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Enfermedades prevalentes de trigo y
cebada: diagnóstico y pautas de manejo
Patología Vegetal
Unidad Integrada Balcarce
EEA INTA - FCA, UNMdP
Ing. Agr. (MSc) Gladys Clemente
[email protected]
Hoja de ruta:
1.Enfermedades de raíces, pie y tizón de
plántulas.
2.Enfermedades foliares del trigo.
3.Fusariosis de la espiga.
4.Enfermedades de cebada.
PARA COMENZAR….
Control vs Manejo de la Sanidad
• CONTROL es REACTIVO.
• MANEJO es PRO-ACTIVO, se basa en anticipar
la ocurrencia de la enfermedad y atacar puntos
vulnerables del ciclo de enfermedad.
– diagnóstico correcto
– entendimiento del ciclo de enfermedad
– requerimientos culturales de la planta
hospedante.
Enfermedades de raíces, pie y
tizón de plántulas de trigo
Pudrición del pie y raíz - Tizón de cereales
Características comunes:
• Parásitos no obligados, asociados a la MO muerta
• Favorecidos por altas humedad de suelo y HR ambiente
• Invernan como micelio o estructuras fúngicas en restos vegetales (fuente de inóculo
para infecciones en el ciclo siguiente)
(Estos hongos son también patógenos de semillas y espigas)
Tizón de plántulas
• Muerte de plántulas en pre o pos emergencia en
ataques tempranos (damping-off).
• Lesiones en coleoptilos, raíces y coronas.
• Oscurecimiento del pie en el entrenudo inferior.
• Manchas en hojas (poco comunes)
Pudriciones de raíces (de difícil diagnóstico)
• Plantas al azar o en manchones irregulares, con menor
desarrollo y color verde más claro.
• Coloración marrón de raíces primarias y secundarias al
lavarlas y observarlas con lupa
• Pudrición en base de tallo y nudos basales secos y
oscuros
• Plantas enfermas quebradizas, se rompen a nivel del
suelo.
• Pocos macollos y maduración anticipada
• Granos chuzos, de color bronceado a blancuzco. Espigas
blancas
Tratamiento
1
2
3
4
5
Antecesor Gira
50 metros
Antecesor Soja
testigo
1
2
3
4
parcela=
a cosechar
1,6
surcos
dist e/ surcos
largo
4
0,2
2
metrso cuadrados
m
m
5
3,5m 3,5metros
• Presiembra: análisis de nutrientes, recuentos de microorganismos (hongos totales,
actinomycetes, bacterias aerobias totales, Pseudomonas fluorescentes).
• Z11 stand de plantas logradas.
• Z22 hasta grano pastoso: monitoreo enfermedades foliares y síntomas foliares de
hongos de raíz (parches). Recuentos microbianos, seguimiento poblaciones Trichoderma
spp. en raíces.
• Z31 índice de verdor (SPAD), biomasa particionada, muestras de raíces para análisis
fitopatológico y detección de patógenos de suelo: Fusarium spp., Rhizoctonia spp.,
Pythium spp., Helminthosporium spp.).
• Precosecha componentes de rendimiento y rendimiento.
PUDRICIONES DEL PIE Y DE LA RAIZ
ASOCIADAS CON ENFERMEDADES DE HOJA Y PLANTULAS
• Cochiobulus sativus (Dreschlera sorokiniana sin. Bipolaris = Helminthosporium)
• Gaeumannomyces graminis
- Fusarium culmorum
- F. graminearum
- F. avenaceum
- F. poae
- F. nivale
Fotos: Hoechst Schering AgrEvo SA
• Especies de Fusarium sp.
Pudrición del pie y raíz por especies de Fusarium sp.
Pietín de los cereales
Gaeumannomyces graminis
• Especializado en trigo (pero también en
Bromus sp., Agropiro sp. y Agrostis sp.).
• Desde estado plántula, más frecuente después
de espigazón.
Control
• Rotación de cultivos con leguminosos
u otras dicotiledóneas y cereales como
avena, cebada,maíz.
• La enfermedad declina en suelos con
alto contenido de materia orgánica
por la actividad de microorganismos
benéficos.
Pudrición de raíces de trigo por Cochliobolus sativum
Cochliobolus sativus (Bipolaris sorokiniana = Helminthosporium sativum).
D. E. Mathre, R. H. Johnston, and W. E. Grey. 2003. Diagnosis of Common Root Rot of Wheat and BarleyPlant Management
Network. [http://www.plantmanagementnetwork.org/pub/php/diagnosticguide/2003/rootrot/]
Manejo de enfermedades de pie,
raíz y tizón de plántulas de trigo
•
•
•
•
•
•
Evitar utilizar suelos con antecedentes de las
enfermedades que causan estos patógenos.
Rotaciones de cultivos con especies no hospedantes.
Utilizar semillas libres de estos patógenos (“sanas”).
Tratamiento de semillas con fungicidas protectores.
Utilizar variedades que reporten resistencia genética.
Las prácticas culturales que promuevan la actividad
biológica de la microflora benéfica de los suelos
disminuye los prejuicios que estos patógenos causan.
Manchas foliares del trigo
10 DPF
20-25 DAF
MONITOREO : ENCAÑAZÓN – GRANO LECHOSO
ENFERMEDADES FOLIARES AFECTAN
IAF - DAFS - RI
ESPIGA
HOJA
BANDERA
HOJA -1
HOJA -2
HOJA -3
HOJA -4
A. Manchas aparentemente sin puntos negros (picnidios) visibles a ojo desnudo,
o de tipo estriado ------------------------------------------------C
A’. Manchas con puntos negros (picnidios) visibles a ojo desnudo -----------B
B. Manchas, al principio de aspecto acuoso (como manchas de aceite o
traslúcidas); Mas tarde, de color pardo con puntos negros grandes (picnidios)
Mancha de la hoja por Septoria
Manchas causadas por Septoria
1. (Septoria tritici) Mycosphaerella graminicola
2. (Septoria nodorum syn. Stagonospora nodorum)
Leptosphaeria nodorum
3. (Septoria avenae f. sp. triticea)
1. Mancha de la hoja del trigo
2 y 3. Mancha o tizón de la gluma y del nudo del trigo y otros
cereales
Ciclo de patogénesis
Mycosphaerella
graminicola
(Septoria tritici)
Infección requiere 6 h de
humedad
Esporas 2rias. e/10 a 20 días
Germinación de esporas e
Infección óptima e/15-25 °C
(5-25 °C
S. tritici + virulenta e/15-20 °C
Stagonospora nodorum +
virulenta e/20-27 °C
Tiempo Hdo. y ventoso
A. Manchas aparentemente sin puntos negros (picnidios) visibles a ojo desnudo,
o de tipo estriado------------------------------------------------C
A’. Manchas con puntos negros (picnidios) visibles a ojo desnudo ----------B
C. Manchas de coloración parda con halo amarillo ----------------------E
Mancha amarilla
Pyrenophora tritici-repentis (Drechslera tritici-repentis)
Mancha amarilla del trigo Dreschlera tritici-repentis
A. Manchas aparentemente sin puntos negros (picnidios) visibles a ojo
desnudo, o de tipo estriado --------------------------------------------------------C
A’. Manchas con puntos negros (picnidios) visibles a ojo desnudo -----------B
B. Manchas, al principio de aspecto acuoso (como manchas de aceite o
traslúcidas); Mas tarde, de color pardo con puntos negros grandes
(picnidios)
Mancha de la hoja por
Septoria tritici
C. Manchas de coloración parda con halo amarillo --------------------------E
E. Presencia de conidióforos y de conidios claros observados sobre las
lesiones con condiciones de humedad (vistos con lupa de mano)
Mancha amarilla
Dreschlera
tritici-repentis
D. Manchas oscuras, centro claro y borde negro, forma rectangular o, si son
elípticas, de color ceniza sin borde oscuro. Esporas negras vistas con lupa de
mano.
Helmintosporiosis
Manchas de trigo por
Helmintosporiosis
sativum
Cochliobolus sativus (Bipolaris sorokiniana = Helminthosporium sativum).
Conidióforos de Bipolaris sorokiniana en trigo observados
con una magnificación de 50x (Zilinsky, 1984).
Manejo de manchas foliares de trigo
• Considerar el tipo de labranza (lotes cultivados
en Siembra Directa conservan en superficie
restos que pueden ser fuente de inóculo)
• Utilizar “semillas sanas”: libres de D. triticirepentis, H. sativus (y especies de Alternaria
sp. patógenas en trigo)
• Tratamiento de semillas con fungicidas
protectores.
• Utilizar variedades que reporten resistencia
genética.
• Monitoreo y utilización de fungicidas.
% Germinación
a
b
90
% Plántulas defectuosas
70
50
1
Infección Media
Infección Alta
a
30
20
b
10
0
Infección Media Infección Alta
Síntomas en hoja de trigo causados por
Alternaria triticina (Prescott et al. 1986).
Perelló , A., Stenglein, S., Moreno, V. 2012. Alternaria
species-groups en trigo: identificación, patogenicidad y
toxinas involucradas. Actas de la II Jornada Temática INBA.
Azul, Buenos Aires, Argentina.
Fusariosis de la espiga
Tizón de la espiga (espiga blanca, fusariosis de la espiga)
Gibberella zeae (Fusarium graminearum)
(F. culmorum); (F. avenaceum); (F. nivale)
• Tizón sobre espigas emergidas inmaduras donde 1
o más espiguillas o la espiga aparecen blancas.
• Raquis infectado: se decolora arriba del punto de
infección. Cuerpos negros (peritecios) y micelio y
conidios rosas-salmón sobre y en la base de las
espiguillas.
• Espiguillas estériles o granos chuzos
• Granos menos palatables para el ganado que
contienen micotoxinas.
• En el hombre y en monogástricos las micotoxinas
producen espasmos musculares y vómitos.
Enfermedades en cebada
Alumnos: Covelli Santiago, Currás Manuel, Irastorza José, Laboranti Luciano, Lozano Jorge,
Lynch Pedro Martin, Mayoz Santiago, Pinchinatti Jorge, Vellaz Mauro.
Tutora: Ing. Agr. Natalí Lazzaro.
Síntomas
Los primeros síntomas se
detectan desde fines de
macollaje a inicio de encañazón,
principalmente en las hojas
basales.
Las lesiones son alargadas, de
centro grisáceo, blanco o pálido
y con bordes marrones
frecuentemente ondulados.
Rynchosporium secalis.
Fuente de inóculo: rastrojo infectado, semillas, plantas
susceptibles (Triticale y Bromus sp.).
SINTOMATOLOGÍA
Manchas necróticas en hojas, reticuladas, alargadas, con
clorosis alrededor de las manchas. A medida que las
plantas se desarrollan, la lignificación de los haces
vasculares provoca la morfología alargada manteniendo
una apariencia de red.
AGENTE CAUSAL
Pyrenophora teres (Drechslera teres)
Hongo ascomycete
Inóculo primario: ascosporas (pseudotecio)
Inóculo secundario: conidios
Dos formas de Drechslera que inducen lesiones
diferentes:
D.teres f. teres típica mancha en red
D. teres f. maculata mancha elíptica pardo oscuro.
Mancha
borrosa
Síntomas
Produce lesiones en
coleoptiles, plúmulas,
hojas y vainas.
Las lesiones son de color
marrón oscuro.
Algunas veces
presentan el centro
un poco más claro.
Bipolaris sorokiniana
Ramularia collo-cygni
El tejido afectado presenta
conidióforos en fascículos,
dispuestos en líneas a lo largo de
las nervaduras que emergen a
través de los estomas.
La ocurrencia de la enfermedad tiene
dos componentes
Componente no-parasítico: Factor abiótico rayos
UV-B sobre las hojas de cebada.
Componente parasítico: Ramularia collo-cigni,
libera una toxina (rubelina) que se produce bajo
condiciones de alta radiación.
Spermogonio (estado Asteromella) de
Ramularia collo-cygni sobre restos de cultivo
Manejo de Manchas Foliares Cebada
• Usar semilla sana o tratada con fungicidas.
• Uso de variedades resistentes o tolerantes a la
enfermedad.
• Labranzas: SD favorece estas enfermedades al
dejar en superficie rastrojo (fuente de
inóculo).
• Rotaciones con especies no-hospedante.
• Uso de fungicidas.
Evaluación del control químico de las carboxamidas sobre Ramularia collo-cygni en semillas de
cebada mediante la técnica de PCR en Tiempo Real.
CLEMENTE, G.1; AGUIRRE, N. 2; ROSSO, A2.; CORDI, N. 2; QUINTANA, S.3.
1 FCA,
UNMdP (UI Balcarce). 2 CEANAGRO Mar del Plata.
3
Fares Taie, Lab. Biología Molecular.
Sistema hidropónico para la producción de
plántulas de cebada.
Evaluación del control químico de las carboxamidas sobre Ramularia collo-cygni en semillas de
cebada mediante la técnica de PCR en Tiempo Real.
CLEMENTE, G.1; AGUIRRE, N. 2; ROSSO, A2.; CORDI, N. 2; QUINTANA, S.3.
1 FCA,
UNMdP (UI Balcarce). 2 CEANAGRO Mar del Plata.
3
Fares Taie, Lab. Biología Molecular.
4,0
3,5
3,0
2,5
2,0
1,5
1,0
0,5
5
10
15
20
25
30
35
40
Cycle
Amplificación de ADN mediante PCR en Tiempo Real utilizando los iniciadores Rcc3-Rcc4
(Havis et al., 2006) para la detección de ADN de R. collo-cygni . Las pruebas incluyeron el
agregado de control interno de ADN vegetal a las muestras de ADN extraído desde
plántulas y semillas de cebada.
45
Evaluación del control químico de las carboxamidas sobre Ramularia collo-cygni en semillas de
cebada mediante la técnica de PCR en Tiempo Real.
CLEMENTE, G.1; AGUIRRE, N. 2; ROSSO, A2.; CORDI, N. 2; QUINTANA, S.3.
1 FCA,
UNMdP (UI Balcarce). 2 CEANAGRO Mar del Plata.
3
Fares Taie, Lab. Biología Molecular.
20
SIN TRATAR
15
TRATADAS
10
5
10
15
20
25
30
35
40
45
Cycle
Reacciones de PCR en Tiempo Real utilizando los iniciadores Rcc3-Rcc4 (Havis et al., 2006) para
la detección de ADN de R. collo-cygni en tejidos de plántulas de cebada obtenidas de semillas
tratadas con dos dosis de carboxamida (líneas negra y verde respectivamente). La amplificación
del testigo sin fungicida se muestra con línea amarilla.
IMPORTANTE REMARCAR que
Hay decisiones que son baratas
•
•
•
•
Elección de lote (=conocer historia).
Analizar las semilla.
Planificar rotaciones.
Monitorear la sanidad de los cultivos!
y
y
PARA TERMINAR….
Control vs Manejo de la Sanidad
• CONTROL es REACTIVO.
• MANEJO es PRO-ACTIVO, se basa en anticipar la
ocurrencia de la enfermedad y atacar puntos vulnerables
del ciclo de enfermedad.
– diagnóstico correcto.
– entendimiento del ciclo de enfermedad.
– requerimientos culturales de la planta hospedante.
El MANEJO se basa en el CONOCIMIENTO y CRITERIO
Entonces podemos hablar de
MANEJO CRITERIOSO DE ENFERMEDADES
MUCHAS GRACIAS !!!!!
Ing. Agr. (MSc) Gladys Clemente
[email protected]