1. No category

Gustavo A. Rodríguez-Montes de Oca*, Ma. Del Carmen MonroyDosta, José Cristóbal Román-Reyes, José Basilio Heredia, Jorge A.
Reyes-Esparza, Leopoldo Martínez, Víctor M. Aguirre, Luis A.
Jiménez, Ángel Sánchez, Emmanuel Aguilar y Sergio Romo.
} 
El concepto de biorremediación es por definición
es una tecnología emergente que utiliza
organismos vivos (plantas, algas, hongos y
bacterias) para absorber, degradar o transformar
los contaminantes y retirarlos, inactivarlos o
atenuar su efecto en suelo, agua y aire.
} 
Biofloc
◦  Bacterias heterótrofas + nitrificantes= remoción de
desechos nitrogenados
◦  Unidad de biofiltración de alta eficiencia
◦  Fuente accesoria de alimento para los organismos
dentro del tanque de producción.
} 
Que es el biofloc?
Sistema de cero o mínimos recambios de agua
con alta productiva bacteriana, que sirve como
biofiltro y como fuente accesoria de alimento,
utilizado actualmente para producción de
organismos tales como camarón y tilapia.
q Método de cultivo
cero recambio.
q Convertir exceso
de nutrientes en
biomasa
microbiana
Biofloc
q Menor
dependencia en
harina y derivados
de pescado.
q Manejo de
calidad de agua
q Variedad de
peces para cultivar.
q  Diferentes sustrato
de carbono (C:N =
20:1)
azúcar, harina de trigo,
de tapioca, maíz,
melaza entre otros.
Biofloc
q  bacterias
heterótrofas son
predominantes del
biofloc.
q  EL biofloc puede
contener hasta el 50%
proteína cruda.
den
s
cult idad
de
ivo
Alta
n
ació
ipul
man ante
t
cons
Presencia de Patógenos
Com
p
e
t
e
ncia
por
a
l
i
m
ento
Causas
de
estrés
Presencia de dos o más especies
BIOFLOC
Producción de biomasa
microbiana
Alimento para los peces
Complemento
nutricional
Mayores
Índices
zootécnicos
Metabolismo
de bacterias
Remoción de
nutrientes en
el agua
v Suministro de
sustratos
orgánicos altos
en carbono.
Bacterias
heterótrofas
rotíferos
Hongos
Copépodos
microalgas
Zooplancton
} 
En base a que se calcula la cantidad total de
carbono a utilizar en nuestra unidad de
cultivo??
◦ Número de organismos (densidad)?
◦ Volumen de Agua?
◦ Cantidad de alimento por día?
◦ Valores de NH4-N en el tanque??
Recirculación vs biofloc (Avimelech, 2010) (De Schryver et al, 2008) Diferentes valores de flóculos por ml
(SRAC, 2013) •  EFECTO DE DIFERENTES FUENTES DE CARBONO: MELAZA RESIDUOS DE CAFÉ TILAPIA Molienda de Café
(grazna)
Melaza
Sustratos de Carbono Dosis 100 M 70 M /30 C 50 M/50 C 100 C C 2 4 6 8 1 D 7 12 9 3 2 D 11 10 1 5 La cantidad de sustrato de carbono se calculo en
base a la cantidad de alimento administrado.
Los primeros 15 días se administro el 100 % de
sustrato de carbono en relación con el peso del
alimento (C:N 25:1)
Al termino de la 8va. Semana se disminuyo al 70 %.
(C:N 17.5:1) para la semana 10 se disminuyo al 50%
(C:N 12.5:1)
recopilación de
datos
biométricos y
conteo de los
organismos
YSI
Multiparámetros
Conos Himhoff
Carbono (%) 100 M Dosis IM 50M/50C Control 1D 2D Control 1D 2D Biomasa inicial 637 627 638 601 682 590 Biomasa final 9262 7926 9255 7444 9002 7757 Biomasa ganada 8625 7299 8617 6843 8320 7167 FCA 1.63 1.68 1.72 1.67 1.79 1.72 TEP 2.449 2.378 2.322 2.397 2.229 2.331 TCE/d 0.751 0.72 0.759 0.714 0.732 0.731 52811.1 43383.9 49020.5 40186.7 45432.5 40930.8 100 100 98 98 98 98 FPI Sup. (%) Carbono (%) Dosis IM 70M/30C 100 C Control 1D 2D Control 1D 2D Biomasa inicial 654 574 614 678 618 584 Biomasa final 7677 7882 8154 8159 7439 7272 Biomasa ganada 7023 7308 7540 7481 6821 6688 FCA 1.83 1.71 1.68 1.82 1.86 1.79 TEP 2.181 2.345 2.384 2.196 2.153 2.229 TCE/d 0.699 0.744 0.734 0.706 0.706 0.716 38285.7 42844.7 44932.8 40256.3 36706.4 35781 100 100 100 98 100 96 FPI Sup. (%) 250
(a)
100 M
70M/30C
50M/50C
100 C
Peso promedio (g)
200
150
100
50
0
0
5
10
15
20
Semana
Crecimiento promedio y error estándar de tilapia en el ciclo experimental.
25
Alimentación al
2% de biomasa
16
100 M
70/30
50/50
100 C
14
Alimentación al
1.5% de biomasa
(c)
12
(c)
NH4 mg/L
10
8
C:N
25:1
(b)
6
(a)
4
C:N
17.5:1
2
0
jun
C:N
12.5:1
jul
ago
sep
Meses de cultivo
oct
nov
Alimentación al
2% de biomasa
100
Alimentación al
1.5% de biomasa
100 M
70M/30C
50M/50C
100C
80
NO3mg/L
60
40
C:N
17.5:1
C:N
25:1
20
C:N
12.5:1
0
may
jun
jul
ago
Meses de cultivo
sep
oct
nov
Alimentación al
2% de biomasa
60
50
Alimentación al
1.5% de biomasa
100 M
70M/30C
50M/50C
100C
FlÛculos ml/L
40
30
20
C:N
25:1
10
C:N
17.5:1
0
-10
may
jun
jul
C:N
12.5:1
ago
Meses de cultivo
sep
oct
nov
Bacillus subtilis
50/50
Bacillus megaterium
0
Bacillus subtilis
Bacillus megaterium
Bacillus sp
Bacillus lentus
Brevibacillus sp
Aneurinibacillus sp
Citrobacter Koseri
Micococcus flavos
Micrococcus sp
Microthrix sp
Sphingomonas paucimobilis
1200
Bacillus sp
0
Nitrospira sp
1200
Bacillus lentus
200
Brevibacillus sp
200
Aneurinibacillus sp
400
Citrobacter Koseri
600
Micococcus flavos
1000
Micrococcus sp
1000
Microthrix sp
1200
phingomonas paucimobilis
1200
Nitrospira sp
0
Nitrobacter sp
200
Nitrobacter sp
200
Pseudomonas putida
400
Pseudomonas putida
400
Psudomonas luteola
600
Pseudomonas cepacia
800
No. organismos
1000
Psudomonas luteola
800
No. organismos
Bacillus subtilis
Bacillus megaterium
Bacillus sp
Bacillus lentus
Brevibacillus sp
Aneurinibacillus sp
Citrobacter Koseri
Micococcus flavos
Micrococcus sp
Microthrix sp
Sphingomonas paucimobilis
Nitrospira sp
Nitrobacter sp
Pseudomonas putida
Psudomonas luteola
Pseudomonas cepacia
No. organismos
100 M
Pseudomonas cepacia
Bacillus subtilis
Bacillus megaterium
Bacillus sp
Bacillus lentus
Brevibacillus sp
Aneurinibacillus sp
Citrobacter Koseri
Micococcus flavos
Micrococcus sp
Microthrix sp
phingomonas paucimobilis
Nitrospira sp
Nitrobacter sp
Pseudomonas putida
Psudomonas luteola
Pseudomonas cepacia
No. organismos
1600
1400
1400
70/30
1000
800
600
0
800
100 C
600
400
EFECTO DE PROTEÍNA VEGETAL: MORINGA (Moringa oleifera) EN EL CRECIMIENTO, CALIDAD DE AGUA Y COMUNIDADES DE MICROORGANISMOS EN EL BIOFLOC La Moringa oleífera es una arbus:va oleaginosa originaria de la India y tradicionalmente u:lizada en países asiá:cos y africanos como alimento humano y animal, con propiedades especiales para la recuperación de las personas desnutridas y prevención de la ceguera. } 
Moringa oleifera
} 
} 
Baja Digestibilidad: El Biofloc incrementa la utilización de la proteína
de la moringa?
Actividad antibacterial de la moringa (Rahman et al., 2009)
4-(alpha-L-rhamnosyloxy)
phenylacetonitrile
Control vs Biofloc (Sucrosa) 106 días
de cultivo
Índice de color de la comunidad microbiana (Hargreaves, 2013) (SRAC, 2013) KDF: 0.4% DE INCLUSIÓN EN LA DIETA
KDF= DIFORMATO DE POTASIO
IMMP= 100 ng por kg de biomasa en el tanque
ÁCIDO FORMICO
•  Elaboración de las dietas Se u:lizara el mismo procedimiento para elaborar el alimento que con:ene moringa T°
}  pH
}  Amonio (NH4-N) mg/L
}  Nitratos (NO3-N) mg/L
}  Solidos disueltos totales mg/L
}  Conductividad (µS/cm)
}  Flocs (ml/L)
} 
180
100
75/25
50/50
25/75
160
Peso Prom. Ind. (g)
140
120
100
80
60
40
20
0
jul
ago
sep
oct
Tiempo
nov
dic
500
peso Prom. Individual (g)
400
100
75/25
50/50
25/75
300
200
100
0
Inicial
Sem 2
Sem 4
Tiempo
Sem 6
Final
100
75/25
50/50
25/75
Temperatura (T∞C)
40
30
20
10
0
jul
ago
sep
oct
nov
dic
14
100
75/25
50/50
25/75
12
Amonio (NH4 mg/L)
10
8
6
4
2
0
jul
ago
sep
oct
nov
dic
160
100
75/25
50/50
25/75
140
Nitratos (N03 mg/L)
120
100
80
60
40
20
0
jul
ago
sep
oct
Meses de Cultivo
nov
dic
100
75/25
50/50
25/75
10
8
pH
6
4
2
0
jul
ago
sep
oct
Meses de cultivo
nov
dic
1800
100A
75/25
50/50
25/75
1600
Conductivividad (υS/cm)
1400
1200
1000
800
600
400
200
0
jul
ago
sep
oct
Meses de Cultivo
nov
dic
Solidos Disueltos Totales (mg/L)
1000
100
75/25
50/50
75/25
800
600
400
200
0
jul
ago
sep
oct
Meses de Cultivo
nov
dic
100
100
75/25
50/50
25/75
Flocs (ml/L)
80
60
40
20
0
jul
ago
sep
oct
Meses de Cultivo
nov
dic
100
100
75/25
50/50
25/75
80
Inicio dietas Moringa
Resiembra grandes
Flocs (ml/L)
Maduración
60
40
20
0
jul
ago
sep
oct
Meses de Cultivo
nov
dic
81 % similitud
57 % similitud
82 %
similitud
S5 a
S13
S1 a
S4
77 %
similitud
S5 a
82 %
S13
similitud
S1 a
S4
S1 a
S4
75 % similitud
S5 a
S13
85 % similitud
TAXONES BACTERIANOS QUE REPRESENTAN CADA GRUPO. OBSERVA BACTERIAS
DESPUÉS DE LAS CINCO SEMANAS (CIRCULOS). SU ABUNDANCIA PROMEDIO ES MUY
HOMOGÉNEA. AQUAFORM E IMMP FORMAN DOS GRUPOS SEGÚN EL DENDOGRAMA DE
100% Nutripec
3
% TIPO DE BACTERIAS
100
80
2
60
40
1
20
T
0
I
0
SEM 0
SEM 1
SEM 2
SEM 3
SEM 4
SEM 5
SEM 6
SEM 7
SEM 8
SEM 9
SEM 10
SEM 11
SEM 12
TIEMPO
v
o
PATOGENAS
DEGRADADORAS
NITRIFICANTES
PROBIOTICAS
HONGOS
Shannon´s Index
120
3
100
80
2
60
H index
% TIPO DE BACTERIAS
I
M
M
P
H index
N
o
A
d
i
PATOGENAS
DEGRADADORAS
NITRIFICANTES
Shannon´s index
120
40
1
20
0
0
SEM 0
SEM 1
SEM 2
SEM 3
SEM 4
SEM 5
SEM 6
SEM 7
SEM 8
SEM 9
SEM 10
SEM 11
SEM 12
TIEMPO
PATOGENAS
DEGRADADORAS
NITRIFICANTES
HONGOS
120
Shannon´s Index
3
80
2
60
40
1
20
0
0
SEM 0
SEM 1
SEM 2
SEM 3
SEM 4
SEM 5
SEM 6
SEM 7
TIEMPO
SEM 8
SEM 9
SEM 10
SEM 11
SEM 12
H Index
K
D
F
% TIPO DE BACTERIAS
100
75% Nutripec/25% Moringa
120
Shannon´s index
3
100
80
2
60
40
1
20
0
0
SEM 0
SEM 1
SEM 2
SEM 3
SEM 4
SEM 5
SEM 6
SEM 7
SEM 8
SEM 9
SEM 10
SEM 11
SEM 12
TIEMPO
PATOGENAS
DEGRADADORAS
NITRIFICANTES
PROBIOTICAS
HONGOS
Shannon´s Index
120
3
% TIPO DE BACTERIAS
100
I
M
M
P
H Index
% TIPO DE BACTERIAS
Ad
i
D
i
T
I
V
o
PATOGENAS
DEGRADADORAS
NITRIFICANTES
HONGOS
80
2
60
H Index
No
40
1
20
0
0
SEM 0
SEM 1
SEM 2
SEM 3
SEM 4
SEM 5
SEM 6
SEM 7
SEM 8
SEM 9
SEM 10
SEM 11
SEM 12
TIEMPO
PATOGENAS
DEGRADADORAS
NITRIFICANTES
HONGOS
120
Shannon´s Index
3
80
2
60
40
1
20
0
0
SEM 0
SEM 1
SEM 2
SEM 3
SEM 4
SEM 5
SEM 6
SEM 7
TIEMPO
SEM 8
SEM 9
SEM 10
SEM 11
SEM 12
H Index
K
D
F
% TIPO DE BACTERIAS
100
50% Nutripec/50% Moringa
PATOGENAS
DEGRADADORAS
NITRIFICANTES
HONGOS
120
No
A
D
i
T
I
V
o
Shannon´s Index
3
80
2
H Index
% TIPO DE BACTERIAS
100
60
40
1
20
0
0
SEM 0
SEM 1
SEM 2
SEM 3
SEM 4
SEM 5
SEM 6
SEM 7
SEM 8
SEM 9
SEM 10
SEM 11
SEM 12
TIEMPO
PATOGENAS
DEGRADADORAS
NITRIFICANTES
PROBIOTICAS
HONGOS
Shannon´s Index
120
3
80
2
60
H Index
I
M
M
P
% TIPO DE BACTERIAS
100
40
1
20
0
0
SEM 0
SEM 1
SEM 2
SEM 3
SEM 4
SEM 5
SEM 6
SEM 7
SEM 8
SEM 9
SEM 10
SEM 11
SEM 12
TIEMPO
PATOGENAS
DEGRADADORAS
NITRIFICANTES
HONGOS
120
Shannon´s Index
3
80
2
60
40
1
20
0
0
SEM 0
SEM 1
SEM 2
SEM 3
SEM 4
SEM 5
SEM 6
SEM 7
TIEMPO
SEM 8
SEM 9
SEM 10
SEM 11
SEM 12
H Index
K
D
F
% TIPO DE BACTERIAS
100
25% Nutripec/75% Moringa
PATOGENAS
DEGRADADORAS
NITRIFICANTES
HONGOS
3
100
% TIPO DE BACTERIAS
Ad
i
T
I
vo
Shannon´s Index
120
80
2
H Index
No
60
40
1
20
0
0
SEM 0
SEM 1
SEM 2
SEM 3
SEM 4
SEM 5
SEM 6
SEM 7
SEM 8
SEM 9
SEM 10
SEM 11
SEM 12
TIEMPO
PATOGENAS
DEGRADADORAS
NITRIFICANTES
PROBIOTICAS
HONGOS
120
Shannon´s Index
3
80
2
60
H Index
I
M
M
P
% TIPO DE BACTERIAS
100
40
1
20
0
0
SEM 0
SEM 1
SEM 2
SEM 3
SEM 4
SEM 5
SEM 6
SEM 7
SEM 8
SEM 9
SEM 10
SEM 11
SEM 12
TIEMPO
PATOGENAS
DEGRADADORAS
NITRIFICANTES
HONGOS
Shannon´s Index
120
3
80
2
60
40
1
20
0
0
SEM 0
SEM 1
SEM 2
SEM 3
SEM 4
SEM 5
SEM 6
SEM 7
TIEMPO
SEM 8
SEM 9
SEM 10
SEM 11
SEM 12
H Index
K
DF
% TIPO DE BACTERIAS
100
INDICE DE DIVERSIDAD (H) 100N
75/25
50/50
25/75
2
100N
75/25
50/50
25/75
H INDEX
2
100N
75/25
50/50
25/75
3
3
H INDEX
H Index
3
AQUAFORM
KDF IMMP
NO ADITIVO
2
1
1
1
0
0
0
S0 S1 S2 S3 S4 S5 S6 S7 S8 S9 S10 S11 S12
S0 S1 S2 S3 S4 S5 S6 S7 S8 S9 S10 S11 S12
S0 S1 S2 S3 S4 S5 S6 S7 S8 S9 S10 S11 S12
Tiempo
TIEMPO
TIEMPO
Cambio isotópico del Nitrógeno en el músculo y biofloc, suministrando una dieta comercial (maduración). 9
MUSCULO
BIOFLOC
DIETA
8
δ 15N
7
6
5
4
3
0
10
20
30
DIAS
40
50
Cambio de valores isotópicos de nitrógeno en el biofloc, con diferentes porcentajes de inclusión de moringa, 8
δ 15N
6
4
100%
75%-25%
50%-50%
25%-75%
NUTRIPEC
MORINGA
2
0
0
20
40
60
Dias
80
100
Contenido de proteínas del biofloc por cada tratamiento (dietas experimentales) y porcentaje de contribución en el músculo la _lapia. Tratamiento Proteína cruda Contribución 15N en músculo 100% N 35% 50% 75%N-­‐25%M 30% 50% 50%N-­‐50%M 30% 50% 25%N-­‐75%M 30% 50% UTILIZACIÓN DE DIFERENTES PROBIÓTICOS (INÓCULOS BACTERIANOS) FUENTES DE CARBONO MELAZA Y HARINA DE MAIZ PROPORCIÓN 50/50% •  Calidad de agua YSI® 9300. Alcalinidad y nitritos HANNA® HI 991300. pH, T0,solidos disueltos totales, conduc:vidad YSI® professional plus. Amonio y nitratos Conos de sedimentación Imhoff N=50 peces por tanque (1.7 m3) INOCULO BACTERIANO (1X108-­‐1X109 células/g) Control Inoculo de biofloc maduro x 3 días Probió_co 1 Bacillus sub8lis Bacillus licheniformis Probió_co 2 Lactobacillus sporogenes Saccharomyces cerevisiae Saccharomyces fragilis Bacillus brevis Bacillus sub8lis Bacillus polymyxa Bacillus megaterium Nitrobacter vulgaris Probió_co 3 Pediococcus pentosaceus Lactobacillus plantarum Lactococcus lac8s Aplicación probió:co: 5 g/m3 (3 días) + 2 g/m3 (7 días) + 1 g/m3 (11 días) Variable Control Probió_co 1 Probió_co 2 Probió_co 3 Peso Ind. Inicial (g) 14.7±1.6 15.2±1.0 16.5±1.3 15.4±2.8 Peso Ind. Final (g) 151.8±4.8 162.2±16.0 171.1±21.9 165.1±15.1 Biomasa Inicial (g) 752.3±34.9 811.6±47.5 800.63±44.1 797.3±31.5 7383.0±296.6 8342.0±19.7 7964.0±788.7 7844.6±353.6 Biomasa Final (g) Supervivencia (%) 97.3±4.6 100±0.0 93.3±3.0 95.3±5.0 TEC (%/día) 2.78±0.2 2.81±0.2 2.78±0.2 2.83±0.2 FCA 1.3±0.02 1.2±0.05 1.3±0.05 1.2±0.020 250
Control
Probiótico 1
Probiótico 2
Probiótico 3
Peso Prom. Ind. (g)
200
150
100
50
0
0
2
4
6
Semanas
8
10
12
40
Control
Probiótico 1
Probiótico 2
Probiótico 3
Temperatura (°C)
30
20
10
0
ago
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
dic
6
Control
Probiótico 1
Probiótico 2
Probiótico 3
Amonio (mg/L)
5
4
3
2
1
0
ago
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
dic
80
Contol
Probiótico 1
Probiótico 2
Probiótico 3
Nitratos (mg/L)
60
40
20
0
ago
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
dic
5
5
Control
Probiótico 1
Probiótico 2
Probiótico 3
4
Nitritos (mg/L)
Nitritos (mg/L)
4
3
2
3
2
1
1
0
ago
0
sep
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
Control
Probiótico 1
Probiótico 2
Probiótico 3
dic
sep
sep
oct
Tiempo
oct
nov
nov
200
200
Control
Probiótico 1
Probiótico 2
Probiótico 3
Alcalinidad total (mg/L)
Alcalinidad (mg/L)
150
100
50
0
sep
sep
sep
Control
Probiótico 1
Probiótico 2
Probiótico 3
oct
Tiempo
oct
nov
nov
150
100
50
0
sep
sep
sep
oct
Tiempo
oct
nov
nov
180
700
Control
Probiótico 1
Probiótico 2
Probiótico 3
160
600
500
Flocs (ml/L)
120
100
400
80
300
60
200
40
100
20
0
ago
0
sep
sep
oct
Tiempo
oct
nov
nov
Materia seca (mg/L)
140
Control
Probiótico 1
Probiótico 2
Probiótico 3
1400
Conductividad (υS/cm)
1200
1000
800
600
400
200
0
ago
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
dic
Control
Probiótico 1
Probiótico 2
Probiótico 3
10
8
pH
6
4
2
0
ago
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
dic
800
Control
Probiótico 1
Probiótico 2
Probiótico 3
TDS (mg/L)
600
400
200
0
ago
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
dic
UTILIZACIÓN DE DIFERENTES PROBIÓTICOS (INÓCULOS BACTERIANOS) CON PROTEÍNA VEGETAL (MORINGA) Diseño experimental: factorial 3X2 Factor A (Probió_co) Factor B (Alimento) Control (C) Probió_co 1 Probió_co 2 Nutripec (A1) A1 + C A1 + P1 A1 + P2 Moringa (A2) A2 + C A2 + P1 A2 + P2 Control Probió_co 1 Inoculo de biofloc maduro x 3 días Pediococcus pentosaceus Lactobacillus plantarum Lactococcus lac8s Dietas (formulación) Nutripec Purina 25/05% + 25% mezcla con harina de moringa Probió_co 2 Lactobacillus sporogenes Saccharomyces cerevisiae Saccharomyces fragilis Bacillus brevis Bacillus sub8lis Bacillus polymyxa Bacillus megaterium Nitrobacter vulgaris FUENTES DE CARBONO MELAZA Y HARINA DE MAIZ PROPORCIÓN 50/50% N=20 :lapias por unidad experimental (0.4 m3) Variable A2 + C A1 + C A2 + P1 A1 + P1 A2 + P2 A1 + P2 Peso Ind. Inicial (g) 14.6±0.1 15.7±2.2 13.2±3.5 14.9±1.3 16.4±1.0 15.7±0.8 Peso Ind. Final (g) 63.5±3.3 130.6±12.4 57.8±13.4 127.6±22.4 59.4±8.7 118.9±12.1 Biomasa Inicial (g) 315.0±14.0 331.7±25.0 315.3±12.0 306.7±31.2 333.0±11.5 316.3±5.7 Biomasa Final (g) 1207.7±62.4 2398.0±108.0 1054.3±350.4 2174.76±82.4 983.3±297.1 2208.7±108.0 Supervivencia (%) 97.3±4.6 100±0.0 93.3±3.0 95.3±5.0 95.3±5.0 95.3±5.0 TEC (%/día) 1.7±0.1 2.5±0.2 1.8±0.2 2.5±0.2 1.5±0.1 2.4±0.1 FCA 2.4±0.2 1.5±0.1 3.3±1.3 1.5±0.1 3.6±1.2 1.6±0.1 180
A2+C
A1+C
A2+P1
A1+P1
A2+P2
A1+P2
160
Peso Prom. Ind. (g)
140
120
100
80
60
40
20
0
0
2
4
6
Semana
8
10
12
14
35
30
Temperatura (°C)
25
20
A2+C
A1+C
A2+P1
A1+P1
A2+P2
A1+P2
15
10
5
0
ago
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
dic
8
A2+C
A1+C
A2+P1
A1+P1
A2+P2
A1+P2
7
Amonio (mg/L)
6
5
4
3
2
1
0
ago
sep
sep
oct
Tiempo
oct
nov
nov
dic
100
A2+C
A1+C
A2+P1
A1+P1
A2+P2
A1+P2
Nitratos (mg/L)
80
60
40
20
0
ago
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
dic
6
6
A2+C
A1+C
A2+P1
A1+P1
A2+P2
A1+P2
4
5
4
Nitritos (mg/L
Nitritos (mg/L)
5
3
3
2
2
1
1
0
ago
0
ago
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
A2 + C
A1 + C
A2 + P1
A1 + P1
A2 + P2
A1 + P2
nov
dic
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
dic
250
200
Alcalinidad (mg/L)
Alcalinidad total (mg/L)
200
150
100
150
100
50
50
0
0
sep
sep
A2 + C
A1 + C
A2 + P1
A1 + P1
A2 + P2
A1 + P2
250
A2+C
A1+C
A2+P1
A1+P1
A2+P2
A1+P2
oct
oct
Tiempo
nov
nov
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
200
Flocs (ml/L)
1000
A2+C
A1+C
A2+P1
A1+P1
A2+P2
A1+P2
800
150
600
100
400
50
200
0
ago
0
sep
sep
oct
Tiempo
oct
nov
nov
Materia seca (mg/L)
250
1400
A2+C
A1+C
A2+P1
A1+P1
A2+P2
A1+P2
Conductividad (υS/cm)
1200
1000
800
600
400
200
ago
sep
sep
oct
Tiempo
oct
nov
nov
dic
8
6
pH
A2+C
A1+C
A2+P1
A1+P1
A2+P2
A1+P2
4
2
0
ago
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
dic
Solidos disueltos totales (mg/L)
800
A2+C
A1+C
A2+P1
A1+P1
A2+P2
A1+P2
600
400
200
0
ago
sep
sep
oct
oct
Tiempo
nov
nov
dic
Conclusiones "  El biofloc permite una estabilidad en cuanto a la calidad de agua "  Hay una reducción significa:va en cuanto al nivel de proteína y can:dad de alimento a proporcionar a los peces " T  odos los bioensayos se u:lizo únicamente alimento de 25% de proteína cruda "  Disminución hasta 1.5% de la biomasa/día, alimentando solo 6 días a la semana Conclusiones "  Probió:cos: manejo similar, pero maduración más rápida "  Incorporación de diferentes :pos de proteína vegetal: incremento debido al uso del biofloc? "  Adi:vos y otros componentes de la dieta: pueden impactar en la composición microbiana del biofloc Trabajo en proceso (Colaboraciones) "  Efecto de las cepas de productos comerciales en la diversidad de bacterias (UAM-­‐
Xochimilco) "  Agua "  Intes:no Trabajo en proceso (colaboraciones) " S  eguimiento de la evaualuación del flujo de carbono y nitrógeno con la técnica de isotopos estables (FACIMAR-­‐UAS) "  N15 y C13 " A
  nálisis proximal del biofloc (UAN Nayarit) Trabajo en proceso (colaboraciones) "  Uso de harina de biofloc en dietas para camarón (UANL) Gracias!!!!!