CARACTERIZACIÓN BIOLÓGICA Y EPIDEMIOLÓGICA DE MICROORGANISMOS FITOPATÓGENOS ASOCIADOS AL CULTIVO DE MORA SIN TUNA (Rubus glaucus Benth) EN EL DEPARTAMENTO DE RISARALDA JUAN DIEGO RINCÓN LÓPEZ CORPORACIÓN UNIVERSITARIA SANTA ROSA DE CABAL UNISARC FACULTAD DE CIENCIAS AGRÍCOLAS PROGRAMA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA SANTA ROSA DE CABAL 2014 CARACTERIZACIÓN BIOLÓGICA Y EPIDEMIOLÓGICA DE MICROORGANISMOS FITOPATÓGENOS ASOCIADOS AL CULTIVO DE MORA SIN TUNA (Rubus glaucus Benth) EN EL DEPARTAMENTO DE RISARALDA JUAN DIEGO RINCÓN LÓPEZ Trabajo de grado presentado como requisito parcial para optar por el título de Ingeniero Agrónomo Directora MÓNICA BETANCOURT VÁSQUEZ Ph.D. CORPORACIÓN UNIVERSITARIA SANTA ROSA DE CABAL UNISARC FACULTAD DE CIENCIAS AGRÍCOLAS PROGRAMA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA SANTA ROSA DE CABAL 2014 2 Rincón, 2014 TABLA DE CONTENIDO Pág. 1. 2. 2.1 2.2 3. 3.1 3.1.1 3.1.2 3.1.3 3.1.4 3.2 3.2.1 3.2.2 3.2.3 3.2.4 3.3 3.3.1 3.3.2 3.3.3 3.3.4 3.3.5 4. 4.1 4.2 4.2.1 4.2.2 4.2.3 4.2.4 4.2.5 4.2.6 4.3 RESUMEN INTRODUCCIÓN JUSTIFICACIÓN OBJETIVOS OBJETIVO GENERAL OBJETIVOS ESPECÍFICOS REVISIÓN DE LITERATURA MORA DE CASTILLA (Rubus glaucus Benth) Origen y taxonomía de la mora Descripción mora sin tuna Fenología del cultivo Condiciones ambientales DESCRIPCIÓN DE LOS PATÓGENOS ASOCIADOS AL CULTIVO DE MORA Mildeo velloso (Peronospora sparsa Berk) Moho gris (Botrytis cinerea Pers. ex. Fr.) Antracnosis, Muerte descendente o secadera (Colletotrichum gloesporioides Penz. y Sacc.) Mildeo polvoso (Oidium sp.) ENFERMEDADES DE BAJA PREVALENCIA EN EL CULTIVO DE MORA Marchitamiento (Verticillium sp.) Roya (Gerwasia lagerheimii (Magnus) Buriticá) Pudrición de la corona (Phytophthora sp.) Agalla de la corona (Agrobacterium sp.) Marchitez y pudrición de las raíces (complejo Verticillium sp., Fusarium sp. y Rosellinia sp.) MATERIALES Y MÉTODOS RECOLECCIÓN DE MATERIAL VEGETAL AISLAMIENTO DE LOS PATÓGENOS Protocolo desinfestación Aislamiento de agentes fitopatógenos Cultivos monospóricos Cámaras húmedas Pruebas de patogenicidad Identificación de los microorganismos DETERMINACIÓN DE NIVELES DE INCIDENCIA Y SEVERIDAD EN CAMPO 6 13 14 15 16 17 18 21 25 28 32 33 34 35 36 37 38 39 40 Rincón, 2014 4.4 5. 5.1 5.1.1 5.1.2 5.1.3 5.1.4 5.1.5 5.2 5.2.1 5.2.2 5.2.3 5.3 5.3.1 5.3.2 5.4 6. 7. SEGUIMIENTO EPIDEMIOLÓGICO RESULTADOS Y DISCUSIÓN DESCRIPCIÓN DEL SÍNTOMA, AGENTE CAUSAL, BIOLOGÍA Y MORFOLOGÍA Necrosis de tallos, hojas, botones florales, flores y frutos Pudrición en frutos Deformación y maduración heterogénea de frutos, coloración violeta de tallos Encrespamiento en hojas Marchitamiento generalizado de la planta DESCRIPCIÓN DE SÍNTOMAS EN PRUEBAS DE PATOGENICIDAD Pruebas de patogenicidad para Botrytis cinérea Pruebas de patogenicidad para Peronospora Pruebas de patogenicidad para Colletotrichum sp. SEGUIMIENTO EPIDEMIOLÓGICO Escalas de severidad Seguimiento epidemiológico y su relación con las condiciones climáticas STATUS FITOSANITARIO EN RISARALDA CONCLUSIONES RECOMENDACIONES BIBLIOGRAFÍA 7 43 48 49 51 53 55 56 57 58 61 64 66 67 Rincón, 2014 LISTA DE TABLAS Pág. Tabla Tabla Tabla Tabla Tabla Tabla Tabla 1 2 3 4 5 6 7 Tabla Tabla Tabla Tabla Tabla Tabla 8 9 10 11 12 13 Taxonomía mora de castilla Clasificación de Peronospora sparsa Clasificación Botrytis cinerea Pers. Clasificación Colletotrichum sp. Clasificación taxonómica Oidium sp. Predios y municipios de recolección de muestras Fincas muestreadas para determinación de niveles de incidencia y severidad en Risaralda Grados de severidad para Colletotrichum sp. en tallos Grados de severidad para Peronospora sp. en frutos Grados de severidad para Oidium sp. en hojas Grados de severidad para Botrytis sp. en frutos Grados de severidad para Botrytis sp. en flores Medición de parámetros epidemiológicos para cada patógeno en la finca La Florida 8 15 19 23 27 30 36 40 59 59 60 60 61 61 Rincón, 2014 LISTA DE FIGURAS Pág. Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura Figura 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 Morfología de la planta de mora Ciclo de desarrollo del cultivo de la mora Ciclo de vida Peronospora sp. Ciclo de vida Botrytis cinerea Ciclo de vida Colletotrichum gloesporioides Ciclo de vida Oidium sp. Protocolo de desinfestación de las muestras Cultivo monosporico: Botrytis cinerea Preparación de cámaras húmedas Formas de inoculación en pruebas de patogenicidad Parcela demostrativa de mora sin tuna Formato seguimiento epidemiológico en campo Necrosis en tallos, hojas, flores y frutos Estructuras de Colletotrichum spp. Crecimiento de Colletotrichum spp. en medio de cultivo Estructuras reproductivas por microscopía de Colletotrichum spp. Asociación de conidias de Colletotrichum spp. con bacterias Pudrición y momificación de frutos Crecimiento en medio de cultivo y caracterización morfológica Maduración heterogénea y coloración violeta en tallos Crecimiento en medio de cultivo Crecimiento en cámara húmeda y caracterización morfológica Encrespamiento y clorosis de las hojas Caracterización de Oidium sp. Marchitamiento vascular de plántulas de mora Aislamiento de raíz en medio de cultivo Caracterización morfológica de los agentes causales Pruebas de patogenicidad Botrytis cinérea Prueba de patogenicidad: Peronospora sparsa Pruebas de patogenicidad para Colletotrichum sp. Escala de severidad para Colletotrichum sp. en tallo Escala de severidad para Colletotrichum sp. en botones florales Escala de severidad para Peronospora sparsa en frutos Escala severidad para Oidium sp. en hojas Escala severidad para Botrytis cinerea en frutos Escala de severidad para Botrytis cinerea en flores Relación de Colletotrichum sp. vs humedad, precipitación y temperatura Relación de Peronospora sparsa vs humedad, precipitación y temperatura Relación de Oidium sp. vs humedad, precipitación y temperatura Relación de Botrytis cinerea vs humedad, precipitación y temperatura Niveles de incidencia y severidad de patógenos en mora por cada municipio 9 16 17 21 25 28 31 37 38 38 39 41 42 44 45 46 47 47 48 49 50 50 51 52 53 54 54 55 56 56 57 58 58 59 59 60 61 62 62 63 63 64 Rincón, 2014 RESUMEN El cambio del material de siembra de mora con tuna a su homologo sin espinas, ha generado la necesidad de estudiar el comportamiento de las enfermedades presentes en la actualidad, las cuales han sido controladas y tratadas en base a los paquetes tecnológicos implementados en el pasado, siendo una incógnita la etiología, comportamiento y la manifestación de síntomas de las mismas en el nuevo material de trabajo. Se realizó en el laboratorio de sanidad vegetal de UNISARC el estudio y la siembra en medio de cultivo de diversas estructuras vegetales afectadas por posibles patógenos, reconociendo mediante microscopía su agente causal. De igual manera, se procedió a la inoculación de plantas sanas con los microorganismos anteriormente obtenidos, para analizar la manifestación y el inicio de los síntomas, posteriormente se realizó escalas de severidad las diversas enfermedades, facilitando la identificación en campo y la cuantificación del problema sanitario en el mismo, mediante seguimientos epidemiológicos en siete (7) municipios y su relación con variables climatológicas en unas de estas localidades. Se identificaron los patrones de desarrollo de los principales patógenos limitantes en el cultivo de mora y se establecieron escalas de severidad para su identificación en campo. Del mismo modo se identificaron los patógenos más limitantes del cultivo de la mora sin tuna en Risaralda siendo Oidium sp., Peronospora sparsa y Colletotrichum spp. tanto por sus niveles de incidencia y severidad como por la intensidad del daño en el cultivo Palabras claves: cultivo de mora sin tuna, enfermedades, síntomas, inoculación, problema sanitario, patógenos ABSTRACT Changing the planting material dwells with thorn its lacking counterpart. These have generated to study the behavior of diseases present today, which have been controlled and treated on the basis of technological packages implemented in the past still unknown etiology, behaviors and reported symptoms of the same in the new work material. I was done in the laboratory of plant health Unisarc to study the planting medium various plant structures affected by potential pathogens recognizing its causative agent by microscopy. Similarly, we proceeded to the inoculation of healthy plants with microorganisms previously obtained to analyze the event and the onset of symptoms, then scaled the diverse disease severity was performed facilitating field identification and quantification of the health problem in the same, through epidemiological monitoring in seven (7) municipalities and their relationship with climatic variables in one of these locations. Development patterns of the major limiting pathogens in mulberry cultivation were identified and severity scales for identification in the field were established. Similarly the limiting pathogens were identified blackberry cultivation without thorn in Risaralda being Oidium sp., Peronospora sparsa y Colletotrichum spp. both their incidence and severity levels and the intensity of crop damage. Key words: culture of default without tuna, pathogenic, diseases, symptoms, inoculation, sanitary problem 10 Rincón, 2014
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