1. No category

Los Probióticos: selección, uso
resultados de campo.
Sonnya Mendoza L. M.Sc.
PEDERNALES 2015
Temperatura/producción
Chavarría, 2003
Enfermedades
Bacterianas
• Vibriosis (Vibrio spp.)
• Necrosis del hepatopáncreas
• Ricketsias
Mycobacterias
Micosis larval
.
Comensales y Parásitos
No Infecciosas
• Nutricionales
• Toxinas Naturales
Toxinas artificiales
• Genética
• Ambientales
Probióticos

Las primeras definiciones Parker (1974): “Organismos y sustancias
que contribuyen al balance microbiano intestinal”

Posteriormente Fuller (1989): “Suplemento alimenticio microbiano
vivo que afecta beneficiosamente el animal mejorando su balance
intestinal microbiano”

Gatesoupe (1999) sugiere una definición alternativa:
“Células microbianas que son administradas de modo que entran al
tracto gastrointestinal y se mantienen vivas con el objetivo de
mejorar la salud”.

Finalmente Verschuere (2000) nos da una definición amplia:
“
Suplemento microbiano vivo que tiene un efecto beneficioso
sobre el huésped, modificando la comunidad microbiana del
ambiente asociada al huésped, asegurando un mejor uso del
alimento o mejorando su valor nutricional, mejorando la respuesta
del huésped hacia las enfermedades o mejorando la calidad de su
ambiente”
Probióticos
Según diversos autores, el probiótico
ideal destinado al consumo por el hombre o
los animales debería ser en primer lugar de
origen humano o animal respectivamente, ya
que algunas acciones de estos cultivos vivos
son específicos para el huésped del que han
sido aislado.
Prebiótico.
Ingredientes no digeribles de los alimentos que
afectan beneficiosamente al huésped por una
estimulación selectiva del crecimiento y/o actividad
de una o un limitado grupo de bacterias favorecen de
forma selectiva el desarrollo de bacterias no
patógenas, frente a aquellas causantes de patología
en el hombre o en los animales.
Tratamientos microbianos
Preparación Microbiana
Antagonista a patógenos
Residente en el tracto
Si
No
Biocontrol Probióticos
Mejora calidad de
ambiente
BIOREMEDIACION
Forma y color?
Fotos CENAIM
Mecanismos de Acción
de Probióticos
Producción de compuestos
inhibidores
Las bacterias pueden liberar sustancias
químicas con efectos bactericidas o
bacteriostáticos.
Sustancias: antibióticos, bacteriocinas,
sideróforos, lisozimas, proteasas,
peróxido de hidrógeno, ácidos orgánicos.
Cepas como Lactobacilos acidofilos
producen antibióticos :
acidophilis,lactolin,acidolin
( enterobacterias E.
coli,salmonelas,typhimorium,stafilococus
aureos y clostridium perfringes))
Halos de Inhibición y crecimiento



Bacterias Lácticas Producen
bacteriocinas, la mayoría contra
Gram+
 Patógenos en Acuicultura Gram(Mayoría)
Bacterias marinas productoras de
inhibidores de proteasas
(monastatina).
Producción de enzimas
bacteriolíticas.
Competencia por Químicos
energía disponible

Los microorganismos en el ambiente están en una
competencia por fuentes de carbono y energía.(Rico-Mora
et al;1998)Artemia,9 cepas V .proteolticus. Sitios de
adhesión

Algunas bacterias no producen compuestos inhibidores pero
pueden competir aprovechando sustratos que no son
disponibles para otras bacterias.

Presencia de sideróforos mecanismo de virulencia en bact
patógenoas. (Gram et al;1999), disolver hierro precipitado
y hacerlo disponible para crecimiento bacteriano.

Requerimiento por hierro alto en algunos patógenos Ej.
Sobrenadante de Pseudomonas sp. para control de V.
anguillarum
Absorción de Nutrientes

-
La colonización del tracto digestivo es
importante en la asimilación del alimento por
síntesis enzimática celulolitica y amylolytica
que ayudan a la digestión. (Fuller 1999).
Debido a que la flora bacteriana en
crustáceos
es
efímera
puede
cambiar
rápidamente ya que el tiempo de tránsito es
corto( Jorquera et al.,2001). los probióticos
para este fín, deben ser cuidadosamente
seleccionados
Competencia por sitios
de adhesión
Dado que es importante la adhesión en los
estadios iniciales de una infección por
patógenos, la competencia por
receptores para adherirse podría ser uno
de los efecto deseado en un probiótico.
Ej: Bacillus sp produce bacteriocinas e
inmunoestimula
( Cherif et al; 2001)
Vine et al;Bairagi et al; 2004 demuestran
que uso de probioticos elimina la fijación
de patógenos mucus intestinal de peces.
Mejora en la respuesta inmune
Inmunoestimulantes son compuestos
químicos que pueden activar el sistema
inmune de los animales haciéndolos
mas resistentes a infecciones por virus,
hongos, bacterias o parásitos.
 Lipopolisacáridos (LPS) y
peptidoglicanos son constituyentes
de las paredes bacterianas, y
pueden actuar como
inmunoestimulantes en el huésped
(Newman,2000,Gulliam, 2004;
Durand, 2000).
 Inmunoestimulación P. monodon,
(Rengpipat, 2000)
Mejora la calidad del ambiente
En general las bacterias Gram+ son mas
eficientes que las Gram- en convertir
materia orgánica.
 A pesar de esto hay muchos
reportes de Bacillus spp.,
Pseudomonas, Nitrobacter, etc
que no confirman esto, pues hay
datos no concluyentes.(Shariff,
2001).
Vía Preventiva
PROBÓTICOS
-No provocan resistencia.
-No restricciones en uso (todavía….)
-Costo medio.
-Facilidad de aplicación.
-Diversos mecanismos de acción.
-“Amigable con el medio”.
- Reemplazo de los antibióticos
Géneros más usados
Géneros más usados
Bacterias en productos locales
•Bacillus subtilis
•Bacillus sp.
•Bacillus brevis
•Bacillus circularis
•Bacillus amyloliquefaciens
•Bacillus couagulans
•Bacillus firmus
•Bacillus halodenitrificans
•Bacillus laterosprorus
•Bacillus lichiniformis
•Bacillus megaterium
•Bacillus natio
•Bacillus mycoides
•Bacillus pasteurri
•Bacillus polymixa
•Lactobacillus acidophilus
•Lactobacillus plantarum
•Lactobacillus brevix
•Lactobacillus casei
•Lactobacillos sp
•Lactobacillus casei s. casei
•Lactobacillus casei
s.paracasei
•Lactobacillus casei s.
tolerans
•Lactobacilluscasei.immunitis
•Lactobacillus fermentum
•Lactobacillusjohnsonii
•Lactobacillus paracasei
•Lactobacillus reuteri
•Lactobacillus rhamnosus
•Lactobacillus salivarius
•Lactobacillusl actis
•Lactobacillus bulgaricus.
•Lactococcusspp.
• Bifidobacterium lactis
CLASIFICACION BACILOS
ACIDOFILAS:
 B. Acidocaldarius
 B Coagulans
 B. Polymyxa
ALCALINOFILAS:
 B. Alkalophilus
 B. Pasteurri
HALOFILAS
 B. Pantothenticus
 B. Pasteurri
TERMOFILAS:
PRODUCTORAS
B. Acidocaldarius
ANTIBIOTICOS:
B. shlegelii
B. brevis
B. stearothermophilus
B. cereus
B. circulans
DENITRIFICANTES:
B. Laterosporus
B. azotoformans
B. Pumilus
B. Cereus
B. subtilis
B. Laterosporus
B. lichiniformis
B. Lichiniformis
B. Polymixa
B. Pasteurri
B. stearothermophilus
PSICROTROFAS
 B. Globisporus
 B. Insolitus
 B. Marinus
 B. Macquariensis FIJADORAS DE
 B. Megaterium
B. macerans
 B. polymixa
B.
polymyxa
N2:
Bacterias Bioremediadoras
BIOREMEDIACION
• Bacterias Nitrificantes
•Bacterias Desnitrificantes
•Bacterias fotosintéticas
CONTROL DE
ENFERMEDADES
• Lactobacillus sp.
•Carnobacterium sp.
•Vibrios alginolyticus.
•Bacillus sp.
•Pseudomonas sp.
DETRITUS ORGANICO
• Bacillus subtilis
•Bacillus lichiniformis
•Bacillus ereus
•Bacillus coagulans
•Phenibacillus polymyxa
•Lactobacillus
COMPUESTOS NITROGENADO
Oxidadores de amonio
•Nitrosomonas
•Nitrosococcus
•Nitrosovibrio
•Nitrolobus
•Nitrospira
Manejo adecuado de Probióticos

Su cinética Bacteriana

Aplicación directa para evitar contaminación

Tiempo de fermentación

Fuente de carbono u otros nutrientes

Tiempo de almacenamiento de la cepa y en cada uno de
los pasos siguientes a la activación.

La higiene es muy importante

La constancia en su uso

El pH es una herramientas clave mas no definitoria para
el control y manejo de los probióticos.
Selección de Cepas Probióticas según
capacidad antagónica
Bacterias mas agua de peptona 2 horas enriquecidas.
10gr-90ml.
Concentración en UFC-gr.
CODIGO DEL CLIENTE
CODIGO NG
Aerobios
ufc/gr
Probiotico 1
Probiotico 2
Probiotico 3
Probiotico 4
Probiotico 5
Probiotico 6
Probiotico 7
SSA-1537-01
1.4 x 10 9
SSA-1537-02
1.6 x 10
9
SSA-1537-03
3.5 x 10 10
SSA-1537-04
2.2 x 10 10
SSA-1537-05
1.1 x 10
9
SSA-1537-06
1.0 x 10
8
SSA-1537-07
1.0 x 10 10
CODIGO DEL CLIENTE
CODIGO NG
Probiotico 8
Probiotico 9
Probiotico 10
Probiotico11
Probiotico 12
Probiotico 13
Probiotico 14
SSA-1537-01
Aerobios
ufc/gr
2.1 x 10 7
SSA-1537-02
9
SSA-1537-03
1.0 x 10
1.5 x 10 5
SSA-1537-04
4.2 x 10 9
SSA-1537-05
1.1 x 10 8
SSA-1537-06
1.9 x 10
8
SSA-1537-07
5.7 x 10 10
Antagonismo de probióticos con Vibrios
luminiscentes
Capacidad antagónica por cepas
Mediana
M
Grande
G
Cremosa Concova
CC2
Cremosa Mediana
CM2
Cremosa Pequeña Irizoide
CPI
BACTERIA D
BACTERIA E
Cepas Pequeña
P
negativo
negativo
negativo
3 mm
2 mm
2 mm
6 mm
4 mm
4 mm
negativo
negativo
3 mm
3 mm
3 mm
3 mm
4 mm
Bacteria F
negativo
Cepas Grandes
G
negativo
negativo
Resultados Antagónicos de Pobióticos contra Vibrio
harveyi.
Enfermedades Bacterianas
En el Laboratorio
Factores que las favorecen:
Mala calidad por







Nauplios contaminados
Algas contaminadas
Artemia mal desinfectada
Bajas temperaturas
Alta carga bacteriana
Uso indebido de productos
Manejo deficiente






Altas densidades
Problemas con la alimentación
Stress
Tratamientos no efectivos
Poco recambio de agua
Mareas Rojas
Patogenicidad de Vibrios

NO
Grupo de bacterias aislados que tienen
características en común y diferentes, a otras
cepas, pero pertenecientes a la misma especie
por compartir caracteres en común
hay especies patógenas
Si hay Cepas patógenas
Está medida por factores ambientales
 ( Temperatura, salinidad )


Oportunistas y probablemente
patógenos primarios

Color no es Patogenicidad. Melaza ?

Post Larvas de camarón
Con laceración en pleopodos
Necrosis
Hemolinfa negativo
Gomez 2007
Para ECUADOR.
10(4)
Análisis Microbiológicos de Larvas
LARVAS
AGAR TCBS
AGAR
CETRIMIDE
Laboratorio 1
1.9 x 10
3
Negativo
Laboratorio 2
2.7 x 104
Negativo
Laboratorio 3
1.8 x 105
Negativo
Laboratorio 4
7.0 x 10
5
2.1 x 10
2
Laboratorio 5
2.0 x 10
5
3.9 x 10
2
Laboratorio 6
2.0 x 10
5
2.1 x 10
2
Laboratorio 7
3.0 x 10
5
Laboratorio 8
8.0 x 10
5
3.8 x 10
2
Laboratorio 9
4.0 x 10
6
3.5 x 10
1
Laboratorio 10
5.1 x 10
4
2.7 x 10
1
Laboratorio 11
2.1 x 10
4
Negativo
Laboratorio 12
4.7 x 10
4
Negativo
Mendoza, 2013
Negativo
Análisis Microbiológicos de Larvas
Mendoza, 2013
AGUA
AGAR TCBS
AGAR CETRIMIDE
PL 1
104
Negativo
PL 2
104
Negativo
PL 3
2.1 x104
Negativo
PL 4
5.2 x 10
3
Negativo
PL 5
3.4 x 104
1.6. x 10
PL 6
1.8 x 105
Negativo
PL 7
1.4 x 10
5
1.2. x 10
PL 8
1.3 x 10
5
Negativo
PL 9
2.2 x 10
6
Negativo
PL 10
7.4 x 10
6
2.5 x 10
2
PL 11
1.4 x 10
6
9.6 x 10
2
PL 12
4.4 x 10
6
1.2. x 10
1
1
1
Análisis Microbiológicos de Algas
AGUA
TCBS
Lab. 1
10
2
Negativo
Lab. 2
10
2
Negativo
Lab. 3
10
2
Lab. 4
1.4 x 10
2
Negativo
Lab. 5
2.5 x 10
3
6.1 x 103
Lab. 6
1.0 x 10
4
Negativo
Lab. 7
1.4 x 10
5
1.7 x 10
2
Lab. 8
2.1 x 10
4
1.2 x 10
1
Lab. 9
1.8 x 10
6
3.1 x 10
2
Lab. 10
2.3 x10
3
Lab. 11
10
3
Negativo
Lab. 12
10
2
Negativo
Mendoza, 2013
CETRIMIDE
1.4 x 10
2
Negativo
Análisis Microbiológicos Artemia
AGUA
TCBS
TSA
Lab. 1
1.4 x 10
5
1.4 x 10
7
Lab. 2
2.5 x 105
2.5 x 10
8
Lab. 3
3.2 x 10
4
3.2 x 10
6
Lab. 4
4.1 x 10
6
4.1 x 10
6
Lab. 5
3.7 x 10
5
3.7 x 10
8
Lab. 6
10
Lab. 7
1.4 x 10
5
1.4 x 10
7
Lab. 8
2.1 x 10
4
2.1 x 10
4
Lab. 9
1.8 x 10
6
1.8 x 10
6
10
5
Lab. 10
2.4 x 104
Lab. 11
4.1 x10
Lab. 12
10
Mendoza, 2013
5
5
7
1.2 x 107
108
108
1 gr. Por libra
Daños Provocados por bacterias
Monitoreo Mar Bravo
PROMEDIO DE BACTERIAS POR FECHA Y ESTADIO
1,00E+09
1,00E+08
UFC/GR
1,00E+07
1,00E+06
Promedio de Bacterias totales
1,00E+05
Promedio de Vibrios totales
1,00E+04
Promedio de Aeromonas
1,00E+03
Promedio de Pseudomonas
1,00E+02
1,00E+01
Z1
07abr
N5
Z1
10-abr
Z2
M2
PL1
13-abr
N5
Z2
M3
16-abr
PL1
PL2
Z2
Z3
PL2
PL3
20-abr
ESTADIOS POR FECHA
N5
PL2
PL6 PL10 PL12 PL13 M2
27-abr
PL1 PL10 PL11
04-may
Monitoreo Mar Bravo
VIBRIOS PRESENTES POR ESTADIO/FECHA
1,00E+07
1,00E+06
Suma de Vibrios totales
UFC/GR
1,00E+05
Promedio de Vibrios (colonias
amarillas)
1,00E+04
1,00E+03
Promedio de Vibrios (colonias
verdes)
1,00E+02
Promedio de Vibrios (colonias
luminiscentes)
1,00E+01
Z1
07abr
N5
Z2
Z1 M2 PL1 N5
10-abr
13-abr
Z2 M3 PL1 PL2 Z2 PL2 Z3 PL3 N5 PL2 PL6 PL10 PL12 PL13 M2 PL1 PL10 PL11
16-abr
20-abr
ESTADIO POR FECHA
27-abr
04-may
Ca le n da r io de a gu a j e s y fa se lu n a r 2 0 1 5
Lu n a
nueva
Mes
Cu a r t o
cr e ci e n t e
Lu n a
lle n a
Cu a r t o
m enguante
P e r ig e o
Ag u a j e s
ENERO
20
26
4
13
21
5, 6, 7
21, 22, 23, 24
FEBRERO
18
25
3
11
19
4, 5, 6
19, 20, 21, 22
MARZO
20
27
5
13
19
6, 7, 8
21, 22, 23, 24
ABRIL
18
25
4
11
16
5, 6, 7
19, 20, 21, 22
MAYO
17
25
3
11
14
4, 5, 6, 18, 19, 20, 21
JUNIO
16
24
2
9
9
3, 4, 5, 17, 18, 19
JULIO
15
23
1, 31
8
5
2, 3, 4, 5, 16, 17, 18
AGOSTO
14
22
29
6
2, 30
1, 2, 3, 4, 15, 16, 17
30, 31
SEPTIEMBRE
13
21
27
5
27
1, 2, 28, 29, 30
14, 15, 16
OCTUBRE
12
20
27
4
26
1, 28, 29, 30, 31
13, 14, 15
NOVIEMBRE
11
19
25
3
23
12, 13, 14, 26, 27, 28,
29
DICIEMBRE
11
18
25
3
21
12, 13, 14, 26, 27, 28,
29
NOTA: Los días que están resaltados en NEGRILLA son los máximos ag
INOCAR.
Estrategias Profilácticas
Estadios
N5
1,
Z1
Z2
Z3
M1
M2
M3
Pl1
Pl2
Pl3
Pl4
Pl5
Pl6
Pl7
Pl8
Pl9
Pl10
Pl11
Pl12
Acido orgánico
ML por Ton
2
5
5
5
3
3
3
3
3
3
3
4
4
5
5
5
5
5
5
Probiótico solo
ml. por Ton
6
8
8
8
8
8
8
5
5
5
5
5
5
5
5
5
5
5
5
Acido orgànico mas
Probiótico
Ml/gr. por Ton.
3a3
5a3
5a3
5a3
3a2
3a2
3a2
3a2
3a2
3a2
3a2
5a2
5a2
5a2
2a2
2a2
2a2
2a2
2a2
Resultados
Acido orgànico solo
Probiótico solo
Acido orgànico mas
Probiótico
Supervivencia %
Supervivencia %
Supervivencia %
Lab 1
75
65
90.
Lab 2
90
70
95.
Lab 3
85
68
90.
Estadios
1. Se debe tomar en consideración el mecanismo de
acción de las bacterias, esta debe ser antagónica
contra bacteria patógenas
5. La mezcla del ácido orgánico y la bacteria
Probiótica producen sinergia
Enfermedades Bacterianas
En la camaronera
Factores que las favorecen:
Mala calidad por








Materia orgánica
Sólidos suspendidos
Desechos nitrogenados
Bajo oxígeno
Altas temperaturas
Altas salinidades
Alta carga bacteriana
Manejo deficiente
Altas densidades
 Problemas con la alimentación
 Malos Diagnósticos
 Tratamientos no efectivos

Exámen macroscópico
Signos externos : PRESUNTIVOS
1. Signos en la piscina
• Presencia de mortalidad
• Presencia de aves
2. Signos externos en los camarones
• Nado errático superficies u orillas
• Letargia
• Manchas blancas
• Segmento abdominal blanco u opaco
• Cola y pleópodos rojos
• Tracto no lleno, reducción o cese
alimentación
• Deformaciones en exoesqueleto o rostrum
• Acalambramiento
• Antenas rotas
Indicativos del estado de salud
Vibriosis
Síndrome de la Gaviota

Letargia, inapetencia, movimientos
natatorios desorientados.

Musculatura opaca y blanquecina,
lesiones cuticulares en los extremos
ventrolaterales.

Melanización en filamentos branquiales

Gregarinas (parásitos presentes en
animales afectados)

Retraso en coagulación de la hemolinfa,
pérdida del color azulado.

Enrojecimiento de periópodos y
pleópodos.
Tomado de Dr. D. V. Lightner, 1996 (Handbook of Shrimp Pathology)
Hepatopancreatítis necrotizante (NHP)
Tejidos afectados:
- Epitelio y túbulos del HP.
Transmisión:
- Horizontal: Canibalismo
- Vertical: Análisis positivos en
ovas analizadas por pcr.
HP pálido, túbulos
melanizados, textura suave.
No existen lineas celulares
en camarones para su
aislamiento
Confusión del Diagnóstico
en campo:
1.
2.
3.
4.
Sub alimentación
Gregarinas
Vibriosis
Bacterias Intracelulares
Prevención y control:
Manejo adecuado de Probióticos

Su cinética Bacteriana

Aplicación directa para evitar contaminación

Tiempo de fermentación

Fuente de carbono u otros nutrientes

Tiempo de almacenamiento de la cepa y en cada uno de
los pasos siguientes a la activación.

La higiene es muy importante

La constancia en su uso

El pH es una herramientas clave mas no definitoria para
el control y manejo de los probióticos.
Levante de Probióticos en campo
Levante de Bacterias 100 lts.
Minerales Aditivos Vitaminas Agua
25g
25g
3g
100lt
Melaza
Probiótico
2 kg.
30g
1,40E+06
6,00E+08
1,20E+06
5,00E+08
1,00E+06
4,00E+08
horas
2
4
6
12
levaduras
1,10E+05
8,50E+04
1,25E+05
1,45E+05
bacilos %
7,07E+07
8,11E+07
7,64E+07
8,89E+07
20
24
27
1,45E+05
1,30E+06
6,00E+05
3,13E+08
4,86E+08
3,79E+08
8,00E+05
3,00E+08
6,00E+05
2,00E+08
4,00E+05
1,00E+08
2,00E+05
0,00E+00
0,00E+00
2
4
6
12
levaduras
20
bacilos
24
27
Camaronera Puná
CSA
SUPERV.
33,3%
28,0%
44,0%
35,2%
Peso
14,2
14,5
14,0
14,2
FCA
1,07
1,29
1,05
1,10
LB/HA
1.252
1.069
1.645
1.322
SIN Probioticos
SUPERV.
Peso
43,2%
13,7
15,6%
13,5
40,5%
11,0
32,6%
12,80
FCA
0,76
1,04
1,53
1,06
LB/HA T. Lbs Cam
1.460
11.025
557
3.955
1.182
7.020
1.068
22.000
Siembra Julio 2003 en 3 Ps (19ha) c/u
 120.000/ha
 Ciclo de 122-126 alimentadas con 15% Proteína

T. Lbs Cam
11.610
4.620
8.869
25.099
Camaronera Guayas
Tratamiento
CSA
CSA + Prob L
Prob F + Prob L



Produccion
(lb/ha)
1366,0
1346,0
1397,0
Siembra 20 Jul a 13 Sept. 2006
100.000/ha
Ciclo de 135 días
Peso
(g)
14,2
15,0
13,9
Crecimiento
(g/semana)
0,7
0,8
1,0
Supervivencia
(%)
45,1
37,6
20,3
FCA
1,3
1,2
1,4
Época Cálida
 85 días de cultivo.
 Febrero-Abril.

Cedeño (2007)
animales/m2: 16
Bacteria 1ml/kg
Conc final. 2,6 x 10 6 ufc/ml.
Época Fria
animales/m2: 10
99 días de cultivo.
Bacteria 1ml/kg
Mayo-Sept.
Conc final. 2,6 x 10 6 ufc/ml
12 piscinas de 0.04 ha.
PF1.Aplicación Diaria desde siembra
PF2:Aplicación diaria desde día 30 de siembra
PARAMETROS DE PRODUCCION
Tasa de Supervivencia (%)
Densidad de Siembra (m2)
Densidad de Cosecha (m2)
Peso Promedio Corporal
Cosecha total
Días de cultivo
Producción (libs.Ha-1)
FCA
Cedeño (2007)
TRATAMIENTOS
Probiótico-1
Probiótico-2
Control
71.48±18
76.83±6.8
64±16
10
10
10
7.15±2
7.68±0.7
6.4±1.6
8.98±0.5
8.8±1
8.53±0.6
222
243.5
191.5
99
99
99
1387.5±369
1521.88±209
1196.88±294
1.59±0.4
1.39±0.2 a
1.82±0.5
Archipiélago Jambelí
Periodo del
Peso
Crecimiento Supervivencia Produccion Rendimiento
Año
cosecha (g) (g/semana)
(%)
(lb/ha)
(lb/ha-dia)
Oct07-Ene08
14,7
0,9
72,8
3.336
27,6
Feb08-Abr08
13,3
0,9
68,6
2.756
26,5
May08-Ago08
13,6
1,0
78,0
2.948
30,2



135.000/ha
Total 162 ha
Ciclo de 97-121 días
FCA
1,1
1,4
1,0
Puna 2008
Estacion
Peso
Crecimiento Supervivencia Produccion Rendimiento
del A–o cosecha (g) (g/semana)
(%)
(lb/ha)
(lb/ha-dia)
Verano 08
14,9
1,00
Invierno 08
16,9
0,89
 140.000/ha
 Total 236 ha
 Ciclo de 104-132 días
60,3
58,0
2.703
3.118
24,8
24,3
Estacion
Peso
Crecimiento Supervivencia Produccion Rendimiento
del A–o cosecha (g) (g/semana)
(%)
(lb/ha)
(lb/ha-dia)
invierno 08
15,9
Verano 08
13,4
 135.000/ha
 Total 200 ha
 Ciclo de 100-90 días
1,1
1,1
59,7
70,9
3.014
2.762
FCA
30,5
31,3
1,2
1,4
FCA
1,2
1,0
Densidad de
Peso
Crecimiento Supervivencia Produccion Rendimiento
siembra cosecha (g) (g/semana)
(%)
(lb/ha)
(lb/ha-dia)
247.271 CA
15,5
0,8
80,9
6.856
52,7
151.785 SA
12,6
0,9
84,6
3.613
36,4
Archipiélago Jambelí


CA: Con Aireación; 2 x 7ha; 130 días
SA: Sin Aireación; 4 x 7ha; 99 días
FCA
1,6
1,1
6.000
5.500
5.000
4.500
4.000
3.500
3.000
5.660
78
74
83
4.694
4.094
55
3.738
CAM
MEG
Camaroneras



180.000/ha
Total 556 ha
Ciclo de 115 días
100
90
80
70
67 70
3.88560
3.628
50
40
VAL
Supervivencia (%)
Biomasa (lb/ha)
Resultados de Campo
Biomasa (lb/ha)
4.500
4.335
4.000
3.500
3.000
3.498
73
74
3.190
69
2.500
CAM
MEG
Camaroneras



184.000/ha
Total 112 ha
Ciclo de 169-209 días
VAL
100
95
90
85
80
75
70
65
Supervivencia (%)
Resultados de Campo
Recirculación Intensivo
Ha
PSC
Fecha
siembra
Fecha pesca
Días de
cultivo
Pesca
Libras
libras gramos
ha.
pesca
pesca
animales
Semana
crecimiento
FCA
7
27 27/01/2012 Madre
30/04/2012 93 días
21.400 3.057
15
647.706
1.12
1.3
7
26 20/02/2012 Hija
10/04/2012 48 días
22.700 3.242
10.08
1,022.400
1.61
0.8
7
25 26/02/2012 Nieta
30/03/2012 31 das
21.900 3.128
12.24
812.303
3.06
0.4
RECIRCULACION
densidad
200.000
Hectáreas
producidas con
ácidos Orgánicos
TOTAL animales
pescados
2,482.409
58% sobrevivencia
final
Pesca
animales
por metro 11.82
Total ha. 200 ha
Animales sembrados 4,300.000
1 kg balanceado – 100 lb camarón
25 piscinas
Bombeo 90 mil m3 diarios
Probióticos y Ácidos Orgánicos
Tratam.
Peso
Crecimient Supervivenci
cosecha (g)
o
a (%)
PROBIOTICOS
18,0 (g/semana)
1,50
78,0
Control
16,9
1,60
73,0



145.000/ha
Total 250 ha
Ciclo de 120-140días
Tratam.
PROBIOTICO
CONTROL



130.000/ha
Total 200 ha
Ciclo de 130 días
FCA
3.600
3.200
1.6
2,0
Probiotico 5000 ppm. Control Antibiótico
Cada 2 semanas
Probiótico 10 9
Peso
Crecimiento Supervivenci
cosecha (g) (g/semana)
a (%)
16,0
14,0
Produccion
(lb/ha)
1.5
1.5
67,0
70,9
Produccion Rendimiento
(lb/ha)
(lb/ha-dia)
3.014
2.762
30,5
31,3
Mezcla probiotico Ac. Org. 1500 ppm
Probióticos 10 10 Todos los días
FCA
1,2
1,0
Conclusiones y Recomendaciones

Implementar medidas
microbiológicos
de
bioseguridad
y
controles

Se debe tener claro el mecanismo de acción del
probiótico antes de su uso y evitar hacer levantes en
campos sin control.

Evitar manipulaciones de productos en el campo y
hacerlo en la fabrica de alimento balanceado

No importa el sistema de manejo que tenga, los
productos bien empleados serán de gran ayuda a su
rentabilidad final