión 2
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Página
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ESE Departamental Solución
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LABORATORIO CLINICO
Versión 2
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Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
192
Documento
Controlado
NORMAS ESPECÍFICAS DE BIOSEGURIDAD PARA LABORATORIO CLÍNICO
El Riesgo de infección por el VIH y el VHB en el laboratorio radica principalmente en la contaminación de las
manos y de las mucosas nasal, bucal y ocular, por sangre y otros compuestos orgánicos infectados.
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
Utilice permanentemente en el área de trabajo los elementos de protección personal necesarios:
protectores oculares, mascarilla, bata plástica y guantes. Las batas deben manejarse como material
contaminado.
Realice los procedimientos empleando las técnicas correctas para minimizar el riesgo de aerosoles,
gotitas, salpicaduras o derrames. Es fundamental el empleo de centrífugas provistas de carcazas.
Use pipetas mecánicas para evitar cualquier riesgo de contaminación oral. La ESE Departamental
“Solución Salud” prohíbe al personal profesional de bacteriología pipetear líquidos con la boca es una
práctica inadecuada y altamente riesgosa.
Evite insuflar aire en un líquido que contenga agentes infecciosos.
Absténgase de mezclar el material infeccioso aspirando e insuflando alternativamente a través de una
pipeta.
No se debe expulsar a la fuerza material infeccioso en una pipeta.
Las pipetas, cánulas, tubos contaminados y demás elementos de trabajo deben someterse a procesos
de desinfección, desgerminación y esterilización en autoclave; igual tratamiento deberá darse a las
cánulas, tubos y demás elementos de trabajo.
A los tubos de ensayo con sangre en coágulos, se les debe colocar hipoclorito de sodio a 5000 ppm
durante 30 minutos, taparlos y una vez desechado este contenido, proceder a la desgerminación y
esterilización mediante calor húmero o se copara su posterior reutilización.
Los demás fluidos orgánicos deben tratarse mediante desinfección con germicidas químicos hipoclorito- o si es posible someter a esterilización que es el método ideal.
Las muestras de líquidos orgánicos, flujos, cultivos, entre otros, deben someterse al proceso de
esterilización en una autoclave destinado exclusivamente a la esterilización o neutralización de material
contaminado.
Los materiales contaminados que se vayan a esterilizar o a incinerar fuera del laboratorio, deben
introducirse en recipientes resistentes, que se cerrarán antes de sacarlos del laboratorio.
Es política de la ESE Departamental “Solución Salud” que en forma permanente se deben conservar las
puertas del laboratorio cerradas, evitar el ingreso de personas ajenas al área; si ello ocurre éstas deben
ser informadas sobre los posibles riesgos y deberán cumplir con las normas exigidas dentro del
laboratorio. Igualmente se debe restringir el acceso de niños.
Limite el empleo de agujas y jeringas. Utilícelas sólo cuando sea estrictamente necesario. En tales
casos, emplee las precauciones universales indicadas.
Lavado de manos, es la forma más eficaz de prevenir la infección cruzada entre pacientes, personal
hospitalario y visitantes. Se realiza con el fin de reducir la flora normal y remover la flora transitoria para
disminuir la diseminación de microorganismos infecciosos.
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LABORATORIO CLINICO
Código
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Versión 2
Fecha Vigencia
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Página
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>
La aplicación de las normas de precaución universal con todos los pacientes, elimina la necesidad de
etiquetas especiales sobre algunas muestras, ya que todas las sangres y líquidos orgánicos de todos
los pacientes deben considerarse como potencialmente infecciosas. De igual manera la bioseguridad
debe hacer parte de la rutina del laboratorio y no de situaciones especiales.
>
En el caso de enviar muestras fuera del laboratorio se debe empacar el tubo en otro recipiente que sea
resistente de tal manera que en caso de quebrarse el tubo con la muestra; el mensajero o la persona
implicada no tenga riesgo de contaminarse.
>
No se permitirá comer, beber, fumar y o almacenar comidas u otros elementos personales, dentro de
las áreas de trabajo.
>
Se deben llevar controles de temperatura y humedad ambiental, para mantener un ambiente de 18o C y
una humedad relativa entre 50 y 60%.
La ropa protectora de las áreas (batas) nunca debe ser usada fuera del área de trabajo y si se quita debe
de ser desechada automáticamente en una bolsa de material contaminado.
>
>
Usar bata de manga larga, dentro del laboratorio, la cual se colocara al momento de entrar en este y se
quitara antes de abandonar este lugar.
>
Usar guantes de buena calidad para todo manejo de material biológico, o donde exista riesgo potencial
de contaminación o exposición a fluidos corporales. Cambiarse y desechar guantes una vez se han
contaminado, lavarse las manos y ponerse guantes limpios.
>
No frotarse los ojos u otras superficies corporales durante el uso de los guantes.
>
No abandonar el laboratorio con la bata y guantes puestos.
>
Una vez terminada la jornada lavar manos y desechar guantes.
>
No detener manualmente la centrifuga y no destaparla antes de que cese de girar.
>
>
Definir, extremar y garantizar el acceso restringido al laboratorio.
Garantizar que el personal que labora o ingresa tenga los elementos de protección necesarios.
>
Los desechos Anatomopatológicos (coágulos, esputo y heces) se descartaran en contenedores para tal
fin, herméticamente sellados y rotulados. (protocolo de descarte de residuos potencialmente
contaminados).
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salud
MANUAL DE BIOSEGURIDAD PARA
LABORATORIO CLINICO
Código
MN-LAB-04
Versión 2
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S I T U A C I O N E S D E E X P O S I C I O N E N E L P E R S O N A L D E L A B O R ATO R I O C L I N I C O
TAREA
Manejo de jeringas, agujas y
material cortopunzante
Manejo de frascos, ampollas y
otros recipientes que contengan
sangre o fluidos corporales.
SITUACIONES DE EXPOSICION
Inoculación accidental de sangre u otros
fluidos corporales.
Desperfectos o rupturas en los
recipientes que pueden generar
contacto accidental con sangre u otros
fluídos corporales.
Manipulación de muestras y
transporte de materiales.
Contacto con sangre, fluídos corporales
y materiales potencialmente infecciosos,
por salpicaduras, aerosoles o derrames.
Procesamiento de muestras como
extendidos de sangre periférica y
sedimentaciones.
Piel no intacta expuesta a fluídos
corporales. Contacto accidental con
materiales potencialmente infectados.
Trabajo con equipos que
contengan sangre o fluídos
corporales.
Contacto accidental con materiales
potencialmente infectados.
Descarte de equipos y materiales.
Chuzones, cortadas, y accidentes por
descargue inapropiado de jeringas,
agujas y material cortopunzante.
Descarte de muestras.
Contacto con sangre o fluídos
corporales por salpicaduras.
Manejo de centrífugas. Manejo de
Aerosoles, salpicaduras, derrames de
ultra centrífugas. Dispositivos para
sangre u otros fluídos corporales y
agitarlos cultivos y las pruebas de
lesiones por ruptura de tubos.
VDRL.
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ESE Departamental Solución
Versión 2
MN-LAB-05
salud
Fecha Vigencia
SEGUIMIENTO A RIESGOS INHERENTES AL SERVICIO
27/03/2011
DE TOMA DE MUESTRAS Y LABORATORIO CLINICO
Página
195
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SEGUIMIENTO A
RIESGOS EN LAS FASES
ANALÍTICA Y POST
ANALÍTICA DE
MUESTRAS DEL
LABORATORIO CLÍNICO
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MANUAL DE CONTROL CALIDAD
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MANUAL DE CONTROL CALIDAD
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MANUAL DE CONTROL CALIDAD
27/03/2011
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OBJETIVO
Contar con un programa de calidad externo que permita conocer y evaluar el desempeño del laboratorio clínico
garantizando resultados confiables, brindando seguridad a los usuarios del centro de atención.
ALCANCES
Aplica para los usuarios que solicitan el servicio en el centro de atención
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la Bacterióloga del servicio de laboratorio clínico.
GENERALIDADES
El Control de Calidad Externo se realiza mediante la participación en pruebas de intercomparación, en donde:
ü Se contrastan valores obtenidos en un laboratorio con otro (s) o uno de referencia.
ü Una entidad proporciona un control igual a todos los laboratorios participantes y contrasta luego los
resultados mediante procesamiento estadístico.
La ESE Solución Salud, contrata el servicio de Control de Calidad externo con empresa sea pública: Instituto
Nacional de Salud (INS) o privada.
Dicha empresa entrega desde el principio del programa un cronograma específico de fechas para montaje y
entrega de resultados.
El montaje se realiza a suero enviados por ellos mismos y cuya concentración es desconocida para el
laboratorio en control.
Según el programa (mensual o bimensual) se envían los resultados para cada analito. La empresa externa
realiza estudios comparativos teniendo todo el “pool” de laboratorios como referencia.
Sobre el resultado global, se ubica cada laboratorio y así se califica.
El laboratorio bajo control obtiene una certificación y acreditación según su desempeño.
CERTIFICACIÓN DEL SISTEMA DE CALIDAD
Una organización independiente garantiza por escrito que un Laboratorio posee un sistema interno de gestión
de calidad.
Acreditación
Reconocimiento por escrito, que un laboratorio es competente para realizar determinado tipo de análisis.
Es temporal y debe renovarse periódicamente
OTROS INDICADORES DE GESTION
indicador
tipo
Responsable
Calidad en el
análisis
Efici
enci
a
Bacteriólogo
Forma de
medición
Número
de
repeticion
es/total
pruebas
montadas
X 100
Frecuencia
medición
Semanal
meta
0%
Fuente
información
Registros
área analítica
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MANUAL DE CONTROL CALIDAD
27/03/2011
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Página
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Documento
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Todos los laboratorios clínicos deben disponer de un sistema para el aseguramiento de la calidad. El Sistema
para el control de la calidad Externa de los laboratorios clínicos, refleja objetivamente las variaciones en los
resultados de las determinaciones, permite conocer realmente como está funcionando el laboratorio y posibilita
tomar decisiones oportunas
CARACTERISTICAS PRINCIPALES

Contribuir a aumentar la calidad de las determinaciones realizadas.

Aplicar criterios de calidad en cada sección para que satisfagan la demanda de la calidad de los
procedimientos.

Facilitar la toma de decisiones mediante la aplicación de las multi-reglas de Westgard para el control
interno de la calidad.

Posibilita el procesamiento del control de calidad externo en las secciones de química y hematología,
aplicando controles de repetibilidad y/o reproducibilidad en cada una de las determinaciones.

Permite procesar varios controladores para cada una de las determinaciones, decidiendo el usuario que
procesamiento gráfico realizar (Levey-Jennings), además le alerta de acuerdo a las Multireglas de
Westgard durante la captura de los datos.
Participación en pruebas de intercomparación.


Contrastar los valores obtenidos en un laboratorio con los de otros laboratorios o un de referencia.
Una entidad proporciona un control igual a todos los laboratorios participantes (pruebas ciegas) y contrasta
luego los resultados mediante procesamiento estadístico.
Certificación y acreditación.
> Una organización independiente garantiza por escrito que un laboratorio posee un sistema interno de
gestión de calidad.
> Reconocimiento por escrito de que un laboratorio es competente para realizar determinados tipos de
análisis.
> Es temporal y se debe renovar periódicamente.
DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
CONTROL DE CALIDAD EXTERNO EN HEMATOLOGIA
Este se adquiere comercialmente. Al laboratorio llega el pedido, junto con una planificación establecida por el
mismo fabricante, en donde especifican los días exactos, en que se debe realizar la corrida del control, para el
envió vía fax de los resultados obtenidos. Los viales constan de sangre completa, que vienen listos para su
uso. Se dejan almacenados, según especificaciones propias de la casa comercial y se van procesando de
acuerdo con el cronograma establecido.
Así mismo el control consta de una diapositiva para realizar la lectura e informar en los registros establecidos.
Procesamiento
> El día en que corresponda la corrida del control, se debe sacar el vial, del refrigerador y dejarlo a
temperatura ambiente durante 15 minutos, luego se debe colocar a mezclar por 10 minutos en el agitador
de serologías a no más de 100 rpm.
>
Posteriormente se procede a realizar el montaje del control. Se debe tratar de no tocar el fondo del vial con
el fin de evitar resultados erróneos. (Revise el inserto de cada paquete recibido con el fin de aclarar y
confirmar dudas.)
>
Los resultados se transcribe en el formato correspondiente, que se encuentra en la carpeta de
CONTROL INS e inmediatamente debe ser enviado vía fax a los números telefónicos previamente
establecidos. Es necesario confirmar vía telefónica, que efectivamente el fax fue recibido y apuntar el
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MANUAL DE CONTROL CALIDAD
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EXTERNO
>
>
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210
Documento
Controlado
código de confirmación del mismo.
El cronograma está ubicado en un lugar visible del laboratorio durante todo el año.
Cuando llegue la calificación realizar los análisis correspondientes y documentar las medidas correctivas y
la toma de decisiones.
CONTROL DE CALIDAD EXTERNO EN QUIMICA
> Al igual que en Hematología, se recibe el pedido, con los diferentes sueros liofilizados que deben
reconstituirse según indicaciones del fabricante y almacenarse de acuerdo a las condiciones del
fabricante.
>
Procesarse de acuerdo con el cronograma sugerido por el instituto nacional de salud.
Se realiza el montaje de todas las pruebas que se procesan a través de este instrumento.
Los resultados obtenidos se transcriben en el formato correspondiente y se hace el envío vía fax, verificando
que haya sido recibido satisfactoriamente.
Procesamiento
> El día en que corresponda la corrida del control, se debe sacar el vial, del refrigerador y dejarlo a
temperatura ambiente durante 15 minutos, luego se debe colocar a mezclar por 10 minutos en el agitador
de serologías a no más de 100 rpm.
> Posteriormente se procede a realizar el montaje del control. (Revise el inserto de cada paquete recibido
con el fin de aclarar y confirmar dudas.)
> Los resultados se transcribe en el formato correspondiente, que se encuentra en la carpeta de CONTROL
INS e inmediatamente debe ser enviado vía fax a los números telefónicos previamente establecidos. Es
necesario confirmar vía telefónica, que efectivamente el fax fue recibido y apuntar el código de
confirmación del mismo.
> El cronograma está ubicado en un lugar visible del laboratorio durante todo el año.
> Cuando llegue la calificación realizar los análisis correspondientes y documentar las medidas correctivas y
mediante la elaboración de un plan de mejoramiento y toma de decisiones
FLUJOGRAMA
INICIO
Sacar los controles de la
nevera y atemperar por
15 minutos
Realizar el montaje de
acuerdo al inserto
Realizar las lecturas,
reportar en los formatos
correspondientes y enviar
los resultados vía fax
Confirmar el envío del fax
Archivar los
registros
correspondientes
FIN
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MANUAL DE CONTROL CALIDAD
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REGISTROS DE CALIDAD

Registro de análisis del control de calidad y toma de medidas correctivas.
NORMATIVIDAD

Decreto 2323 de 2006.
TERMINOS Y DEFINICIONES
REPETIBILIDAD: Capacidad de una máquina para ejecutar la misma acción una cantidad determinada de
veces, dentro de un rango de tolerancia estricto.
VIAL: Pequeño frasco de vidrio utilizado para el envasado de preparados inyectables
CONTROL DE CALIDAD: Es el proceso de regulación a través del cual se puede medir la calidad real,
compararla con las normas o las especificaciones y actuar sobre la diferencia.
REFERENCIA: En Teoría de la Clasificación y en Terminología, envío o remisión de un símbolo a otro (ya sean
estos símbolos notaciones o conceptos) dentro de un conjunto estructurado y sistemático de nociones.
LIOFILIZADO: Proceso utilizado para la eliminación del agua mediante desecación al vacío y a muy bajas
temperaturas. Utilizado principalmente en la industria alimentaria y farmacéutica, aunque también se puede
utilizar para fabricar materiales como el aerogel.
RECONSTITUIR: Devolver al organismo o a alguna de sus partes las condiciones normales.
CRONOGRAMA: Neologismo que señala un programa de actividades ordenados en el tiempo en el que
además se suele especificar la duración de cada actividad, lugar de realización, responsable, etc. Puede ser
escrito literalmente o en forma de tabla.
BIBLIOGRAFIA
> Fernandez Alberti A, Fink NE. Long-term stability of a whole blood control material. Lab Hematol 1999; 4:
239-43.
> Mazziotta D. Interpretando el informe mensual. PEEC Noticias; abril 1995.
> Fink NE. Control de calidad Interno en Hematología. PEEC Noticias; septiembre 2000.
> Mazziotta D. Control de Calidad interno: Materiales de Control. PEEC Noticias; mayo 2001.
> Lynch JM, Raphael SS, Mellor LD, Spare PD, Hills P, Inwood MJ. Métodos de Laboratorio. México:
Interamericana; 2001.
> International Committee for Standarization in Haematology. "Recommendation for haemoglobinometry
in human blood". J Clin Pathol 2003; 31: 139.
> Lewis SM. Quality assurance in haematology. Geneva: World Health Organization; 2003.
> Fernández Alberti A. Control de Calidad Interno en Hematología. Parte II. PEEC Noticias; enero 2007.
> Fernández Alberti A. Control de Calidad Interno en Hematología. Parte I. PEEC Noticias; diciembre
2006.
> Fernández Espina C. El aseguramiento de la calidad en el laboratorio clínico. Acta Bioquím Clín
Latinoam 2009; 33 (1): 48-67.
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MANUAL DE CONTROL CALIDAD
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MANUAL PARA ANALISIS
Fecha Vigencia
DE PARASITOLOGÍA
27/03/2011
MANUAL PARA
EL ANALISIS
DE PARASITOLOGÍA
Página
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MANUAL PARA ANALISIS
DE PARASITOLOGÍA
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Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
230
Documento
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OBJETIVO
Conocer la técnica utilizada en el área de coproanálisis, así como la manera de reportar los resultados
obtenidos.
ALCANCES
Aplica para toda muestra destinada al área de coproanálisis, para su estudio.
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la auxiliar y/o Bacterióloga del servicio de laboratorio clínico.
GENERALIDADES
EXAMEN COPROLOGICO
El diagnostico definitivo de la mayoría de las infecciones parasitarias intestinales del hombre, se basa
rutinariamente en la demostración de parásitos y huevos en materia fecal. El examen coprológico o estudio de
materia fecal es el método más simple. Esta técnica presenta la ventaja de permitir la observación de la
motilidad de los organismos, que a menudo es característica y valiosa para la identificación de protozoos y
huevos de helmintos en la materia fecal.
Formas de diagnosticar una parasitosis humana.
>
>
>
>
Análisis de materia fecal seriado
Escobillado anal
Punción biopsia de recto
Raspado de la mucosa rectal
> Examen proctoscopio.
Recolección de la muestra
La muestra de materia fecal debe recogerse espontáneamente, en algunas circunstancias, se puede obtener
directamente del intestino, como rectoscopias, hisopado rectal y otras como líquido biliar, aspirado
gastrointestinal o duodenal.
Se debe recoger en un recipiente de boca ancha, tapa rosca, plástico, limpio y seco. Se debe evitar la
contaminación con agua corriente que puede tener protozoos de vida libre y con la orina ya que esta puede
destruir los protozoos móviles dentro de las heces.
> Recolectar la primera deposición de la mañana, de 2 a 3 gramos aproximadamente.
> No mezclar con orina.
> No utilizar laxantes, antiparasitarios, antidiarreicos como bismuto.
> Si se sufre de estreñimiento, se recomienda una dieta rica en fibra 2 a 3 días antes del examen.
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MANUAL PARA ANALISIS
27/03/2011
DE PARASITOLOGÍA
Página
231
Documento
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Cada muestra debe ser identificada con el nombre completo del paciente, la fecha y hora de recolección en lo
posible.
Las muestras obtenidas deben enviarse rápidamente al laboratorio especialmente si son líquidas o
semilíquidas ya que las formas de trofozoitos de los protozoos pierden movilidad y mueren o pierden sus
características morfológicas.
La muestra debe ser procesada rápidamente, si es indispensable conservar la muestra se recomienda la
refrigeración por algunas horas a 4°C. máximo un día.
DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
Examen físico o macroscópico
Consistencia: normalmente las heces son blandas aunque moldeadas. Se observan heces extremadamente
duras en el estreñimiento y líquidas por acción de purgantes, o por causas de origen diarreica.
Hay diferentes aspectos como son:
>
Liquida o diarreica (acuosa): en procesos por bacterias o parásitos.
>
Sanguinolenta: es indicador de múltiples patologías como por amibas.
>
Purulenta: generalmente por aumento de leucocitos y bacterias.
>
Lienteritas: aquellas donde no se presenta una buena degradación de los alimentos.
Si se observa presencia de moco, sangre, restos alimenticios o parásitos como helmintos (gusano adulto) se
debe reportar.
Color: Normalmente las heces son de color pardo de diferente intensidad, este color se debe a la presencia de
urobilina, varía de acuerdo a la ingestión de alimentos y medicamentos. En el adulto normalmente son de
color café por el metabolismo de la hemoglobina estercobilina, en los niños de color amarillo por el régimen
alimenticio de la leche.
>
>
>
>
Negro: melenas (sangre) o tratamientos con hierro.
Verde: aumento de glóbulos blancos.
Amarillo: esteatorrea, aumento de grasas.
Blanco: acolia, ausencia de color por la no producción de la estercobilina.
Olor: las sustancias aromáticas provenientes de la desaminación y descarboxilación del triptofano por las
bacterias son las que le dan a la materia fecal el olor característico.
Moco: una cantidad significativa de este, es indicativo de la destrucción de la mucosa intestinal, bien sea por
amebas u otros microorganismos.
Examen microscópico:
En una lámina portaobjetos se colocan dos gotas separadas de una solución salina y otra de lugol, luego
se toma con un palillo la muestra de materia fecal, se
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MANUAL PARA ANALISIS
27/03/2011
DE PARASITOLOGÍA
Página
232
Documento
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debe escoger la parte que tenga elementos anormales como sangre, como, etc. y de otra parte par que así
quede una muestra representativa, se homogeniza en la lámina en la solución salina y luego en el lugol, se le
colocan los cubre objetos. La suspensión no debe quedar muy gruesa pero tampoco muy delgada.
Los parásitos móviles se observan en solución salina. El lugol hace resaltar algunas estructuras como núcleos
de protozoos y da una coloración café a los huevos y larvas.
Se debe observar elementos de origen animal y vegetal que pueden semejar parásitos.
Residuos alimenticios.
>
>
>
>
Fibras musculares: se presentan en forma de cilindros con estrías longitudinales y transversales.
Grasas neutras: aparecen como esferas refringentes de diferentes tamaños.
Almidones: tienen formas irregulares, en lugol toman color rojizo violeta.
Fibras vegetales: se caracterizan por ser de doble pared, contienen clorofila y poseen un canal central
muy marcado. En forma de panal y en espiral.
Productos de irritación de la mucosa.
>
>
>
>
>
>
>
Moco: se observan en cualquier patología.
Eritrocitos: su hallazgo indica lesión en la parte baja del aparato digestivo. Hemorragias de colon y
síndrome disentérico.
Leucocitos: asociados al moco. Si hay gran cantidad de irritación bacteriana, se observan ovaladas
algunas con gemación. En muchas ocasiones se les asocia con contaminación ambiental y más
cuando o las blastoconidias están acompañadas de pseudomicelios.
Células epiteliales: indican una excesiva irritabilidad. No tiene significado especial.
Bacterias: carecen de significación clínica.
Cristales de Charcot- leyden: desintegración de los eosinofilos y se les asocia a procesos alérgicos.
Se ven en forma de rombos alargados puntiagudos,
incoloros o amarillentos. Se pueden observar otros tipos de cristales como oxalato de calcio, fosfato
triple y de colesterol.
Otros: filamentos de raíces, cerdas de animales producto de la no degradación de fibras animales o
vegetales.
Examen parasitológico
Además de los elementos fecales normales, en el examen microscópico se pueden revelar las distintas formas
parasitarias como Trofozoitos y quistes de protozoos intestinales y los huevos y larvas de helmintos.
Helmintos:
>
Ascaris lumbricoides: Se observan huevos miden aprox. 45-75 x 30-50 mm, presenta una célula
rodeada por tres capas, producen una patología de dolor de estomago y desnutrición.
>
Tricocefalo: El huevo mide de 50-55 x 22-25 mm Tiene la forma de balón de fútbol americano, produce
anemia intensa, dolores abdominales, prolapso rectal ocasional.
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MANUAL PARA ANALISIS
DE PARASITOLOGÍA
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Página
233
Documento
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>
Uncinarias: Tienen una forma elíptica, están cubiertas de una membrana lisa, transparente y fina, mide
de 60 - 40 x mm producen anemia.
>
Strongyloides stercolaris: Se observan larvas. Produce diarrea, vomito, desnutrición.
>
Enterobius vermiculares: Los huevos son ovoides con una cara convexa y una plana, presenta una
membrana interna y delicada y otra gruesa hialina y mamelonada, mide de 50-60 x 20-30 mm. Produce
prurito en la región perianal, insomnio, cambios de conducta.
>
Taenia: Los huevos miden 20-30 x 30-40 mm, son ovoides con membrana gruesa, amarillenta que se
encuentra estriada en forma de empalizada y encierra un embrión de seis ganchos poco visibles.
Produce trastornos nerviosos.
>
Hymenolepis nana: Huevos ovoides, mide aprox. 50 mm tiene una membrana interna y una externa,
también puede causar trastornos nerviosos.
Protozoarios:
>
>
>
>
>
Entamoeba histolítica : Se observan quistes miden aprox. 20 mm se observa con cuatro núcleos.
Pueden causar lesión de la mucosa intestinal.
Entamoeba coli: Son quistes más grandes que los de histolítica, tiene más de cuatro núcleos. Es
considerada cono NO patógena.
Endolimax nana: Los quistes son ovalados miden de 6 - 10 mm presentan de uno a cuatro núcleos.
Iodamoeba bütschlii: Su quiste se caracteriza por la presencia de una vacuola de yodo, no es una
ameba patógena.
Gardia lamblia: Es una ameba en forma de pera simétricamente lateral, con un extremo ancho y
redondeado, el quiste presenta cuatro núcleos y dos cuerpos parabasales, produce una diarrea
amarillenta y vomito.
Reporte:
>
>
>
Si es positivo se debe anotar:
Forma de vida del parásito observado (quiste, trofozoito, larva, adulto).
Género y especie al cual pertenece la forma parasitaria observada (no se realiza
cuantificación).
>
>
Si es negativo se debe informar:
No se observan parásitos intestinales en la muestra examinada.
Conservación de muestras fecales:
El tiempo máximo para procesar un coprológico después de la toma de muestras de materia fecal son de una a
dos horas. Por lo cual se debe evitar todo tipo de demora, nunca incubar las muestras porque las sustancias de
desecho que estas poseen pueden sufrir una descomposición acelerada con la muestre de los parásitos. Pero
si la muestra tiene que ser transportado se recomienda la refrigeración como máximo 24 horas.
Disposición final de las muestras:
> Depositar las cajas de los coprologicos en bolsa roja, es decir los rotulados como “BLOSANITARIOS”
evitando que la caneca se rebose y se puedan generar derrame de los desechos, amarre las bolsas y
entreguelas al personal de servicios generales para su transporte interno, al deposito, donde posteriormente
seran recogidos por la empresa recolectora de residuos hospitalarios.
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MANUAL PARA ANALISIS
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DE PARASITOLOGÍA
Página
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Documento
Controlado
FLUJOGRAMA
INICIO
Muestra
Examen
macroscópico y
examen
Observar la presencia o
ausencia de huevos y/o
quistes.
Reportar en
el registro de
resultados
FIN
REGISTROS DE CALIDAD
>
Registro de diario de pacientes, exámenes solicitados y resultados de los mismos.
>
Reporte de resultados
>
Historia clínica
TERMINOS Y DEFINICIONES
DIARREA: Es una alteración de las heces en cuanto a volumen, fluidez o frecuencia en relación anormal a la
fisiológica, lo cual conlleva una baja absorción de líquidos y nutrientes.
HECES SANGUINOLENTAS: Indican una lesión o trastorno en el tubo digestivo. El médico puede utilizar el
término "melena" para describir las heces negras, alquitranosas y fétidas o el término "hematoquecia" para
describir las heces rojas o de color marrón.
Código
ESE Departamental Solución
Versión 2
MN-LAB-08
salud
MANUAL PARA ANALISIS
Fecha Vigencia
27/03/2011
DE PARASITOLOGÍA
Página
235
Documento
Controlado
HELMINTO: Significa gusano, se usa sobre todo en parasitología, para referirse a especies animales de
cuerpo largo o blando que infestan el organismo de otras especies.
AMEBA (O AMIBA): Es un protista unicelular del género Amoeba. Es un eucariota caracterizado por su forma
cambiante, puesto que carece de pared celular, y por su movimiento ameboide a base de seudópodos, que
también usa para capturar alimentos a través del proceso llamado fagocitosis.
BIBLIOGRAFIA
> Diagnostico Clínico por el Laboratorio Todd Sanford 2002
> FISHBACH, Manual de pruebas diagnósticas. Mc Graw Hill Interamericana. 2005.
> JACQUES WALLACH, Interpretación de los Diagnósticos de Laboratorio
Editorial Salvat.Barcelona 2007.
> FRANCES TALASKA FISCHBACH. Manual de Pruebas Diagnosticas. Editorial MaGraw Hill
Interamericana. México. Quinta Edición. 2009.
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salud
Versión 2
MANUAL PARA LIMPIEZA Y DESINFECCION
EN EL LABORATORIO CLINICO
Código
MN-LAB-10
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
236
Documento
Controlado
MANUAL PARA LIMPIEZA Y DESINFECCION
EN EL LABORATORIO CLINICO
ESE Departamental Solución
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Código
MN-LAB-10
Versión 2
MANUAL PARA LIMPIEZA Y DESINFECCION
EN EL LABORATORIO CLINICO
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
237
Documento
Controlado
OBJETIVO
Definir los procedimientos a seguir para lograr una adecuada limpieza y desinfección de las diferentes áreas
del laboratorio clínico en el centro de atención.
ALCANCES
Este procedimiento inicia en cada turno con el comienzo de las actividades de rutina de las Bacteriólogas y
Auxiliares del laboratorio clínico y finaliza al empezar un nuevo turno.
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la Bacterióloga/ auxiliares del laboratorio clínico o personal de servicios generales.
GENERALIDADES
En la esfera de la desinfección y la esterilización se utilizan muchos términos diferentes. Los siguientes se
encuentran entre los más comunes en el campo de la bioseguridad:
Antimicrobiano: Agente que mata los microorganismos o suprime su crecimiento y proliferación.
Antiséptico: Sustancia que inhibe el crecimiento y el desarrollo de microorganismos pero no necesariamente
los mata. Los antisépticos suelen aplicarse a las superficies corporales.
Biocida: Término general para cualquier agente que mate organismos.
Descontaminación: Cualquier proceso utilizado para eliminar o matar microorganismos. También se utiliza
para referirse a la eliminación o neutralización de sustancias químicas peligrosas y materiales radioactivos.
Desinfección: Medio físico o químico de matar microorganismos, pero no necesariamente esporas.
Desinfectante: Sustancia o mezcla de sustancias químicas utilizada para matar microorganismos, pero no
necesariamente esporas. Los desinfectantes suelen aplicarse a superficies u objetos inanimados.
Características de un desinfectante ideal:
> Amplio espectro
> Acción rápida
> No afectado por factores ambientales
> No tóxico
> Efecto residual sobre la superficie tratada.
> Fácil de usar.
> Inoloro, económico
> Soluble
> Estable.
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Versión 2
MANUAL PARA LIMPIEZA Y DESINFECCION
EN EL LABORATORIO CLINICO
Código
MN-LAB-10
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
238
Documento
Controlado
Condiciones que influyen en la acción de los desinfectantes:
> Presencia de materia orgánica
> Tipo y número de microorganismos.
> Tiempo de exposición.
> Temperatura.
> Fuerza y concentración del agente desinfectante.
> Enjuague, secado y almacenamiento.
Detergente: agente químico utilizado para la eliminación de la suciedad insoluble en agua. Debe eliminar la
suciedad orgánica e inorgánica, no producir daño en lo equipos, no dejar residuos (facilidad de enjuague ) y no
ser tóxico para el personal que lo manipula.
Detergente enzimático: detergente que contiene enzimas proteolíticas que disuelven la materia orgánica;
preferiblemente de pH neutro, disminuyendo la posibilidad de corrosión.
Germicida químico – Sustancia o mezcla de sustancias químicas utilizada para matar microorganismos.
Limpieza: es la remoción de toda materia extraña de los objetos o las superficies; usualmente es realizada con
agua y detergente enzimático para los equipos, instrumental o elementos, el detergente común se usa para
superficies como pisos, paredes, etc. esta siempre debe preceder a los procesos de desinfección.
Microbicida: Sustancia o mezcla de sustancias químicas que mata microorganismos. Este término se utiliza a
menudo en lugar de «biocida», «germicida químico» o «antimicrobiano».
TIPOS DE DESINFECTANTES
Hipoclorito de sodio:
El cloro, oxidante de acción rápida, es un germicida químico de uso muy extendido y de amplio espectro,
provoca quemadura de las paredes celulares de los microorganismos, alteración de las moléculas de
proteínas y ácidos nucleicos e inhibición enzimática. Normalmente se vende en forma de lejía, una solución
acuosa de hipoclorito sódico que puede diluirse en agua para conseguir distintas concentraciones de cloro
libre.
Las soluciones madre o de trabajo de lejía almacenadas en recipientes abiertos, particularmente a
temperaturas elevadas, liberan cloro gaseoso con lo que se debilita su potencial germicida. La frecuencia con
la que deben prepararse nuevas soluciones de trabajo de lejía depende de su potencia inicial, del tamaño y el
tipo de los recipientes (por ejemplo, con o sin tapa), de la frecuencia y el tipo de uso, y de las condiciones
ambientales. A título de orientación general, las soluciones que reciban materiales con gran cantidad de
materia orgánica varias veces al día deben cambiarse al menos diariamente, mientras que aquellas que se
usan con menos frecuencia pueden durar hasta una semana.
Que desinfectar con hipoclorito?
Pisos, paredes, baños, mesas, material del laboratorio, equipo metálico inoxidable, superficies de trabajo,
líquidos de desecho y descontaminación de las superficies.
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MANUAL PARA LIMPIEZA Y DESINFECCION
EN EL LABORATORIO CLINICO
Código
MN-LAB-10
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
239
Documento
Controlado
Fórmula para la preparación de las soluciones de hipoclorito:
Las preparaciones de Hipoclorito deben ser usadas antes de 6 horas después de su preparación,
posteriormente de ese tiempo pierden su acción. Ejemplo: Si el hipoclorito que llega a la institución tiene una
concentración del 5%, en la etiqueta entonces:
cc ( hipoclorito ) = ( volumen en litros a preparar ) x ppm requeridas
concentración del producto x 10
ELEMENTOS
Superficies de equipos; mesas, lámparas,
lavamanos
Lavado rutinario de áreas: pisos, paredes,
techos
Lavado terminal de áreas: pisos, paredes,
techos.
P.P.M. ( partes por millón )
500 ppm
1000 ppm
2000 ppm
Elementos usados en el laboratorio como el
material de vidrio, material plastico
5000 ppm
contaminado .
Derrames
5000 ppm
Aldehidos:
En este grupo se encuentra el glutaraldehido alcalino 2%, es efectivo también para esporas y es un
desinfectante de alto nivel. Tiene la desventaja de ser irritante para la piel y las vias respiratorias.
Compuestos yodóforos:
Son líquidos que tienen acción contra hongos, virus y bacterias, con un tiempo de contacto de 30 minutos. Son
desinfectantes de nivel intermedio.
NORMAS GENERALES EN LA LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN
>
>
>
>
>
>
Asista a todas las capacitaciones programadas por la institución para mejorar las buenas prácticas de
limpieza y desinfección.
Use en forma estricta los elementos de protección personal (gorro, mascarilla, guantes, uniforme,
gafas, mico, zapatos limpios y secos).
Lávese las manos antes y después de cualquier procedimiento de limpieza.
Mantenga las uñas cortas, limpias y sin esmalte
No use joyas (anillos, relojes, pulseras) durante la realización de los procedimientos de limpieza y
desinfección.
Mantenga en perfectas condiciones de limpieza los elementos de aseo y desinfección (cepillos,
traperos, baldes, carros, paños, guantes).
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MANUAL PARA LIMPIEZA Y DESINFECCION
EN EL LABORATORIO CLINICO
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Código
MN-LAB-10
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
240
Documento
Controlado
Para áreas contaminadas deben usarse elementos únicos, márquelos como elementos exclusivos
para dicha área.
Utilice escobas y/o cepillos de mango largo cubiertos con paños para llegar a los lugares más altos.
Los elementos de limpieza y desinfección son exclusivos para cada área.
De un uso racional a los productos de aseo y desinfección siguiendo las normas en forma estricta. El
uso de una cantidad excesiva no limpia o desinfecta mas, solo entorpece el procedimiento.
No entable conversaciones privadas con el paciente o usuario.
La remoción mecánica se logra con la fricción de las superficies con churrusco, cepillo, compresa o
paño, según el área u objeto a limpiar.
La limpieza es indispensable antes de la desinfección o esterilización para lograr los resultados
esperados.
La limpieza en zonas verticales (paredes – puertas – ventanas) debe hacerse diariamente.
Tenga especial cuidado en la limpieza de equipos, materiales y áreas de poca visibilidad y difícil acceso.
No aplique producto (jabón o desinfectante) en forma directa con el atomizador en los elementos
eléctricos, electrónicos o en los paneles de control para evitar que se dañen.
La limpieza y desinfección debe hacerse siempre de lo más limpio a lo más contaminado; de arriba
hacia abajo y del centro hacia fuera.
Siga estrictamente la codificación de las bolsas por colores para el manejo de los desechos.
Evite la formación de charcos y humedad excesiva.
Coloque los avisos de PISO MOJADO durante el procedimiento de limpieza en los corredores y pasillo
para evitar accidentes.
Al terminar cada actividad deje los elementos de limpieza en perfecto orden permitiendo el secado.
Inspeccione y limpie continuamente las áreas del servicio asignadas, debido a la posibilidad de la
presencia de un derrame, elemento o suciedad extra.
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MANUAL PARA LIMPIEZA Y DESINFECCION
EN EL LABORATORIO CLINICO
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
241
Documento
Controlado
DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO
LAVADO DE AREAS EN CASO DE DERRAME DE FLUIDOS
ACTIVIDAD
Delimitar el
área donde se
produjo el
derrame.
Recoger el derrame
usando la compresa
DETALLE
Delimitar el área
aplicando solución de
hipoclorito de sodio en
concentración de 5000
ppm. Impregnado en
una compresa o toallas
desechables
Dejar 30 minutos
RESPONSABLE
Auxiliar de
Laboratorio o
personal de
servicios generales
Limpiar con
detergente y luego
aplicar hipoclorito
de sodio
Eliminar la
compresa
El hipoclorito de sodio
debe estar en
concentración de 5000
ppm. Dejar 30 minutos
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Código
MN-LAB-10
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MANUAL PARA LIMPIEZA Y DESINFECCION
EN EL LABORATORIO CLINICO
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
242
Documento
Controlado
LAVADO DE SUPERFICIES DE EQUIPOS Y MUEBLES
Frotar la
superficie de
los equipos y
muebles con
agua y jabón
Auxiliar de
Laboratorio o
Retirar con agua
potable
personal de
Se debe realizar
diariamente antes y
después de utilizar los
equipos.
servicios generales
Aplicar solución de
hipoclorito de sodio
en concentración de
500 ppm.
Lavar todo el material que ha sido utilizado durante el procedimiento, como también el que ''se cree'' que ha
sido contaminado.
Todas las superficies deben estar accesibles para reducir la carga microbiana, ya sea por acceso directo
durante el lavado o desmontando el instrumento.
La limpieza, desinfección y/o esterilización, deben permitir la remoción total de la materia orgánica e
inorgánica, del agente de limpieza y del desinfectante y/o esterilizante.
Todos los instrumentos deben agruparse de acuerdo al tipo de limpieza y esterilización al que van a ser
sometidos.
Cada vez que se incorpora un equipo o instrumento nuevo, deben revisarse cuidadosamente las instrucciones
del fabricante para su limpieza y esterilización.
En cada cambio de turno y cada vez que se use. También cada vez que se considere contaminado o expuesto
se debe realizar lavado y desinfección.
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MANUAL PARA LIMPIEZA Y DESINFECCION
EN EL LABORATORIO CLINICO
Código
MN-LAB-10
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
243
Documento
Controlado
LIMPIEZA DE MUROS PAREDES Y PUERTAS
>
>
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>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
Colóquese los elementos de protección personal
Llene las dos terceras partes del balde con agua y agregue la cantidad estándar de detergente
biodegradable
Retire la mugre suelta del área a lavar con el primer paño húmedo.
Sumerja un segundo paño en la solución limpiadora (agua + detergente), exprima de manera que el líquido
caiga en la cubeta o balde
Pase el paño impregnado con la solución limpiadora sobre las superficies, realizando movimientos
circulares, sobre pequeñas áreas, de aproximadamente 1 m2. Esto permitirá llevar un orden el proceso de
limpieza y un cubrimiento integral de las superficies aseadas
Sumerja el segundo, con el que está limpiando, en agua limpia, exprima y enjuague,
Proceda con este paño a retirar la solución limpiadora del área donde la aplicó, utilizando movimientos
verticales.(de arriba hacia abajo)
Enjuague el mismo paño en agua limpia, exprima limpie ahora la misma área con movimientos horizontales
(de lado a lado)
Continúe lavando, enjuagando y secando en áreas enteras, sobreponiendo las pasadas para evitar franjas
sin limpiar.
Seque el área con el tercer paño y proceda a realizar la desinfección según el riesgo, así:
Si es un área crítica, diluya el desinfectante a 5000 Partes por Millón (PPM) y proceda con su aplicación de
la misma forma utilizada para la solución limpiadora, pero sin retirarla. Para los sitios de difícil acceso para
la desinfección, adicional a lo anterior, realice aspersión de la solución preparada
Si el área no es crítica, diluya el desinfectante a 500 PPM y proceda con su aplicación de la misma forma
utilizada para la solución limpiadora, pero sin retirarla
Deje secar el área limpiada y desinfectada y luego proceda con la ubicación de los enseres.
LAVADO DE MATERIAL DE VIDRIO
MATERIALES NECESARIOS
>
>
>
>
>
Guantes, delantal protector, tapabocas.
Hipoclorito de Sodio Concentrado según uso interno ( realizar preparación diaria diluida)
Recipientes adecuados para remojo, inactivación, lavado, descarte, incineración y autoclavado.
Detergente Biodegradable neutro.
Agua de grifo y destilada
TIPO DE MATERIAL
>
>
>
>
>
>
Tubos de Vidrio
Tubos plásticos
Láminas
Laminillas
Puntas plásticas
Pipetas de vidrio
ESE Departamental Solución
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Versión 2
MANUAL PARA LIMPIEZA Y DESINFECCION
EN EL LABORATORIO CLINICO
Código
MN-LAB-10
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
244
Documento
Controlado
ESE Departamental Solución
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Versión 1
MANUAL DE NO REUSO DE DISPOSITIVOS
EN EL SERVICIO DE LABORATORIO CLINICO
Código
MN-LAB-11
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
245
Documento
Controlado
MANUAL DE NO REUSO DE DISPOSITIVOS
EN EL SERVICIO DE LABORATORIO CLINICO
ESE Departamental Solución
salud
Versión 1
MANUAL DE NO REUSO DE DISPOSITIVOS
EN EL SERVICIO DE LABORATORIO CLINICO
Código
MN-LAB-11
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
246
Documento
Controlado
OBJETIVO
Contar y mantener limpio y en óptimas condiciones el material de vidrio requeridos para la prestación del
servicio de laboratorio clínico, en el centro de atención.
ALCANCES
Aplica para el personal que labora en el servicio de laboratorio clínico del centro de atención.
RESPONSABLES
Es responsabilidad de la auxiliar de enfermería y/o Bacterióloga del laboratorio clínico.
GENERALIDADES
Como política de la institución en el centro de atención, no se reutilizan elementos Corto punzantes como
agujas, jeringas, lancetas o guantes y otros elementos que generen riesgo alguno, garantizando así la
seguridad de los usuarios que utilizan el Servicio.
El material que se reutiliza es el de vidrio, puntas, láminas y laminillas, el cual se le hace lavado, y control de
calidad, para determinar que no cuente con elementos que puedan generar interferencias, como grasa o
detergente.
Siempre se utilizan láminas nuevas para el montaje de las baciloscopias, evitando así el reporte de falsos
positivos.
Las puntas se desechan aproximadamente a los 2 meses de uso, o cuando no toman la cantidad adecuada de
muestra.
LAVADO DE MATERIAL DE VIDRIO
MATERIALES NECESARIOS
>
>
>
>
>
Guantes, delantal protector, tapabocas.
Hipoclorito de Sodio Concentrado según uso interno ( realizar preparación diaria diluida)
Recipientes adecuados para remojo, inactivación, lavado, descarte, incineración y autoclavado.
Detergente Biodegradable neutro.
Agua de grifo y destilada
TIPO DE MATERIAL
>
>
>
>
>
>
Tubos de Vidrio
Tubos plásticos
Láminas
Laminillas
Puntas plásticas
Pipetas de vidrio
ESE Departamental Solución
salud
Código
MN-LAB-11
Versión 1
MANUAL DE NO REUSO DE DISPOSITIVOS
EN EL SERVICIO DE LABORATORIO CLINICO
Fecha Vigencia
27/03/2011
Página
247
Documento
Controlado
PASOS A SEGUIR
1. REMOJO DEL MATERIAL
Antes de iniciar con el lavado tenga en cuenta que en cada sección se disponga de los recipientes con
hipoclorito diluido (preparación diaria según tablas de uso que se encuentran en la cartelera), para descartar el
material ya usado, eso facilita el estar clasificado, por ello no se recomienda revolver el material.
Vierta el material a remojo en el recipiente adecuado en el área de lavado y déjelo mínimo 20 minutos,
devuelva el recipiente primario al área donde lo tomó, pero tenga en cuenta de colocarle nuevamente agua con
hipoclorito diluido para el material que está pendiente por salir.
2.
LAVADO DE MATERIAL
Cuando vaya a lavar hágalo en forma ordenada con cuidado.
>
Descartar el agua de remojo y sumergir en detergente biodegradable así:
>
Material de Vidrio muy sucio o manchado: déjelo en la solución por 1 hora
> Material Sucio: sumerja el material en detergente biodegradable al 2% por 30 minutos máximo.
> Material Propileno, acrílico, plástico, cuarzo: Sumergir en detergente Biodegradable de tipo neutro al
2% por 30 min.
>
Lavar con abundante agua de chorro hasta quitar exceso de detergente
>
Hacer último enjuague con agua destilada
3. CONTROL DE CALIDAD DEL MATERIAL
RESIDUOS DE DETERGENTE:
PRUEBA DEL AZUL DE BROMOTIMOL
Seleccionar un tubo de vidrio al azar después de lavado y secado, agregar al tubo seleccionado 1 ml de agua
destilada y 1 gota de azul de bromotimol, el color de la reacción debe ser amarillo.
Si el color da azul a verde indica que los tubos quedaron con residuos de detergente, entonces se debe realizar
el control a otros tubos. Si persiste el indicador se realizara nuevamente el lavado de todo el material.
REGISTROS DE CALIDAD
·
Registro de limpieza y desinfección del material de vidrio.
·
Registro de control de calidad de detergente en el material de vidrio
BIBLIOGRAFIA
· Bioseguridad en laboratorios de microbiología y biomedicina, 4 edición, Centro de Control y Prevención de
Enfermedades, CDC. 2008.
· Manual de Bioseguridad en el Laboratorio, 3 edición, Organización Mundial de la Salud, OMS. 2008
· Curso de gestión de calidad para laboratorios, Módulo 11: Bioseguridad, Organización Panamericana de la
salud. 2009