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UNIVERSIDAD INTERNACIONAL DE LAS AMERICAS
Carrera: Licenciatura en Farmacia
Curso: Microbiología Médica
1er. Cuatrimestre 2015.
Código: F-080
Créditos: 4
Horas Totales de teoría al Cuatrimestre: 45
Horas Totales de Laboratorio al Cuatrimestre: 45
Profesor del curso: Dr. José Fabio Fernández Alemán, e-mail: [email protected]
1. DESCRIPCION DEL CURSO
En este curso se discuten los conceptos básicos de la microbiología, que incluyen algunos
elementos de inmunología. Se estudian los diversos tipos de virus, hongos y bacterias,
principalmente los responsables de las patologías y contaminaciones más frecuentes en el área del
trabajo farmacéutico tales como contaminación del agua, jarabes, tabletas y áreas de trabajo. Se
pretende que el estudiante al final de curso haya adquirido los siguientes conocimientos:
Conceptos básicos.
Aspectos biológicos de los microorganismos.
Inmunología.
Cocos patógenos.
Bacilos.
Vibrios y Campylobacterias.
Micología médica.
Contaminaciones más frecuentes en el área del trabajo farmacéutico tales como contaminación
del agua, jarabes, tabletas y áreas de trabajo.
2. OBJETIVOS DEL CURSO
2.1 OBJETIVO GENERAL:
Conocer los aspectos fundamentales de la Microbiología.
2.2 OBJETIVOS ESPECIFICOS:
1. Adquirir habilidad en la identificación de los microorganismos propios de la contaminación
por bacterias, hongos y virus.
2. Familiarizarse con los métodos, materiales y equipo usado en la Microbiología.
3. Aprender las formas básicas de diferenciar diferentes microorganismos.
1
4. Reconocer las contaminaciones más frecuentes en el área del trabajo farmacéutico tales
como contaminación del agua, jarabes, tabletas y áreas de trabajo.
5.
Conocer los fundamentos de las diferentes pruebas de esterilidad, pirógenos, endotoxinas
bacterianas.
3. CONTENIDOS:
3.1 CONTENIDOS DE TEORÍA
Tema 1. Introducción a la Microbiología.
-
Definición.
Desarrollo histórico sobre la causa de las enfermedades infecciosas
Conceptos básicos de epidemiología.
El Síndrome Febril Infeccioso.
Tema 2. Aspectos biológicos de los microorganismos.
-
Estructura física y química.
Genética bacteriana y procesos de mutación.
Fases de la reproducción viral.
Factores de virulencia.
Tema 3. Inmunología.
-
Antígenos y anticuerpos.
Reacción antígeno – anticuerpo.
Tipos de inmunidad.
Reacciones de hipersensibilidad
Cascada del complemento.
Tema 4. Cocos patógenos.
-
Gram Positivos: estafilococos, neumococos y estreptococos.
Gram Negativos: meningococos y gonococos.
Tema 5. Bacilos entéricos Gram Negativos.
-
Proteus, Klebsiella, Pseudomonas aeruginosa.
Shigella, Salmonella, Yersinia, Vibrio.
Escherichia coli O157:H7 y O104:H4 y el Síndrome Urémico Hemolítico.
Endotoxinas: colerágeno y shiga I / II (Verotoxinas)
Tema 6. Zoonosis y antroponosis. Campylobacter.
2
Tema 7. Haemophilus, Bordetella, Brucella, Francisella.
Tema 8. Bacilos Gram Positivos:
-
Grupo Clostridium.
Grupo Bacillus.
Tema 9. Corynebacterium, Mycoplasma.
Tema 10. Mycobacterium: bacilo de Koch y bacilo de Hansen. Normas vigentes de tuberculosis y
lepra (puntos concretos). Espiroquetas: Treponema, Leptospira.
Tema 11. Enfermedades rickettsiales, chlamydias.
-
Grupo Arbovirus.
Picornaviridae.
Orthomixoviridae.
Virus oncogénicos.
Herpes como oportunistas.
Epidemiología del VIH/SIDA
Tema 12. Micología médica.
-
Propiedades generales de los hongos.
Micosis superficiales.
Micosis profundas.
Micosis generalizadas.
Micosis oportunistas.
Tema 13. Microbiología de alimentos especiales:
-
Leche, agua, carnes.
Potabilidad, pasteurización y proceso UHT.
Tema 14. Control de microorganismos.
-
Curva de crecimiento y muerte bacteriana.
Agentes físicos y químicos para el control de poblaciones de microorganismos.
Esterilización, desinfección y antisepsia. Fármacos bacteriostáticos y bactericidas.
3.2 CONTENIDO DE LABORATORIO
BACTERIOLOGÍA:
1- Observación de muestras de orina. Criterios físicos, químicos y microbiológicos que definen ITU
y medidas a seguir ante fallo terapéutico o en pacientes con condiciones especiales.
3
3- Observación directa de muestras de heces: flora normal.
4- Determinación de la carga fecal en manos y alimentos.
5- Detección de Helicobacter pylori en heces.
6- Prueba de Sangre Oculta en heces.
7- Técnica especial para urocultivos.
6- Observación macroscópica de colonias de microorganismos y tinción de Gram.
7- Características del Agar Sangre, MacConkey y Manitol Sal. Repique de cultivos.
8- Diferenciación entre cocos y bacilos, Gram Positivos y Gram Negativos, efectuando la tinción de
Gram y observando láminas ya teñidas.
9- Elementos para la Prueba de sensibilidad a antibióticos, cómo se efectúa, función del Agar
Müller-Hinton.
SEROLOGÍA, HEMATOLOGÍA, INMUNOLOGÍA E INMUNOHEMATOLOGÍA:
1- Toma de muestra de sangre venosa periférica.
2- Análisis de algunas pruebas de escrutinio como Sub-β hCG, VDRL, Anti-HIV I/II, HBsAg, HCV,
Dengue IgM / IgG mediante inmunocromatografía (ICT), en contraste con el inmunoensayo por
competencia para determinar Tóxicos en orina.
3- Grupo sanguíneo eritrocitario e inverso. Coombs directo e indirecto.
4- Diferencial de Schilling (F. Roja y F. Blanca) en adultos.
5- Detección de anemia y cálculo de índices hematimétricos con muestras que contengan
hipocromía y anisocitosis.
HONGOS:
1-Aislamiento de hongos del suelo y el ambiente.
2-Cultivo de uñas por hongos.
3- Observación macroscópica de colonias de hongos filamentosos, levaduriformes, hialinos y
fuliginosos.
4- Uso del KOH y el Azul de Lactofenol en el montaje de hongos para observar estructuras
micóticas a nivel microscópico.
4
4. CRONOGRAMA DE TEORÍA
SEMANA
1
CONTENIDO DE TEORÍA
Tema 1. Quiz 1.
EXPERIENCIAS DE APRENDIZAJE
Clase magistral interactiva,
determinación de bases
mediantes preguntas diagnósticas. Discusiones grupales de
casos. Aplicación de problemas sobre medidas de frecuencia
de la enfermedad, desarrollo de problemas epidemiológicos,
variedad de tasas, su cálculo e interpretación.
Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos
relacionados. Técnicas participativas como charlas o
discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. Exámenes
escritos teóricos de comprobación del proceso enseñanzaaprendizaje, método de casos, aprendizaje basado en
problemas, técnica de la pregunta, estudio individual,
búsqueda y análisis de la información, discusión de
entrevistas, conformación de mapas conceptuales, cierre de
la lección con los temas relevantes.
05/01/2016
2
Tema 2. Quiz 2.
12/01/2016
3
Tema 3. Quiz 3.
Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos
relacionados. Técnicas participativas como charlas o
discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. Exámenes
escritos teóricos de comprobación del proceso enseñanzaaprendizaje, método de casos, aprendizaje basado en
problemas, técnica de la pregunta, estudio individual,
búsqueda y análisis de la información, discusión de
entrevistas, conformación de mapas conceptuales, cierre de
la lección con los temas relevantes.
19/01/2016
4
Temas 4 y 5. Quiz 4.
26/01/2016
5
02/02/2016
6
I EXAMEN
TEORÍA
PARCIAL
Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos
relacionados. Técnicas participativas como charlas o
discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. Exámenes
escritos teóricos de comprobación del proceso enseñanzaaprendizaje, método de casos, aprendizaje basado en
problemas, técnica de la pregunta, estudio individual,
búsqueda y análisis de la información, discusión de
entrevistas, conformación de mapas conceptuales, cierre de
la lección con los temas relevantes. Juego de roles, panel o
debate.
DE No hay clase de teoría. Se aplica el I examen escrito.
Temas 6, 7 y 8. Quiz 5.
Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos
relacionados. Inicia la presentación de investigaciones
clínicas tanto en teoría como en laboratorio. Técnicas
participativas como charlas o discusiones, conferencias,
clases teórico-prácticas. Exámenes escritos teóricos de
comprobación del proceso enseñanza-aprendizaje, método
de casos, aprendizaje basado en problemas, técnica de la
09/02/2016
5
pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la
información, conformación de mapas conceptuales, cierre de
la lección con los temas relevantes. Panel o debate. Pedir un
caso corto a los estudiantes acerca de los tres temas
principales de la siguiente lección para desarrollar un panel.
7
Temas 8, 9 y 10. Quiz 6.
Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos
relacionados. Presentación de investigaciones. Técnicas
participativas como charlas o discusiones, conferencias,
clases teórico-prácticas. Exámenes escritos teóricos de
comprobación del proceso enseñanza-aprendizaje, método
de casos, aprendizaje basado en problemas, técnica de la
pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la
información, conformación de mapas conceptuales, cierre de
la lección con los temas relevantes. Juego panel y discusión
de casos aportados por los estudiantes.
16/02/2015
8
16/02/2016
9
23/02/2016
10
01/03/2016
11
08/03/2016
Tema
11,
Parte
1: Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos
Rickettsias y chlamydias. relacionados. Explicación de los puntos más importantes,
Quiz 7.
tanto para para farmacia de las Normas de TB y Hansen
vigentes en el territorio nacional y aclaración de dudas.
Elaboración de mapa conceptual. Desarrollo de mentefacto.
Tema 11, Parte 2: Virología. Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos
Quiz 8.
relacionados. Técnicas participativas como charlas o
discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas. Exámenes
escritos teóricos de comprobación del proceso enseñanzaaprendizaje, método de casos, aprendizaje basado en
problemas, técnica de la pregunta, estudio individual,
búsqueda y análisis de la información, conformación de
mapas conceptuales, cierre de la lección con los temas
relevantes.
II EXAMEN PARCIAL DE No hay clase de teoría. Se aplica el II examen.
TEORÍA. En este examen se
evaluará
el
artículo
científico en inglés (véase
bibliografía).
Tema 12 (I Parte) Quiz 9.
Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos
relacionados. Presentaciones de investigaciones. Técnicas
participativas como charlas o discusiones, conferencias,
clases teórico-prácticas. Exámenes escritos teóricos de
comprobación del proceso enseñanza-aprendizaje, método
de casos, aprendizaje basado en problemas, técnica de la
pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la
información, discusión de entrevistas, conformación de
mapas conceptuales, cierre de la lección con los temas
relevantes. Juego de roles, panel o debate con los casos
6
proyectados y la farmacología vista.
12
Tema 12 (II Parte) Quiz 10.
Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos
relacionados. Presentaciones de investigaciones. Técnicas
participativas como charlas o discusiones, conferencias,
clases teórico-prácticas. Exámenes escritos teóricos de
comprobación del proceso enseñanza-aprendizaje, método
de casos, aprendizaje basado en problemas, técnica de la
pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la
información, discusión de entrevistas, conformación de
mapas conceptuales, cierre de la lección con los temas
relevantes. Juego de roles, panel o debate con los casos
proyectados y la farmacología vista.
Tema 13. Quiz 11.
Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos
relacionados. Presentaciones de investigaciones.
15/03/2016
13
22/03/2016
14
29/03/2016
15
Tema 14. No hay Quiz. Clase magistral interactiva Discusiones grupales de casos
Aclaración de dudas para el relacionados.
examen final.
EXAMEN FINAL DE TEORÍA
Se aplica el examen final acumulativo.
05/04/2016
CRONOGRAMA DE LABORATORIO
SEMANA
SEMANA 2
PRÁCTICA 1
11/01/2016
CONTENIDO DE LA CLASE
1-Observación de muestras de orina.
2-Reporte de la orina normal y con
infección aguda o crónica de tracto
urinario.
EXPERIENCIA DE APRENDIZAJE
Observación de muestras de orina normales y
con ITU. Interpretación de un reporte de
orina. Selección de antibióticos para una ITU.
Interpretación de un antibiograma. Discusión
de casos interactiva. Revisión de la bitácora y
explicación de confección de un reporte de la
práctica de hoy.
1-Técnica de dilución para conteo de
colonias.
2-Determinación de carga fecal en manos
y alimentos.
Se conformarán grupos de 3 estudiantes, a
uno de los cuales se les determinará la carga
fecal en manos. El grupo aportará un
alimento preparado manualmente con más
de 4 horas de haber sido preparado. A este
alimento se le determinará el recuento total y
los coliformes totales en dicho alimento,
siempre aplicando el método de diluciones.
Revisión de bitácora y entrega de reporte de
la práctica anterior.
QUIZ 1
INCÓGNITA 1
SEMANA 3
PRÁCTICA 2
18/01/2016
QUIZ 2
INCÓGNITA 2
7
SEMANA 4
PRÁCTICA 3
25/01/2016
QUIZ 3
INCÓGNITA 3
SEMANA 5
PRÁCTICA 4
1-Observación de muestras de heces.
2-Reporte de muestra de heces.
3-Pruebas presuntivas para Helicobacter
pylori y Sangre oculta en heces
(comparación del Guayaco tradicional y
de la ICT por sangre oculta.
Interpretación del reporte de examen de
heces. Discusión interactiva de casos clínicos
relacionados con patologías diversas de
tracto digestivo. Discusión del fundamento y
la interpretación de pruebas presuntivas para
Sangre Oculta y Helicobacter pylori. Revisión
de la bitácora y entrega de reporte de la
bitácora anterior.
1-Urocultivo por el método URYN SYSTEM
Plus
Demostrar destreza manual y saber
interpretar los resultados de una orina con
signos de ITU por un sistema comercial de
respuesta rápida. Revisión de la bitácora de
hoy y entrega del reporte de la semana
pasada.
1-Montaje de muestra en Agar Sangre,
Agar MacConkey y Agar Manitol Sal.
Demostrar destrezas manuales para efectuar
un buen rayado y obtener un cultivo puro. La
práctica se dividirá en 3 partes, el rayado, la
tinción de Gram, la interpretación del cuadro
que puede causar el microorganismo
cultivado y la Prueba de Sensibilidad a
Antibióticos. Se revisará que la bitácora
contenga cada una de las partes en las que se
divide la práctica y el reporte debe ser
comparativo: Deben consignar un reporte
donde se comparen las ventajas y desventajas
vistas con el método rápido y el método
tradicional usando los agares básicos para
una ITU. Discusión grupal interactiva, debate
con casos traídos por el profesor. Revisión de
la bitácora.
PRIMER BLOQUE DE EXPOSITORES DE LA
INVESTIGACIÓN SOBRE MICROBIOLOGÍA
APLICADA A LA FARMACOLOGÍA
Todo el grupo se presenta para escuchar y
aclarar dudas sobre los temas.
El profesor concluye los puntos importantes
de cada proyecto.
1- Observación macroscópica de colonias
de microorganismos y tinción de Gram
para clasificarlas microscópicamente.
2- Diferenciación entre cocos, cocobacilos
y bacilos, Gram Positivos y Gram
Negativos.
3-Visualización microscópica de bacterias
procedentes de enlatados y su
clasificación al Gram.
Discusión interactiva de la preparación de las
tinciones de Gram respectivas. Discusión
interactiva de casos. Adquirir destreza
manual en el repique de colonias para
trasladarlas y trabajarlas de forma pura.
Revisión de la bitácora y del reporte
comparativo que unifica y desarrolla las
ventajas y las desventajas de la metodología
empleada en la semana 5 versus la semana 6.
01/02/2016
QUIZ 4
INCÓGNITA 4
SEMANA 6
PRÁCTICA 5
08/02/2016
QUIZ 5
INCÓGNITA 5
SEMANA 7
15/02/2015
SEMANA 8
PRÁCTICA 6
22/02/2016
QUIZ 6
INCÓGNITA 6
8
Cada grupo investigará los tratamientos que
más se venden contra una determinada
micosis para ser discutido la clase siguiente.
La asignación la hará el profesor.
SEMANA 9
PRÁCTICA 7
29/02/2016
QUIZ 7
INCÓGNITA 7
SEMANA 10
PRÁCTICA 8
07/03/2015
QUIZ 8
INCÓGNITA 8
SEMANA 11
PRÁCTICA 9
14/03/2015
QUIZ 9
INCÓGNITA 9
SEMANA 12
21/03/2015
SEMANA 13
PRÁCTICA 10
21/03/2015
1-Aislamiento de hongos filamentosos
queratinofílicos del suelo y esporas del
ambiente.
2-Tinción de hongos con Azul de
Lactofenol y montaje en KOH 10% de
aislamientos aportados por el profesor.
Discusión interactiva de casos de micosis
humanas, superficiales, subcutáneas o
profundas. Manifestaciones de las micosis y
discusión de los tratamientos más comunes
en el mercado que cada grupo de trabajo
investigó. Revisión de la bitácora.
1- Toma de muestra de sangre venosa
periférica.
2- Análisis de algunas pruebas de
escrutinio como Sub-β hCG, VDRL, AntiHIV I/II, HBsAg, HCV.
3- Pasaje de los hongos a Agar Sabouraud
y Mycosel. Cultivo de uñas.
Exposición del profesor acerca de los
fundamentos de las pruebas serológicas.
Discusión interactiva de casos. Técnica de la
pregunta. Aprendizaje basado en problemas,
realización de mapa conceptual y algoritmo
diagnósticos para VIH 1 / 2, Sífilis, y Perfil de
Hepatitis. Pasaje de los hongos a los agares
Sabouraud y Mycosel. Revisión de la bitácora
y entrega del reporte de la semana pasada.
1-Entender otras técnicas como la de Exposición del profesor, análisis y discusión
Dengue y Tóxicos en orina.
en grupos. Discusión, análisis enfocados en la
2- Grupo sanguíneo eritrocitario e inverso. resolución de casos de inmunohematología y
3-Coombs directo e indirecto.
varios casos de Banco de Sangre. Técnica de
la pregunta y análisis basado en problemas
para que cada grupo pueda discutir y dar una
solución efectiva a los problemas. Establecer
similitudes entre el control de
hemoconcentrados y productos
farmacológicos.
SEGUNDO BLOQUE DE EXPOSITORES DE
Todo el grupo se presenta para escuchar y
LA INVESTIGACIÓN SOBRE
aclarar dudas sobre los temas.
MICROBIOLOGÍA APLICADA A LA
El profesor concluye los puntos importantes
FARMACOLOGÍA
de cada proyecto.
1- Detección de anemia y cálculo de
índices hematimétricos.
2- Preparación de láminas con colonias
fungosas en KOH y Azul de Lactofenol.
Explicación de anormalidades de la serie roja
y que afectan más a la población en nuestro
país. Discusión interactiva de casos. Debate o
panel.
QUIZ 10
INCÓGNITA 10
SEMANA 13
PRÁCTICA 11
28/03/2016
1-Diferencial de Schilling (F. Roja y F. Estudio individual y discusión interactiva de
Blanca) en adultos.
problemas. Tareas individuales, investigación
2-Tinción de Wright.
individual y aporte de los grupos a la
2-Cómputo de leucocitos: Basófilos,
9
QUIZ 11
INCÓGNITA 11
SEMANA 14
04/04/2016
eosinófilos,
neutrófilos,
monocitos.
3-Cómputo de plaquetas.
linfocitos, discusión de los casos que puedan surgir
entre las láminas que aporta el profesor.
TERCER BLOQUE DE EXPOSITORES DE LA
INVESTIGACIÓN SOBRE MICROBIOLOGÍA
APLICADA A LA FARMACOLOGÍA
Todo el grupo se presenta para escuchar y
aclarar dudas sobre los temas.
El profesor concluye los puntos importantes
de cada proyecto.
5. METODOLOGÍAS DIDÁCTICAS
* Presentación del curso, análisis de contenidos y discusión de las estrategias para lograr las
acciones didácticas.
* Clases magistrales 3 horas, Laboratorio 3 horas.
* Técnicas participativas como charlas o discusiones, conferencias, clases teórico-prácticas.
* Exámenes escritos teóricos, método de casos, aprendizaje basado en problemas (ABP),
proyectos, técnica de debate, técnica de la pregunta, estudio individual, búsqueda y análisis de la
información, seminarios, entrevistas, conformación de mapas conceptuales.
* Investigaciones sobre los temas asignados, expuestos por los alumnos que han de ser asignados
el primer día de clases principalmente con relación a Contaminaciones más frecuentes en el área
del trabajo farmacéutico tales como contaminación del agua, jarabes, tabletas y áreas de trabajo.
* Trabajos en subgrupos de máximo 3 personas, donde el análisis, trabajo en grupo, facilitarán el
proceso reflexivo de aprendizaje y estimularán la tolerancia y ética que debe caracterizar a
nuestros profesionales.
6. RECURSOS DIDÁCTICOS
Pizarras acrílicas, marcadores para pizarra y borradores, vídeo-beam, muestra biológicas, técnicas
estándares para trabajar bacterias y hongos (Agar Sangre, Agar McConkey, Agar Manitol Sal, Agar
Sabouraud, Agar Mycosel), Casettes de ICT para pruebas serológicas presuntivas, material de
laboratorio para hacer diversas tinciones (Gram, Wright, Lactofenol), incubadora a 37ºC.
7. EVALUACIÓN:
Para poder pasar un curso es requisito que se gane el laboratorio. Si se pierde el laboratorio
queda reprobado el curso. La rúbrica de evaluación es la siguiente:
TEORÍA
EXAMENES CORTOS SEMANALES
PRIMER EXAMEN PARCIAL
SEGUNDO EXAMEN PARCIAL
EXAMEN FINAL
15%
25%
25%
35%
10
LABORATORIO
Trabajo en el laboratorio
Quices de la práctica de la semana
Incógnitas
Investigación
Bitácora de trabajo en el laboratorio
Reportes de cada práctica de laboratorio
5%
20%
20%
20%
10%
25%
7.1 Guía para la Elaboración y Presentación de la Investigación del Curso de LABORATORIO:
El trabajo de investigación para el curso de laboratorio tendrá como eje central el “Reconocer las
contaminaciones más frecuentes en el área del trabajo farmacéutico tales como contaminación
del agua, jarabes, tabletas y áreas de trabajo.” Este trabajo es de campo y conlleva también parte
de investigación bibliográfica, pero la parte experimental y las destrezas en este rubro de la
investigación es crucial. El procedimiento se explicará durante la presentación del programa. Los
ejes transversales del estudio serán: las técnicas de limpieza de superficie, los diferentes agentes
para el control de microorganismos, la higiene del ambiente que nos rodea, la higiene personal, la
transmisión de agentes patógenos productores de infecciones piogénicas y otras enfermedades. El
trabajo escrito lleva las siguientes partes, pauta reglamentaria de las publicaciones científicas:
a) Primera página o portada: Incluye el nombre de la universidad, el nombre del curso, el título de
la investigación, los nombres de los integrantes del grupo, el número de cuatrimestre, la fecha de
presentación.
b) Resumen: El resumen será una versión hecha por los estudiantes constituyendo 4 párrafos de
máximo 300 palabras que indiquen abreviadamente lo más relevante de la introducción (¿qué se
hizo?), materiales y métodos (¿cómo se hizo?), resultados (¿qué se encontró?) y la discusión (¿qué
importancia tiene lo encontrado?). Cada párrafo deberá referirse a las 4 secciones anteriores. No
se colocan abreviaturas ni referencias bibliográficas. Tampoco se hace explícita la conclusión,
obligando al lector a interesarse por consultar todo el documento.
c) Palabras claves: Son los descriptores o términos que mejor describen el tema investigado en
general, pueden ser palabras aisladas, como un nombre científico, o términos compuestos por
varias palabras, como: Shigella dysenteriae, Enfermedad de Lobo, Lupus, Linfogranuloma Venéreo,
Leucemia linfocítica aguda, Síndrome de fatiga crónica, etc. Se deberán colocar entre cinco y diez
términos no incluidos en el título y que identifiquen el tema de investigación.
d) Introducción: la idea central en la introducción es contestar a la pregunta ¿qué se pretendió
hacer? Es el marco teórico donde se colocan conocimientos actualizados sobre el eje central o los
transversales, o sobre el tema en general, para lo cual el grupo deberá consultar bibliografía
relacionada con coliformes totales, control de microorganismos, agentes desinfectantes, medios
de cultivo, etc., y redactar, de lo general a lo específico, una visión del contexto en que se
encuentra el tema, enmarcando el problema estudiado, indicando los elementos conocidos y las
posibles incógnitas que rodearon el caso, todo siempre con las respectivas citas bibliográficas.
11
e) Materiales y métodos: Hay que recordar que en esta parte se describen detalles de las acciones
que hayamos realizado, lo cual depende de si el trabajo es meramente bibliográfico o es una serie
de experimentos dirigidos a obtener uno o varios resultados. Debe describirse en detalle todo el
protocolo seguido por los miembros del grupo, resumen, indicaciones o referencias y toda la
información relevante para que la descripción de la respuesta a la pregunta ¿cómo se hizo? sea lo
más detallada posible.
f) Resultados: Los datos presentados deben ser claros y concisos. La sección de resultados puede
ilustrarse con figuras relevantes, cuya presencia aclare o brinde información importante. Otro tipo
de figuras son los gráficos; actualmente, muchos de los programas de computadoras personales
permiten confeccionar gráficos con mucha facilidad, lo que desencadena la repetición de
información, que en una presentación oral resulta cansado, y en un trabajo escrito inadmisible. La
repetición de información solo oscurece el mensaje; por lo tanto, se debe elegir cuál es la forma
que mejor ilustra los datos que estamos describiendo. De lo anterior se deduce que los datos
presentados deben ser claros y concisos, analizarse, procesarse y exponerse de la forma más
directa, evitando repeticiones innecesarias, como lo sería un cuadro y un gráfico basado en los
datos de ese mismo cuadro, caso en el cual debe decidir cuál de las dos cosas es más
representativa o llamaría más la atención del lector.
f) Discusión: En esta parte los estudiantes pueden dar un poco de rienda suelta a su vena literaria,
pues en esta sección se analizan las implicaciones de su trabajo en función del impacto que pueda
tener el tema investigado en el conocimiento previamente establecido; por ello pueden recurrir a
compararlo con otros estudios parecidos, para señalar similitudes o diferencias, siempre
refiriéndose a los datos expuestos en la sección de resultados, pero no se trata de una
recapitulación de los resultados, sino que se refiere a la interpretación de éstos e indicando su
significado, y si las hubo, las limitaciones que presentó el grupo de autores de las referencias
consultado. La farmacología utilizada también se discute en este apartado. Se podrán colocar
cuadros y figuras. Recuerde que la información de los cuadros ilustra y enriquece la discusión de
los resultados, pero no los sustituye; así que cada uno de los cuadros que emplee debe ser citado y
su información comentada en el texto. Al igual que los cuadros, las figuras deben ser
autoexplicativas: o sea, deben tener un título y una leyenda que aparece al pie de la figura donde
se explica el significado de esa figura.
g) Conclusión: En esta sección, el grupo analizará la importancia de la exposición del tema elegido,
a la luz de los nuevos conocimientos y demandas de ciencia moderna. En esta parte la justificación
de por qué se hizo el trabajo, y dicha exposición puede exponerse involucrando al grupo en
general con situaciones que “saltan a la luz” y que identifiquen como parte del problema, aquí
hablamos de tasas de mortalidad, morbilidad, prevalencia en comunidades como la nuestra, la
necesidad de hacer un cambio en técnicas consideradas tradicionales, ampliar los horizontes de un
determinado tema relevante detectado durante la realización del trabajo de campo o algo
importante hallado en la bibliografía, nuevas o mejores metodologías de trabajo, nuevos agentes
desinfectantes, aspectos del trabajo que podrían dar origen a un nuevo estudio a futuro y que por
el tiempo o enfoque que se dio en este no fue posible abordar, y enmarcar lo más importante del
12
estudio dentro de las políticas de salud o los lineamientos del campo de la salud en el que nos
desenvolvamos.
h) Referencias: La bibliografía debe ser enumerada en el orden en que es citada en el texto, y
escrita en esta sección usando el formato APA.
Se hará una distribución de presentación oral de las investigaciones en la semana 7, la semana 12
y la 14, como se indicó en el cronograma de laboratorio. El día de la presentación también el grupo
entrega el trabajo escrito como se detalló anteriormente. Para exponer el trabajo a la clase, cada
grupo tendrá 20 minutos y 5 más para preguntas y comentarios. Podrán usar como recurso el
video-beam con una presentación en Power Point que no exceda 10 diapositivas.
8. BIBLIOGRAFÍA BÁSICA
Jawetz, E. (2011). Microbiología Médica. México: Editorial Manual Moderno. 25ava. Edición.
Cheng, A. Fegusson, JK. Michael R, Robson, J. Gilbert, G. Alistair, MG. Roberts, S. Karman, TM.
Riley, T. (2011) Australasian Society for Infectius Diseases guidelines for the diagnosis and
treatment of Clostridium difficile infection. Clinical guidelines. Issue 194: 353-358.
BIBLIOGRAFÍA RECOMENDADA
Koneman, E. Allen, SD. Dowell V.R. Janda WM, Sommers, H y Winn, WC. (2008) Diagnóstico
Microbiológico: Texto y Atlas a color. Editorial médica panamericana. 3era. Edición.
Material audiovisual, publicaciones, casos, textos y lecturas de la OMS, OPS, Ministerio de Salud,
Ponencias, trabajos cortos de Congresos de Microbiología Clínica y Patología, que estarán
disponibles en la página web del curso completamente adaptados al programa teórico y práctico.
9. ORIENTACIONES GENERALES
1) Los lunes se imparte el laboratorio de 6 a 9 pm y los martes se imparte la teoría del curso de 6 a
9 pm. Para ambos días el estudiante debe ingresar a la página web que el profesor indicará el
primer día del curso, ya que deberá estudiar con antelación de 2 días la materia que aparece en
dicha página y presentarse a clases con la temática preparada.
2) Las reposiciones de los exámenes parciales deben realizarse a más tardar una semana después
de haberse aplicado el examen ordinario y solo estarán autorizadas por motivo de fuerza mayor,
fallecimiento de familiar, problemas laborales, accidentes o enfermedad, todos con su debida
justificación escrita.
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3) El examen final no podrá ser realizado por aquellos estudiantes que no han cancelado la letra
de cambio con la universidad, los cuales saldrán con un señalamiento en la lista que les será
entregada por Registro.
4) Los exámenes extraordinarios se realizarán siempre y cuando el estudiante haya ganado el
Laboratorio, pero en la nota final de teoría haya sacado entre 60 y 69, y se realizará en la semana
17.
5) Los estudiantes que presenten 3 o más ausencias injustificadas a teoría pierden el curso, y 3
llegadas tardías equivaldrán a una ausencia. La llegada tardía corresponde a llegar 15 minutos
después de la hora de entrada. Los estudiantes sólo podrán faltar al 25% total de las clases
programadas en el cuatrimestre.
7) A los laboratorios solo se puede faltar una vez y de forma justificada.
8) Durante la clase los celulares deben permanecer apagados, por lo cual es indispensable llevar a
teoría y laboratorio una calculadora sencilla, puede ser científica.
9) Es indispensable usar gabacha blanca en el laboratorio. Es obligatorio el uniforme tanto en las
clases como en el laboratorio.
10) No se cambian las fechas de examen.
11) Los reclamos sobre los exámenes y quices se tienen que hacer por escrito en las 72 horas
siguientes de la entrega de los resultados.
Los abajo firmantes dan fe de que el primer día de clases fue leído y discutido el presente
programa de contenidos:
No.
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
14.
Nombres y Apellidos
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17.
18.
19.
20.
21.
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25.
26.
27.
28.
29.
30.
31.
32.
33.
34.
35.
36.
37.
38.
39.
40.
41.
42.
43.
44.
45.
46.
47.
48.
49.
50.
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